16 de janeiro de 2026
Esse protocolo experimental oferece um método estável, econômico e eficiente que combina knockdown de lncRNA com ensaios formadores de colônias para quantificar o efeito do lncRNA na proliferação celular do osteossarcoma.
Minha pesquisa foca no osteossarcoma e visa investigar como a redução do RNA de LncRNA influencia a capacidade proliferativa de longo prazo usando ensaios de informações de colônia. Para começar, semeie 5 vezes 10 até a potência de 5 células de osteossarcoma 143B em dois recipientes de cultura de 10 centímetros. Cultive as células em DMEM completo suplementado com soro fetal bovino a 10% a 37 graus Celsius em uma incubadora de dióxido de carbono de 5%.
Prepare os reagentes de transfecção 24 horas depois, incluindo plasmídeos, polietilenimina e Meio Essencial OptiMinium. Faça vórtice de cada reagente e permita que eles se equilibrem até a temperatura ambiente antes do uso. Agora, rotule quatro tubos microcentrífugas de 1,5 mililitro para plasmídeos e polietilenimina usando uma caneta marcadora.
Pipete 500 microlitros de OptiMinium Essential Medium para cada tubo. Depois, adicione 10 microgramas de plasmídeo ao tubo plasmídico correspondente e pipete 30 microlitros de polietilenimina em cada tubo. Misture cada tubo suavemente, pipetando para cima e para baixo e incube.
Agora combine cada tubo plasmídico com seu tubo correspondente de polietilenimina. Misture delicadamente e incube a mistura em temperatura ambiente por 20 minutos. Aspire suavemente o meio de cultura dos recipientes que contêm as células 143B.
Adicione sete mililitros de meio sem soro a cada prato e rotule os pratos de acordo com o plasmídeo a ser adicionado. Adicione a mistura de transfecção preparada em gota no recipiente correspondente. Adicione a mistura lentamente, em movimento circular, da borda externa em direção ao centro do prato.
Incube as células a 37 graus Celsius em uma incubadora de dióxido de carbono a 5%. Descarte o supernadante de 8 a 12 horas depois. Depois, adicione 10 mililitros de DMEM completo ao recipiente de cultura e incube.
Observe as células sob um microscópio de fluorescência 72 horas após a substituição do meio, remova o meio das placas de cultura. Adicione 1,5 mililitro de ácido tripsina-EDTA para digerir as células. As células pipetam suavemente para separar as células.
Depois, adicione cinco mililitros de meio completo para terminar a digestão. Transfira a suspensão da célula para um tubo de microcentrífuga de 15 mililitros. Depois, pipeteio 20 microlitros da suspensão celular em um hemocitômetro para contar as células.
Colete 3 vezes 10 até a potência de 5 células para extração de ácido ribonucleico e verifique a eficiência do knockdown. Agora semeie 2 vezes 10 para a potência de 3 células por poço em uma placa de seis poços. Pipete completa o DMEM até um volume final de dois mililitros.
Cultive as células a 37 graus Celsius em uma incubadora de dióxido de carbono a 5%. Monitore a formação da colônia diariamente. Interrompa a cultura quando a maioria das colônias do grupo controle contiver pelo menos 50 células ou após 10 a 14 dias de incubação.
Após descartar o sobrenadante, lave as células duas vezes com um mililitro de PBS por poço, descartando a solução após cada lavagem. Fixe as células em um mililitro de solução de formolol a 10% por 15 minutos. Descarte o fixador, depois lave as células duas vezes com um mililitro por poço de PBS.
Tinga as células com um mililitro de solução de violeta cristalina 0,5% por 10 a 30 minutos. Depois, lave suavemente o prato com água da torneira que corre lentamente. Seque as células ao ar livre em temperatura ambiente.
Capture imagens das colônias usando uma câmera. A eficiência da transfecção de células 143B foi confirmada por microscopia de fluorescência 72 horas após a transfecção, indicando entrega eficiente de plasmídeos em ambas as condições. A análise de reação RT-qPCR mostrou que a expressão de SNHG6 foi significativamente reduzida em 143 células B transfectadas com shSNHG6 em comparação com o grupo shNC.
Os ensaios de formação de colônias revelaram uma redução significativa no número e tamanho das colônias no grupo knockdown do SNHG6 em comparação com o grupo controle. Este protocolo avalia a proliferação de longa duração de células únicas, proporcionando maior relevância biológica e resultados mais definitivos do que os ensaios de proliferação metabólica de curto prazo. Estudos futuros expandirão esse protocolo para LncRNAs adicionais e modelos tumorais, a fim de explorar sistematicamente mecanismos que regulam o potencial proliferativo de células cancerígenas.
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Este protocolo experimental descreve um método para investigar o impacto do silenciamento de lncRNA na proliferação de células de osteossarcoma por meio de ensaios de formação de colônias. A abordagem foi projetada para ser estável, econômica e eficiente.
Os ensaios de formação de colônias fornecem uma plataforma robusta para avaliar a capacidade proliferativa de longo prazo de células de osteossarcoma após o silenciamento de lncRNA, informando diretamente a validação de alvos e a redução de riscos mecanicistas em pipelines de descoberta oncológica. A avaliação quantitativa da proliferação de célula única permite diferenciar com alta confiança entre alvos funcionais e não funcionais de lncRNA, apoiando decisões de portfólio ajustadas ao risco. Este fluxo de trabalho é amplamente aplicável para avaliar a proliferação regulada por lncRNA em diversos modelos tumorais, aumentando a continuidade translacional.
Este protocolo se integra ao continuum de descoberta a pré-clínico ao fornecer um método validado para avaliação funcional do alvo e leituras quantitativas do potencial proliferativo.