Name: Gating cardíaco retrospectivo com um protótipo de tomógrafo computadorizado de raios-X de pequenos animais (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-02-21T14:10:00.000+00:00
Duration: 5 min 32 s
Description: Aprenda a técnica de gating cardíaco retrospectivo para tomografia computadorizada de pequenos animais usando o protótipo CrumpCAT. Este método por software melhora a relação contraste-ruído e permite quantificar o volume do ventrículo esquerdo em roedores.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Os protocolos experimentais em animais foram revisados e aprovados pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais da Universidade da Califórnia, Los Angeles (UCLA). Camundongos C57BL/6J (8 semanas de idade, machos, 24-26 g) foram usados neste protocolo. O tomógrafo utilizado neste estudo é o CrumpCAT (Figura 2), um protótipo desenvolvido em nossa instituição de pesquisa para pesquisa pré-clínica, que nos fornece o controle e a flexibilidade necessários para otimizar os protocolos de aquisição e reconstrução. O método pressupõe que os camundongos anestesiados terão uma frequência cardíaca não superior a 600 batimentos/min e uma frequência respiratória entre 20 e 180 respirações/min15.
1. Configurações do equipamento
<ol>
	<li>Opere a fonte de raios X em uma tensão de pico de 50 kVp com corrente contínua de 200 μA.</li>
	<li>Defina o binning de pixels da câmera de raios-X como 2 e o tempo de exposição para seu valor prático mais curto (tempo de exposição de 20 ms mais 14 ms de tempo de leitura para um tempo total de amostragem de 34 ms). NOTA: A opção no-binning (binning 1) tem uma taxa de quadros mais lenta e, portanto, não pode ser usada para aquisições fechadas. A taxa de quadros máxima é de cerca de 30 quadros/s.</li>
</ol>
2. Preparação animal
<ol>
	<li>Anestesiar camundongos com uma mistura de oxigênio e gás isoflurano na concentração de 2,0%.</li>
	<li>Mantenha os animais sob anestesia por 10 minutos antes da tomografia computadorizada, para garantir que os sinais vitais estejam estáveis e que os animais estejam relaxados para evitar qualquer movimento corporal durante o exame. Julgue a profundidade da anestesia de um camundongo pela falta do reflexo de pinça do dedo do pé ao beliscar firmemente a correia entre os dedos dos pés com a unha.</li>
	<li>Para que a imagem cardíaca visualize as câmaras cardíacas, injete por via intravenosa 100 μL de agente de contraste de TC através da veia da cauda imediatamente antes da imagem de TC (Figura 3A).</li>
	<li>Coloque o camundongo anestesiado dentro da câmara de imagem da TC (Figura 3B).</li>
</ol>
3. Aquisição de dados
<ol>
	<li>Ligue o software CrumpCAT.</li>
	<li>Imagem de TC não fechada com alta resolução (125 μm, binning 1) (Figura 4A)<ol>
		<li>Insira um ID de estudo na interface do usuário.</li>
		<li>Selecione Mouse Hi-Res no menu suspenso Protocolo .</li>
		<li>Clique no botão Digitalizar na interface do usuário para adquirir 720 projeções com um tempo de exposição de 80 ms/projeção.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Imagem de TC não fechada com resolução média (200 μm, binning 2) (Figura 4B)<ol>
		<li>Insira um ID de estudo na interface do usuário.</li>
		<li>Selecione Padrão do mouse no menu suspenso Protocolo .</li>
		<li>Clique no botão Digitalizar na interface do usuário para adquirir 720 projeções com um tempo de exposição de 100 ms/projeção.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Imagem de TC fechada (200 μm, binning 2) (Figura 4C)<ol>
		<li>Insira um ID de estudo na interface do usuário.</li>
		<li>Selecione Cardiac Gating no menu suspenso Protocolo .</li>
		<li>Clique no botão Digitalizar na interface do usuário e adquira 21.600 projeções com um tempo de exposição de 20 ms/projeção.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. Pré-processamento de dados
NOTA: As etapas de pré-processamento são necessárias apenas para aquisições fechadas. Todas essas etapas são executadas automaticamente pelo software de reconstrução e nenhuma intervenção do operador é necessária.
<ol>
	<li>Extração de sinal<ol>
		<li>Para o co-registro do modelo de tórax, deixe uma pequena imagem (modelo) representando grosseiramente um tórax de camundongo com as costelas, o coração, os pulmões e o fígado ser automaticamente co-registrada na primeira projeção de raios-X, maximizando a Informação Mútua12 entre a projeção e o modelo (Figura 5). NOTA: Somente operações de conversão são executadas no modelo e o modelo co-registrado é usado para identificar regiões de interesse (ROIs) em todas as projeções.</li>
		<li>Para extração de sinal respiratório, permita que uma ROI retangular (ROI-1) seja designada no modelo para representar o diafragma e o sinal respiratório a ser gerado somando as intensidades de pixel dentro da ROI-1 para cada projeção (Figura 5).</li>
		<li>Para extração de sinal cardíaco, deixe um segundo retângulo ROI (ROI-2) ser designado no modelo próximo ao coração, e o sinal cardíaco gerado pela soma das intensidades de pixel em ROI-2 para cada projeção (Figura 5). NOTA: O modelo de tórax é co-registrado apenas na primeira projeção para identificar quais linhas e colunas de imagem (janela) devem ser usadas para extração de sinal. Essa janela é larga o suficiente para abranger todas as projeções, desde que o animal esteja razoavelmente centralizado, como é o caso ao usar nossa cama de animais16.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Filtro passa-banda<ol>
		<li>Permitir que um filtro passa-banda seja gerado combinando duas funções Sinc com diferentes frequências de corte no domínio temporal17, que correspondem a filtros passa-baixa no domínio da frequência, conforme descrito abaixo.</li>
		<li>Deixe o software aplicar o filtro passa-banda no sinal cardíaco usando uma banda de frequência de [300, 600] min-1 (Figura 6A). NOTA: O sinal cardíaco não filtrado (Figura 6B) ainda contém uma contribuição significativa do movimento respiratório.</li>
		<li>Da mesma forma, deixe o sinal respiratório ser filtrado usando uma banda de frequência de [20, 300] min-1. Os harmônicos mais altos são preservados para produzir um sinal que não é simplesmente senoidal e identifica mais claramente as duas fases principais: inspiração e expiração. NOTA: Neste ponto, os sinais respiratórios e cardíacos podem ser facilmente interpolados e considerados funções contínuas de tempo para fins de cálculo do número de fases fracionárias.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Atribuição de fase<ol>
		<li>Deixe o software identificar o início de cada ciclo (respiratório ou cardíaco) encontrando os cruzamentos zero da primeira derivada do sinal. Cada cruzamento zero corresponde a um máximo no sinal e marca o início de um novo ciclo e o fim do anterior. Por exemplo, veja o sinal respiratório na Figura 7.</li>
		<li>Permitir que um valor de fase fracionário (entre 0 e 1) seja atribuído a cada projeção para cada um dos dois sinais (respiratório ou cardíaco). NOTA: Por definição, o ponto inicial tem um valor de fase fracionário de zero (para o ciclo atual) ou um (para o ciclo anterior).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Máscaras de seleção<ol>
		<li>Que 12 máscaras binárias (uma por fase cardíaca) sejam criadas para selecionar projeções pertencentes a cada fase. Cada máscara contém 21.600 entradas (uma por projeção) que são 0 ou 1, o que significa rejeitar ou manter essa projeção, respectivamente.</li>
		<li>Para cada máscara (fase), observe que o software indica se uma projeção é mantida (1) ou descartada (0) de acordo com seu número de fase fracionário. Para a fase 0, as projeções com um valor de fase cardíaca no intervalo [0, 1/12] são mantidas. Para a fase 1, os valores da fase cardíaca no intervalo [1/12, 2/12] são mantidos e assim por diante.</li>
		<li>Para cada máscara (fase), observe que quaisquer projeções com fase respiratória menor que 0,15 ou maior que 0,85 são rejeitadas (0 na máscara) porque pertencem à fase de inspiração, que tem o maior movimento (Figura 8A). A Figura 8B mostra a atribuição da fase cardíaca às projeções para os primeiros 2 s. NOTA: Nenhum viés significativo foi introduzido com este processo de seleção, uma vez que o número de projeções por fase foi relativamente constante em 1.800 ± 194.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
5. Reconstrução de imagem
<ol>
	<li>Para tomografias computadorizadas não fechadas, reconstrua imagens em resolução média (200 μm) ou alta (125 μm) usando o algoritmo de retroprojeção filtrada (Feldkamp18) com um filtro Shepp-Logan.</li>
	<li>Para tomografias computadorizadas cardíacas, reconstrua cada imagem da fase cardíaca usando o algoritmo OSEM iterativo13, com 12 subconjuntos e 8 iterações, levando em consideração apenas as projeções selecionadas que contribuem para uma determinada fase (conforme indicado em uma máscara binária de seleção de fase).</li>
	<li>Para reduzir o ruído, aplique um filtro mediano pós-reconstrução na dimensão temporal (ou seja, através das imagens) e um filtro 3D-Gaussiano leve na dimensão espacial (σ = 38 μm). NOTA: Para reconstrução de imagem com controle respiratório, use todas as fases cardíacas indistintamente. A correção de endurecimento do feixe (correção de água) é aplicada a cada reconstrução.</li>
</ol>
6. Avaliação por imagem e quantificação do volume do ventrículo esquerdo (VE)
<ol>
	<li>Abra a imagem da TC em um visualizador DICOM, como a Amida19 (Figura 9A).</li>
	<li>Melhore o contraste visível da imagem definindo o intervalo do valor CT (medido na Unidade Hounsfield [HU]) como [-500, 500] (Figura 9A).</li>
	<li>Avaliação da qualidade da imagem<ol>
		<li>Desenhe um ROI para a região calcificada, que é definida como a região em torno do máximo com um valor de CT maior ou igual a 85% do valor máximo de HU (Figura 9B).</li>
		<li>Utilizar a relação contraste-ruído (CNR)20,21 como métrica para avaliar a qualidade da imagem e sua capacidade de identificar pequenas estruturas, como pequenas calcificações: 
		<img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/67803/67803eq01.jpg" style="margin: auto;">, onde I e σ representam a intensidade média e o desvio padrão de uma região: calcificação (subscrito C) ou background (subscrito B).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Quantificação do volume do ventrículo esquerdo<ol>
		<li>Desenhe um ROI 3D à mão livre para identificar o VE em cada fase (Figura 10A).</li>
		<li>Quantifique o volume do VE calculando voxels com um valor de CT limiar de 730 UH (Figura 10B). Um gráfico dos volumes do VE é mostrado na Figura 10C. NOTA: O limite do valor CT não é absoluto; depende do agente de contraste usado, tamanho do animal, cepa, condição de saúde e tempo entre a injeção e a tomografia computadorizada. Amide é um software distribuído gratuitamente desenvolvido em nosso instituto, mas outros visualizadores de imagens mais sofisticados estão disponíveis (por exemplo, ORS Dragonfly22).</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Schambach, S. J., Bag, S., Schilling, L., Groden, C., Brockmann, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+micro-CT+in+small+animal+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Application of micro-CT in small animal imaging.</a> Methods. 50 (1), 2-13 (2010).</li>
<li>Koba, W., Jelicks, L. A., Fine, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MicroPET%2FSPECT%2FCT+imaging+of+small+animal+models+of+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">MicroPET/SPECT/CT imaging of small animal models of disease.</a> Am J Pathol. 182 (2), 319-324 (2013).</li>
<li>Hutchins, G. D., Miller, M. A., Soon, V. C., Receveur, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+animal+PET+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22ILAR+J%22%5BJournal%5D)">Small animal PET imaging.</a> ILAR J. 49 (1), 54-65 (2008).</li>
<li>Franc, B. L., Acton, P. D., Mari, C., Hasegawa, B. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small-animal+SPECT+and+SPECT%2FCT%3A+important+tools+for+preclinical+investigation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Nucl+Med%22%5BJournal%5D)">Small-animal SPECT and SPECT/CT: important tools for preclinical investigation.</a> J Nucl Med. 49 (10), 1651-1663 (2008).</li>
<li>Badea, C. T. H. L., Hedlund, L. W., Johnson, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micro-CT+with+respiratory+and+cardiac+gating%3A+Micro-CT+with+respiratory+and+cardiac+gating%5BTitle%5D)+AND+%22Med+Phys%22%5BJournal%5D)">Micro-CT with respiratory and cardiac gating: Micro-CT with respiratory and cardiac gating.</a> Med Phys. 31 (12), 3324-3329 (2004).</li>
<li>Guo, X., Johnston, S. M., Qi, Y., Johnson, G. A., Badea, C. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((4D+micro-CT+using+fast+prospective+gating%5BTitle%5D)+AND+%22Phys+Med+Biol%22%5BJournal%5D)">4D micro-CT using fast prospective gating.</a> Phys Med Biol. 57 (1), 257(2011).</li>
<li>Drangova, M., Ford, N. L., Detombe, S. A., Wheatley, A. R., Holdsworth, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+retrospectively+gated+quantitative+four-dimensional+%284D%29+cardiac+micro+computed+tomography+imaging+of+free-breathing+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Radiol%22%5BJournal%5D)">Fast retrospectively gated quantitative four-dimensional (4D) cardiac micro computed tomography imaging of free-breathing mice.</a> Invest Radiol. 42 (2), 85-94 (2007).</li>
<li>Blocker, S. J., Holbrook, M. D., Mowery, Y. M., Sullivan, D. C., Badea, C. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+impact+of+respiratory+gating+on+improving+volume+measurement+of+murine+lung+tumors+in+micro-CT+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">The impact of respiratory gating on improving volume measurement of murine lung tumors in micro-CT imaging.</a> PLoS One. 15 (2), e0225019(2020).</li>
<li>Bartling, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retrospective+motion+gating+in+small+animal+CT+of+mice+and+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Radiol%22%5BJournal%5D)">Retrospective motion gating in small animal CT of mice and rats.</a> Invest Radiol. 42 (10), 704-714 (2007).</li>
<li>Kuntz, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fully+automated+intrinsic+respiratory+and+cardiac+gating+for+small+animal+CT%5BTitle%5D)+AND+%22Phys+Med+Biol%22%5BJournal%5D)">Fully automated intrinsic respiratory and cardiac gating for small animal CT.</a> Phys Med Biol. 55 (7), 2069(2010).</li>
<li>Hahn, A., Sauppe, S., Lell, M., Kachelrieß, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automatic+intrinsic+cardiac+and+respiratory+gating+from+cone-beam+CT+scans+of+the+thorax+region%5BTitle%5D)+AND+%22SPIE+Proc.+Med+Imaging%22%5BJournal%5D)">Automatic intrinsic cardiac and respiratory gating from cone-beam CT scans of the thorax region.</a> SPIE Proc. Med Imaging. 9783, 200-205 (2016).</li>
<li>Maes, F., Vandermeulen, D., Suetens, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Medical+image+registration+using+mutual+information%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+IEEE%22%5BJournal%5D)">Medical image registration using mutual information.</a> Proc IEEE. 91 (10), 1699-1722 (2003).</li>
<li>Sheng, J., Chen, B., Ma, Y., Shi, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+reconstruction+approach+combining+OSEM+and+split+Bregman+method+for+low+dose+CT%5BTitle%5D)+AND+%22Biomedical+Signal+Processing+and+Control%22%5BJournal%5D)">A novel reconstruction approach combining OSEM and split Bregman method for low dose CT.</a> Biomedical Signal Processing and Control. 62, 102095(2020).</li>
<li>Romdhane, H., Cherni, M. A., Sallem, D. B. On the efficiency of OSEM algorithm for tomographic lung CT images reconstruction. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRomdhane%2C+H+%222016+Second+International+Image+Processing%2C+Applications+and+Systems+%28IPAS%29%22">2016 Second International Image Processing, Applications and Systems (IPAS)</a>. , (2016).</li>
<li>Ewald, A. J., Werb, Z., Egeblad, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+of+vital+signs+for+long-term+survival+of+mice+under+anesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb+Protoc%22%5BJournal%5D)">Monitoring of vital signs for long-term survival of mice under anesthesia.</a> Cold Spring Harb Protoc. 2, 5563(2011).</li>
<li>Suckow, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multimodality+rodent+imaging+chambers+for+use+under+barrier+conditions+with+gas+anesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Imaging+Biol%22%5BJournal%5D)">Multimodality rodent imaging chambers for use under barrier conditions with gas anesthesia.</a> Mol Imaging Biol. 11 (2), 100-106 (2009).</li>
<li>Owen, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aOwen%2C+M+%22Practical+signal+processing%22">Practical signal processing</a>. , Cambridge University Press. 81(2007).</li>
<li>Feldkamp, L. A., Davis, L. C., Kress, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Practical+cone-beam+algorithm%5BTitle%5D)+AND+%22J+Opt+Soc+Am.+A-optics+Image+Sci+Vision%22%5BJournal%5D)">Practical cone-beam algorithm.</a> J Opt Soc Am. A-optics Image Sci Vision. 1 (6), 612-619 (1984).</li>
<li>Loening, A. M., Gambhir, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AMIDE%3A+A+free+software+tool+for+multimodality+medical+image+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Imaging%22%5BJournal%5D)">AMIDE: A free software tool for multimodality medical image analysis.</a> Mol Imaging. 2 (3), 131-137 (2003).</li>
<li>Rodriguez-Molares, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+generalized+contrast-to-noise+ratio%3A+A+formal+definition+for+lesion+detectability%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Trans+Ultrason+Ferroelectr+Freq+Control%22%5BJournal%5D)">The generalized contrast-to-noise ratio: A formal definition for lesion detectability.</a> IEEE Trans Ultrason Ferroelectr Freq Control. 67 (4), 745-759 (2020).</li>
<li>Patterson, M. S., Foster, F. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+improvement+and+quantitative+assessment+of+B-mode+images+produced+by+an+annular+array%2Fcone+hybrid%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrason+Imaging%22%5BJournal%5D)">The improvement and quantitative assessment of B-mode images produced by an annular array/cone hybrid.</a> Ultrason Imaging. 5 (3), 195-213 (1983).</li>
<li>Dragonfly 2022.2. , Comet Technologies Canada Inc. 
 <a target="_blank" href="https://www.theobjects.com/dragonfly">https://www.theobjects.com/dragonfly</a> (2022).</li>
<li>Pillai, I. C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+fibroblasts+adopt+osteogenic+fates+and+can+be+targeted+to+attenuate+pathological+heart+calcification%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Cardiac fibroblasts adopt osteogenic fates and can be targeted to attenuate pathological heart calcification.</a> Cell Stem Cell. 20 (2), 218-232 (2017).</li>
<li>Li, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+humanized+monoclonal+antibody+targeting+an+ectonucleotidase+rescues+cardiac+metabolism+and+heart+function+after+myocardial+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Rep+Med%22%5BJournal%5D)">A humanized monoclonal antibody targeting an ectonucleotidase rescues cardiac metabolism and heart function after myocardial infarction.</a> Cell Rep Med. 5 (11), 101795(2024).</li>
<li>Nadkarni, R., Clark, D. P., Allphin, A. J., Badea, C. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigating+deep+learning+strategies+for+fast+denoising+of+5D+cardiac+photon-counting+micro-CT+images%5BTitle%5D)+AND+%22Phys+Med+Biol%22%5BJournal%5D)">Investigating deep learning strategies for fast denoising of 5D cardiac photon-counting micro-CT images.</a> Phys Med Biol. 69 (20), 205010(2024).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Camundongos C57BL/6J</td><td>Jackson Laboratory</td><td>664</td><td>Macho, 8 semanas de idade, 24-26 g</td></tr><tr><td>Câmera Dexela</td><td>Varex</td><td>1512</td><td>Detector, exposição de 20 ms, 74,8/149,6 &micro; Agente</td></tr> de <tr>contraste <td>Nanoprobes</td><td>1301-5X0.25ML CT Nanoprobes 1301-5X0.25ML</td><td></td><td></td></tr><tr><td>com pixel</td><td>M Moxtek</td><td>TUB00082</td><td>pico de 50 kV, 200 e micro; A, filtro de Al de 1,0 mm de espessura</td></tr></tbody></table>

gating cardíaco retrospectivo com um protótipo de tomógrafo computadorizado de raios-x de pequenos animais

Retrospective Cardiac Gating with A Prototype Small-Animal X-ray Computed Tomograph

Primeiro, comparamos imagens de TC não fechadas e fechadas para visualização de calcificação cardíaca em camundongos (machos, 30-32 g). O modelo murino de calcificação cardíaca foi criado pela indução de lesão cardíaca por congelamento e descongelamento rápido do tecido cardíaco (criolesão), conforme descrito anteriormente23. Com os protocolos de imagem de TC não fechados, as calcificações cardíacas foram mais claramente identificadas na imagem de alta resolução (125 μm, binning 1) (<strong class=...

Gating cardíaco retrospectivo com um protótipo de tomógrafo computadorizado de raios-X de pequenos animais

The CrumpCAT is a prototype small-animal X-ray computed tomography (CT) scanner developed at our research institution. The CMOS detector with a maximum ...

retrospective-cardiac-gating-with-prototype-small-animal-x-ray

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Tomografia de fluorescência difusa oferece uma abordagem de custo relativamente baixo e com elevado potencial de todo a...

Tomografia Computadorizada guiada por tomografia difusa no domínio do tempo de fluorescência em pequenos animais para localização de biomarcadores de câncer

A ressonância magnética cardíaca maior contraste (CMR) permite...

Avaliação da função cardíaca e Morfologia do miocárdio Usando Pequenos Animais Inversion Recovery Olha-locker (SALLI) MRI em ratos

Descrevemos como realizar imagens de ressonância magnética e PET do coração do camundongo. O protocolo é adaptado para avaliar a eficácia do tratamento em modelos de infarto do miocárdio e insuficiência cardíaca.

Ressonância magnética e PET no rato modelos de Infarto do Miocárdio

Este método descreve o uso da Microtomografia Computadorizada Quântica (MicroCT) para avaliar a morfologia, função, perfusão, metabolismo e viabilidade cardíaca com contraste iodado em camundongos com isquemia miocárdica induzida experimentalmente. A técnica pode ser aplicada para imagens longitudinais in vivo não destrutivas de alto rendimento de vários modelos animais de doenças cardíacas humanas.

In Vivo quantitativa Avaliação da Estrutura do miocárdio, função, perfusão e viabilidade Usando Cardiac Micro-Tomografia Computadorizada

Aqui um protocolo para a amostragem contínua do sangue durante a imagem latente de PET/CT dos ratos para medir a função de entrada arterial (AIF) é descrito. O cateterismo, a calibração e a configuração do sistema e a análise dos dados da radioatividade sanguínea são demonstrados. Os dados gerados fornecem parâmetros de entrada para a modelagem Biocinética subsequente.

A amostragem contínua do sangue no tomography de emissão de Positron animal pequeno/tomography computado permite a medida da função de entrada arterial

A gating respiratória ideal baseada em amplitude (ORG) remove efetivamente o desfoque de movimento induzido respiratório das imagens clínicas 18F-fluorodeoxyglucose (FDG) de emissão de pósitrons (PET). A correção das imagens FDG-PET para esses artefatos de movimento respiratório melhora a qualidade da imagem, o diagnóstico e a precisão quantitativa. A remoção de artefatos de movimento respiratório é importante para o manejo clínico adequado dos pacientes que utilizam PET.

Gerenciamento de artefatos de movimento respiratório em 18tomografias de emissão de pósitrons f-fluorodeoxyglucose usando um algoritmo de gating respiratório ideal baseado em amplitude

Aqui, apresentamos um protocolo para obter imagens de tomografia micro computada de alta resolução de corações integrais saudáveis e patológicos de grandes mamíferos com aprimoramento de contraste seletivo de colágeno.

Técnicas de preparação de tecidos para imagens de tomografia microcomputante aprimorada de contraste de grandes modelos cardíacos de mamíferos com doença crônica

Aqui, apresentamos um protocolo de imagem experimental para a quantificação da função cardíaca e morfologia utilizando tomografia por emissão de pósitrons de alta resolução/tomografia computadorizada para animais de pequeno porte. Tanto camundongos quanto ratos são considerados, discutindo os diferentes requisitos de agentes de contraste da tomografia computadorizada para as duas espécies.

Tomografia por Emissão de Pósitrons Cardíacos de Alta Resolução/Tomografia Computadorizada para Animais de Pequeno Porte

Neste protocolo, discutimos a implementação de um modelo de transplante ortotópico de fígado (THO) bem-sucedido em camundongos. Além disso, são discutidos também os adjuvantes para analisar melhor a patência do aloenxerto após o sucesso do TOL em camundongos, especificamente utilizando exames de microtomografia computadorizada (microTC).

Transplante Ortotópico de Fígado em Camundongos Utilizando Angiotomografia Microcomputadorizada

Este artigo descreve a radiossíntese, formulação, controle de qualidade de uma nova sonda radiomarcada (ou seja, nanocorpo NM-02 marcado com 68Ga) e seu uso para imagens de PET/CT de pequenos animais em um modelo de xenoenxerto.

Radiossíntese, controle de qualidade e imagens de tomografia por emissão de pósitrons de pequenos animais de 68nanomoléculas marcadas com Ga

Aprenda a técnica de gating cardíaco retrospectivo para tomografia computadorizada de pequenos animais usando o protótipo CrumpCAT. Este método por software melhora a relação contraste-ruído e permite quantificar o volume do ventrículo esquerdo em roedores.

Gating cardíaco retrospectivo com um protótipo de tomógrafo computadorizado de raios-X de pequenos animais

Explorar mais vídeos