Бактериальная трансформация

КонцепцииПодготовка преподавателяПротокол студента
0 просмотров04:33 мин
Print Procedure Steps
Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Бактериальная трансформация
    • ВАЖНО: В дополнение к ношению соответствующих средств индивидуальной защиты, обязательно позаботьтесь о том, чтобы держать свое лицо подальше от культур суспензии и избегайте вдыхания реагентов. Не прикасайтесь к лицу во время проведения эксперимента. Всегда мойте руки до и после каждого эксперимента.
    • Когда вы будете готовы безопасно начать, убедитесь, что у вас в ведре со льдом есть пробирка или пробирки с компетентными клетками E. coli.
    • Затем перелейте 50 μL из одной из этих пробирок в каждую из двух новых микроцентрифужных пробирок, одну с маркировкой '–', а другую с маркировкой '+'.
    • Затем нанесите 2 μL плазмиды p-GREEN в пробирку плюс и аккуратно переверните пробирку, чтобы плазмида пропиталась по всему бактериальному раствору. Гипотеза: Экспериментальная гипотеза заключается в том, что на пластинах, не содержащих антибиотиков, бактерии с плазмидой или без нее могут выжить, и поэтому и те, и другие будут выращивать лужайки из бактерий. И наоборот, на планшетах, содержащих антибиотик ампициллин, будут расти только бактерии, успешно преобразованные с помощью резистентной плазмиды, в то время как минусовые плазмидные пластины не будут содержать бактерий. Нулевая гипотеза этого эксперимента заключается в том, что не будет никакой разницы в росте бактерий между пластинами.
    • Инкубируйте обе пробирки на льду.
    • Через 30 минут погрузите обе трубки на 3/4 пути в воду водяной бани с температурой 42 °C на 30 секунд.
    • В конце инкубации на водяной бане поместите пробирки обратно на лед на 5 минут, затем добавьте 950 μL среды SOC комнатной температуры в каждую пробирку.
    • Инкубируйте пробирки в шейкере при температуре 37 °C в течение 60 минут при 250 оборотах в минуту.
    • Пока трубки инкубируются, обозначьте дно одного LB и одного LB/ампициллина, или AMP-пластины, "+ плазмида", а дно одной LB-пластины и одной LB/AMP-пластины "- плазмида".
    • В конце инкубации нанесите 50 μL из клеточной пробирки "+ plasmid" на планшет LB/AMP plus и планшет LB plus.
    • Затем, с помощью свежего наконечника, добавьте 50 μL бактерий, которые не подвергались воздействию плазмиды, в каждую из минусовых пластин.
    • Затем распределите каждую пластину с помощью свежего наконечника для пипетки.
    • Накройте пластины крышками, а затем запечатайте их лабораторной пленкой.
    • Затем храните тарелки вверх дном в инкубаторе при температуре 37 °C в течение 24 часов.
  2. Результаты <кнопка class="expand">Expand
    • На следующий день после трансформации понаблюдайте, на каких пластинах есть бактерии, и как бактерии распределены по каждой пластине.
    • Запишите количество колоний и цвет колоний для различных условий. Нажмите здесь, чтобы скачать таблицу 1
    • Чтобы определить начальную массу, IM, плазмиды, сначала умножьте концентрацию плазмиды из стандартной пробирки p-GREEN на объем, переданный в экспериментальную пробирку.
    • Чтобы рассчитать, сколько ДНК нанесено на каждую пластину, разделите объем бактериальной суспензии, нанесенной на каждую пластину, на объем суспензии в пробирке, и умножьте эту фракцию на начальную массу используемой плазмиды.
    • Чтобы определить эффективность трансформации, подсчитайте все заметно различимые колонии на плюсовой плазмидной пластине LB/AMP и разделите это число на массу распространения плазмиды. ПРИМЕЧАНИЕ: Единицей эффективности трансформации является КОЕ/мкг плазмидной ДНК.
    • Запишите все результаты для каждой пластины в таблице и проанализируйте их.
    • Наблюдайте за любыми различиями между колониями и выдвигайте гипотезы, чтобы объяснить это наблюдение. Рассмотрим факторы, которые могут повлиять на эффективность трансформации компетентных бактерий.
    • ПРИМЕЧАНИЕ: Вы также заметили, что у каждой пластины был разный результат. Пластины с минусовой плазмидой и плюс плазмидой LB должны были вырастить много бактерий на своих пластинах. На минусовой плазмидной пластине LB/AMP не должно быть роста бактерий. И планшет с плюсовой плазмидой LB/AMP должен был вырастить колонии бактерий, которые флуоресцировали зеленым цветом.

Browse More Videos

LB