Name: Estudo Comparativo sobre o Conteúdo de Polissacarídeos e Atividades Antioxidantes de Hippophae rhamnoides subsp. sinensis e Hippophae gyantsensis (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-08-15T14:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 3 s
Description: Aprenda a comparar o conteúdo de polissacarídeos e atividades antioxidantes de Hippophae rhamnoides subsp. sinensis e Hippophae gyantsensis. Este método auxilia na avaliação de qualidade e aplicações farmacêuticas.

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1. Amostras e materiais
<ol>
	<li>Colete amostras de espinheiro-mar de diferentes Hippophae do planalto Qinghai-Xizang. NOTA: As amostras foram identificadas pelo Professor Associado Yue Liu, da Universidade de Medicina Tradicional Chinesa de Chengdu. Amostras de vouchers foram depositadas na Escola de Medicina Étnica da Universidade de Medicina Tradicional Chinesa de Chengdu. As informações amostrais são apresentadas na Tabela 1. Os detalhes dos reagentes e equipamentos usados neste estudo estão listados na Tabela de Materiais.</li>
	<li>Secar as amostras numa estufa a 40 °C durante 72 h.</li>
	<li>Triture 20 g de cada amostra de espinheiro marítimo em pó e passe-a por uma peneira nº 3. Processe cada amostra com três réplicas paralelas. Continue a esmagar as amostras que não passaram pela peneira e, em seguida, peneire-as até que todas tenham sido peneiradas.</li>
	<li>Armazene as amostras a -20 °C para estudos de acompanhamento.</li>
</ol>
2. Extração de polissacarídeos de espinheiro-mar
NOTA: Este estudo adotou o método de extração previamente estabelecido para o espinheiro-mar com algumas modificações para a obtenção de polissacarídeos30.
<ol>
	<li>Pesar 5,0 g de pó de amostra de espinheiro-mar e colocá-lo num balão de fundo redondo de 250 ml. Adicionar 50 ml de etanol anidro ao pó e deixá-lo de molho à temperatura ambiente (RT; 25 °C) durante 24 h para remover os componentes lipofílicos. Processe cada amostra com três réplicas paralelas.</li>
	<li>Filtrar o pó da amostra, que foi embebido durante a noite, utilizando um funil de Buchner e, em seguida, rejeitar o filtrado para obter o resíduo do filtro. Lave o resíduo do filtro três vezes com 50 mL de água deionizada e seque-o a um peso constante a 40 °C.</li>
	<li>Transferir o resíduo filtrante desengordurado para um balão seco de fundo redondo de 250 ml, adicionar 150 ml de água desionizada numa proporção sólido/líquido de 1:30 (g/ml) e efectuar a extracção do refluxo em banho-maria a 80 °C duas vezes durante 2 h de cada vez. Separar o filtrado para obter a solução bruta de polissacárido de espinheiro-mar.</li>
	<li>Concentrar o extracto utilizando um evaporador rotativo a 50 °C durante 1,5 h. Conservar a solução concentrada no frigorífico a 4 °C para utilização posterior.</li>
	<li>Adicionar o reagente Sevage (CHCl3:C4H9OH = 4:1, v:v) à solução de polissacárido bruto numa relação de volume de solução de polissacarídeo bruto de 1:4 reagente Sevage: solução de polissacarídeo bruto de 1:4. Agite a mistura com um agitador magnético a uma velocidade de 1050 rpm por 20 min.</li>
	<li>Transfira o líquido para um tubo de centrifugação de 50 mL e centrifugue-o a 4000 × g por 15 min, depois colete o sobrenadante. Repetir a operação acima três vezes até que não apareça nenhum precipitado floculante branco na interface entre as duas fases.</li>
	<li>Concentre o extrato de polissacarídeo de espinheiro-mar após a remoção da proteína. Adicionar etanol anidro numa proporção de volume de 1:3 para a precipitação de etanol anidro e colocar a mistura a 4 °C durante a noite.</li>
	<li>Remova a camada superior de etanol anidro, transfira a mistura para um tubo de centrifugação de 50 mL e centrifugue-o a 4000 × g por 15 min para obter o precipitado. Liofilizar o precipitado para obter polissacarídeos totais.</li>
	<li>Calcule os rendimentos totais de polissacarídeos usando a Equação (1) abaixo: 
	<img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/68855/68855eq01.jpg" style="margin: auto;"> NOTA: Na Equação (1), m representa o peso (g) dos polissacarídeos do espinheiro-mar e M representa a massa (g) da amostra de espinheiro-mar.</li>
</ol>
3. Determinação do teor de polissacarídeos
<ol>
	<li>Preparação da solução<ol>
		<li>Preparação da solução reagente de fenol<ol>
			<li>Pesar com precisão 3 g de fenol e transferi-los para um balão volumétrico marrom. Adicione 50 mL de água deionizada para dissolver o fenol.</li>
			<li>Agite bem a mistura até ficar homogênea. Rotular o balão e guardá-lo para utilização posterior.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Preparação da solução-padrão de glicose<ol>
			<li>Pesar com precisão 10 mg de glicose anidra e transferi-los para um balão volumétrico de 10 ml. Adicione água deionizada para dissolver a glicose e agite bem a mistura.</li>
			<li>Diluir a mistura até o volume desejado com água deionizada para obter uma solução padrão de glicose.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Preparação da solução da amostra para análise.<ol>
			<li>Pesar com precisão 5 mg de polissacarídeos liofilizados de espinheiro-mar (ZG1-ZG5 e JZ1-JZ5) em frascos volumétricos (n = 10). Adicione água deionizada a cada frasco até um volume final de 50 mL.</li>
			<li>Sonicar a mistura durante 20 min até que os polissacáridos estejam completamente dissolvidos. Processe cada amostra com três réplicas paralelas.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Construção da curva padrão NOTA: No método fenol-ácido sulfúrico, os polissacarídeos reagem com o ácido sulfúrico concentrado para gerar derivados de furfural, que então se condensam com fenol para formar um composto amarelo-alaranjado. O comprimento de onda máximo de absorção deste composto é de aproximadamente 490 nm. Portanto, o comprimento de onda de detecção para este experimento foi definido em 490 nm22.<ol>
		<li>Dilua a solução padrão de glicose com água deionizada até uma concentração de 0,1 mg / mL. Usando uma micropipeta, transfira cuidadosamente 200, 300, 400, 500, 600 e 700 μL da solução padrão de glicose para seis tubos de ensaio limpos separados. Adicione água pura a um volume total de 1,0 mL e, em seguida, misture suavemente cada solução para garantir uma diluição uniforme.</li>
		<li>Adicione 1,0 mL de solução de fenol a 6% e 5,0 mL de ácido sulfúrico aos tubos de ensaio mencionados acima. Misture bem, deixe esfriar e deixe descansar em RT por 30 min. NOTA: O fenol é um composto químico tóxico e o ácido sulfúrico concentrado é corrosivo. Luvas devem ser usadas ao preparar soluções de fenol e ácido sulfúrico, e o procedimento deve ser realizado dentro de uma capela.</li>
		<li>Transfira as amostras acima mencionadas para cubetas e use água pura como um branco em vez da amostra. Medir a sua absorvância a 490 nm com um espectrofotómetro UV-Vis e três réplicas.</li>
		<li>Traçar a curva padrão com as concentrações de glicose como eixo x e os valores de absorvância como eixo y. Obter a equação de regressão e calcular o coeficiente de correlação (R²). NOTA: O espectrofotômetro UV-Vis deve ser pré-aquecido com meia hora de antecedência. Ao medir a absorbância nesta etapa, a absorbância deve estar entre 0,2 e 0,8. Portanto, a concentração da amostra precisa ser quantificada.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Estudo metodológico<ol>
		<li>Teste de precisão:<ol>
			<li>Tomar JZ2 e preparar a solução de ensaio de acordo com o método descrito no passo 3.1.3. Realize a colorimetria de fenol-ácido sulfúrico seguindo o método descrito na etapa 3.2.2.</li>
			<li>Em seguida, determinar a absorvância de acordo com o procedimento descrito no passo 3.2.3. Repita este procedimento seis vezes e calcule o desvio padrão relativo (RSD).</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Teste de estabilidade:<ol>
			<li>Preparar a solução de amostra JZ2 seguindo o método descrito no passo 3.1.3. Às 0, 2, 4, 6, 8 e 10 h após a preparação da amostra, realizar a colorimetria de ácido fenol-sulfúrico de acordo com o método especificado na etapa 3.2.2.</li>
			<li>Em seguida, determine a absorbância seguindo o procedimento descrito na etapa 3.2.3 e calcule o RSD.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Teste de repetibilidade:<ol>
			<li>Preparar a solução de amostra JZ2 seguindo o método descrito no passo 3.1.3. Preparar seis réplicas em paralelo. Realizar colorimetria de ácido fenol-sulfúrico de acordo com o método especificado na etapa 3.2.2.</li>
			<li>Em seguida, determine a absorbância seguindo o procedimento descrito na etapa 3.2.3 e calcule o RSD.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Teste de recuperação:<ol>
			<li>Tomar JZ2 e preparar a solução de ensaio de acordo com o método descrito no passo 3.1.3. Preparar nove réplicas em paralelo. Adicione as soluções de referência equivalentes a 80%, 100% e 120% do teor total de polissacarídeos na amostra e prepare três amostras paralelas.</li>
			<li>Efectuar a colorimetria de fenol-ácido sulfúrico de acordo com o método especificado no passo 3.2.2. Em seguida, determinar a absorbância seguindo o procedimento descrito no passo 3.2.3 e calcular a taxa de recuperação utilizando a equação (2). 
			<img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/68855/68855eq02.jpg" style="margin: auto;"> NOTA: Na Equação (2), A representa a quantidade de glicose na solução de amostra de espinheiro, B representa a quantidade de glicose adicionada e C representa o valor medido da solução contendo glicose e a solução de amostra de espinheiro.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Determinação de conteúdo<ol>
		<li>Preparar a solução da amostra como descrito no passo 3.1.3 e efectuar a colorimetria do ácido fenol-sulfúrico em conformidade com o método especificado no passo 3.2.2.</li>
		<li>Determinar a absorvância seguindo o procedimento descrito no passo 3.2.3 e calcular o teor de polissacáridos utilizando o método da curva padrão. Execute essas operações em paralelo três vezes para cada amostra.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. Atividade de sequestro de radicais DPPH 31,32
<ol>
	<li>Pesar com precisão 2,7 mg de DPPH em um balão volumétrico vazio de 50 mL. Dissolva-o em 50 mL de etanol anidro para preparar uma solução-mãe de DPPH com concentração de 0,054 mg/mL e obter a solução de trabalho de DPPH. NOTA: A solução de DPPH deve ser armazenada no escuro.</li>
	<li>Pese com precisão 5 mg de vitamina C (Vc) em um frasco volumétrico vazio de 10 mL e dissolva-o em 10 mL de água deionizada para preparar uma solução de Vc com concentração de 0,5 mg/mL. Dilua-o sucessivamente para preparar soluções de teste de Vc com concentrações de 0,5, 0,125, 0,03125, 0,0078125 e 0,001953 mg / mL.</li>
	<li>Pese com precisão 5 mg de cada polissacarídeo de espinheiro-mar (ZG1-ZG5 e JZ1-JZ5). Dissolva cada amostra em 10 mL de água deionizada para preparar soluções de amostra de polissacarídeo de espinheiro-mar com uma concentração de 0,5 mg/mL. Diluir as soluções acima sucessivamente para preparar soluções de teste de polissacarídeos de espinheiro-mar com concentrações de 0,5, 0,125, 0,03125, 0,0078125 e 0,001953 mg / mL.</li>
	<li>Usando a solução de DPPH como substrato, prepare os seguintes grupos em uma placa de 96 poços: grupo de controle negativo A0 (150 μL de água e 50 μL de solução de DPPH), grupo de amostra A1 (150 μL de amostra ou solução de Vc e 50 μL de solução de DPPH) e grupo de controle de amostra A2 (150 μL de amostra e 50 μL de etanol anidro). Execute este procedimento em triplicado.</li>
	<li>Deixe a reação prosseguir por 30 minutos no escuro. Em seguida, meça a absorbância a 517 nm. Repita o experimento três vezes e calcule a taxa de eliminação de radicais livres DPPH usando a Equação (3). NOTA: A absorbância da solução de DPPH deve ser mantida em 0,7 ± 0,02. Concentrações excessivamente altas e baixas podem levar a leituras de absorbância imprecisas, afetando assim os resultados experimentais finais. 
	<img alt="Equation 3" src="/files/ftp_upload/68855/68855eq03.jpg" style="margin: auto;"> Na Equação (3), A0 é a absorbância da água deionizada e da solução de DPPH, A1 é a absorbância da amostra ou solução de Vc e DPPH e A2 é a absorbância da amostra e do etanol anidro.</li>
	<li>Cálculo da concentração semi-inibitória (Ic50)<ol>
		<li>Gere uma tabela de dados visualmente organizada ilustrando a correlação entre as concentrações do composto de teste de reação (0,5, 0,125, 0,03125, 0,0078125 e 0,001953 mg / mL) e seus valores percentuais de reação correspondentes.</li>
		<li>Use o ajuste de curva não linear (com o GraphPad Prism) para determinar o IC50 e o erro padrão.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

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<li>Zhou, S. Y., Huang, G. L., Huang, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extraction%2C+derivatization+and+antioxidant+activities+of+onion+polysaccharide%5BTitle%5D)+AND+%22Food+Chem%22%5BJournal%5D)">Extraction, derivatization and antioxidant activities of onion polysaccharide.</a> Food Chem. 388, 133000-133009 (2022).</li>
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<li>Li, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization%2C+antioxidant+and+immunomodulatory+activities+of+polysaccharides+from+Prunella+vulgaris+Linn%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Biol+Macromol%22%5BJournal%5D)">Characterization, antioxidant and immunomodulatory activities of polysaccharides from Prunella vulgaris Linn.</a> Int J Biol Macromol. 75, 298-305 (2015).</li>
<li>Cao, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physicochemical+characterization%2C+potential+antioxidant+and+hypoglycemic+activity+of+polysaccharide+from+Sargassum+pallidum%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Biol+Macromol%22%5BJournal%5D)">Physicochemical characterization, potential antioxidant and hypoglycemic activity of polysaccharide from Sargassum pallidum.</a> Int J Biol Macromol. 139, 1009-1017 (2019).</li>
<li>Li, Q. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+study+on+structure-function+relationship+of+polysaccharides+obtained+from+sea+buckthorn+berries+using+different+methods%3A+antioxidant+and+bile+acid-binding+capacity%5BTitle%5D)+AND+%22Food+Sci+Hum+Wellness%22%5BJournal%5D)">A comparison study on structure-function relationship of polysaccharides obtained from sea buckthorn berries using different methods: antioxidant and bile acid-binding capacity.</a> Food Sci Hum Wellness. 13 (1), 494-505 (2024).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Balança analítica (com precisão de 0,0001 g)</td><td>Sartorius Scientific Instruments (Beijing) Co., Ltd.</td><td>BSA224S-CW</td><td></td></tr><tr><td>Balança analítica (com precisão de 0,00001 g)</td><td>Sartorius Scientific Instruments (Beijing) Co., Ltd.</td><td>CPA225D</td><td></td></tr><tr><td>Centrífuga de bancada de baixa velocidade</td><td>Shanghai Zigui Instrument Co., Ltd.</td><td>TD4K-Z</td><td></td></tr><tr><td>DPPH</td><td>Shanghai Yuanye Bio-Technology Co., Ltd.</td><td>CAS 1898-66-4</td><td></td></tr><tr><td>Etanol</td><td>Chengdu Kelong Chemical Products Co., Ltd.</td><td>CAS 64-17-5</td><td></td></tr><tr><td>Tubo EP</td><td>Hunan BKMAK Holding Co., Ltd.</td><td>BS-20-M</td><td>2 mL</td></tr><tr><td>Liofilizador</td><td>Corporação Labconco</td><td>LABCONCO</td><td></td></tr><tr><td>Glicose anidra</td><td>Chengdu Kelong Chemical Products Co., Ltd.</td><td>CAS 50-99-7</td><td>Padrão de referência</td></tr><tr><td>GraphPad&nbsp; Prim 9.5.0&nbsp;</td><td>GraphPad Software</td><td>N/A</td><td>Determine o valor IC50 e o valor P.</td></tr><tr><td>Forno de secagem de circulação de ar quente</td><td>Shanghai Yiheng Technology Instrument Co., Ltd.</td><td>NB-DGG-9070A</td><td></td></tr><tr><td>Ácido L-ascórbico</td><td>Beijing Labgic Technology Co., Ltd.</td><td>CAS 50-81-7</td><td>Medicamento de controle positivo</td></tr><tr><td>Leitor de microplacas</td><td>Shanghai Shanpu Biotechnology Co., Ltd.</td><td>Leia Max 1500</td><td></td></tr><tr><td>Placa de 96 poços</td><td>Beijing Labgic Technology Co., Ltd.</td><td>11512</td><td></td></tr><tr><td>OriginPro 2025</td><td>Laboratório de Origem</td><td>N/A</td><td>Criar um gráfico de linhas de taxa de liberação</td></tr><tr><td>PONTAS DE PIPETA</td><td>Beijing Labgic Technology Co., Ltd.</td><td>BS-200-T</td><td>200 &mu; L</td></tr><tr><td>PONTAS DE PIPETA</td><td>Beijing Labgic Technology Co., Ltd.</td><td>T-1000-B</td><td>1000 &mu; L</td></tr><tr><td>Fenol</td><td>Chengdu Kelong Chemical Products Co., Ltd.</td><td>CAS 108-95-2</td><td></td></tr><tr><td>Evaporador rotativo</td><td>&nbsp; BUCHI Equipamentos de Laboratório Trading (Xangai) Ltd.</td><td>Buchi R-100</td><td></td></tr><tr><td>Tipo padrão sistema do reagente puro da água</td><td>Qingdao Flom Technology Co., Ltd.</td><td>FBZ2001-up-p</td><td></td></tr><tr><td>Banho-maria com display digital termostático</td><td>Guan'an Instrumentos Científicos (Zhejiang) Co., Ltd.</td><td>WB100-6F</td><td></td></tr><tr><td>Espectrofotômetro UV-Visível</td><td>Xangai Mapada Instruments Co., Ltd.&nbsp;</td><td>V-1100D</td><td></td></tr><tr><td>Limpador ultrassônico</td><td>Fornecedor verificado - Sheng Zheng ChaoJie Industrial Co., Ltd.</td><td>CJ-060SD</td><td>Limpador ultrassônico 360 W 50 Hz</td></tr></tbody></table>

estudo comparativo sobre o conteúdo de polissacarídeos e atividades antioxidantes de hippophae rhamnoides subsp. sinensis e hippophae gyantsensis

Comparative Study on the Polysaccharide Contents and Antioxidant Activities of Hippophae rhamnoides subsp. sinensis and Hippophae gyantsensis

Rendimento de polissacarídeos brutos Os polissacarídeos foram extraídos através do HWE. O refluxo em banho-maria é mostrado na Figura Suplementar 1. A concentração da solução de extracto de polissacáridos é ilustrada na figura suplementar 2. O efeito de estratificação da centrifugação após a desproteinação é apresentado na Figura Suplementar 3. Os cinco lotes de H. rhamnoides subsp. sinensis apresentam rendimentos de polissacarídeos ...

Estudo Comparativo sobre o Conteúdo de Polissacarídeos e Atividades Antioxidantes de Hippophae rhamnoides subsp. sinensis e Hippophae gyantsensis

This paper reports a well-designed and in-depth comparative study on the polysaccharide yields, contents, and antioxidant activities of two Hippophae ...

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Research

JoVE Journal

Chemistry

Química

Apresentamos um protocolo para usar etanol como solvente para extrair e caracterizar taiwanesa própolis verde que apresenta atividade antibacteriana.

Extração e análise de própolis verde de Taiwan

Ácidos fenólicos são fitoquímicos importantes que estão presentes em grãos integrais. Possuem propriedades bioativas, como funções protetoras antioxidantes. Este trabalho teve como objetivo relatar um método generalizado para a identificação do HPLC, estimativa total de teor fenólico e determinação da capacidade antioxidante de ácidos fenólicos em cereais e leguminosas.

Um método generalizado para determinar a composição livre de ácido fenólico solúvel e capacidade antioxidante de cereais e leguminosas

O objetivo deste protocolo é detectar metabólitos fenólicos no plasma usando um método de espectrometria de massa cromatografia-masscamo semi-direcionada.

Cromatografia ultra-alta-performance semi-direcionada acoplada à análise de espectrometria de massa de metabólitos fenólicos no plasma de idosos adultos

O presente protocolo descreve as etapas de purificação e estudos subsequentes de quatro diferentes β-glucanos fúngicos como potenciais moléculas imunomoduladoras que aumentam as propriedades antitumorais da micróglia contra células de glioblastoma.

Isolamento e purificação de β-glucanas fúngicas como estratégia de imunoterapia para glioblastoma

Aqui, apresentamos um método de avaliação da estabilidade baseado na tecnologia de espalhamento múltiplo de luz para avaliar a estabilidade de extratos da medicina tradicional chinesa.

Usando Espalhamento Múltiplo de Luz para Examinar a Estabilidade de Extratos de Phyllanthus emblica L. Obtidos com Diferentes Métodos de Extração

Aqui, descrevemos vários protocolos visando uma valorização integrada de Gracilaria gracilis: colheita de espécies silvestres, crescimento interno e extração de ingredientes bioativos. Os efeitos antioxidantes, antimicrobianos e citotóxicos dos extratos são avaliados, assim como a avaliação nutricional e de estabilidade de alimentos enriquecidos com biomassa e pigmentos integrais de algas marinhas.

Valorização da Alga Vermelha Gracilaria gracilis Através de uma Abordagem de Biorrefinaria

Este protocolo detalha a utilização de um método de extração assistida por micro-ondas à base de poliol para extrair compostos fenólicos e antioxidantes naturais, representando uma abordagem prática e ambientalmente sustentável para o desenvolvimento de extratos prontos para uso.

Extração assistida por micro-ondas de compostos fenólicos e antioxidantes para aplicações cosméticas usando tecnologia baseada em poliol

Tegumento dos mamíferos contém lipídios solventes extraível que podem fornecer composições química característica de espécies individuais. Este trabalho apresenta um método de rotina para separar classes de lipídios amplas isoladas de tecidos tegumentar utilizando cromatografia em camada delgada e determinar o perfil triacilglicerídeos pelo laser de dessorção / espectrometria de massa por ionização assistida por matriz de tempo de vôo.

Perfil dos Conteúdos triacilglicerídeos em Bat Tegumentar Lipídeos por cromatografia em camada delgada preparativa e MALDI-TOF Espectrometria de Massa

Tridimensionais (3D) vigas mistas microstructured são fabricados através da infiltração dirigida e localizada de nanocompósitos em redes porosas microfluídicos 3D. A flexibilidade deste método de fabrico permite a utilização de diferentes materiais termo-endurecíveis e nanopartículas, a fim de alcançar uma variedade de 3D funcional reforçados nanocompósito produtos macroscópicos.

Fabricação de tridimensionalmente microestruturadas nanocompósitos através Microfluidic Infiltração

Os glicosídeos indoxílicos são ferramentas bem estabelecidas e amplamente utilizadas para triagem enzimática e monitoramento da atividade enzimática. Especialmente para estruturas do tipo glicose, as sínteses anteriores provaram ser desafiadoras e de baixo rendimento. Nossa nova abordagem emprega ésteres de ácido indoxílico como intermediários preciosos para produzir um número considerável de glicosídeos indoxílicos em bons rendimentos.

Síntese de Indoxil-glicosídeos para Detecção de Atividades de Glicosidase

Aprenda a comparar o conteúdo de polissacarídeos e atividades antioxidantes de Hippophae rhamnoides subsp. sinensis e Hippophae gyantsensis. Este método auxilia na avaliação de qualidade e aplicações farmacêuticas.

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