Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Multi-Параметрический Островок Perifusion системы в микрожидкостных устройств Perifusion

11.5K просмотров

DOI:

10.3791/1649

26 января 2010 г.

В этой статье

Краткое содержание

Микрожидкостных устройств perifusion островок был разработан для оценки динамических секреции инсулина несколько островков и одновременное флуоресценции притока кальция и митохондриальной возможных изменений.

Аннотация

Микрожидкостных устройств perifusion островок был разработан для оценки динамических секреции инсулина несколько островков и одновременное флуоресценции притока кальция и митохондриальной возможных изменений. Устройство состоит из трех слоев: первый слой содержит массив микромасштабной скважин (500 мкм и диаметром 150 мкм глубина), которые помогают обездвижить островков в то время как воздействию потока и максимально открытой площади островков, второй слой содержит круговой perifusion камеры (3 мм в глубину, 7 мм в диаметре), а третий слой содержит приточно-смешивание канала, который поклонники до введения в perifusion камеры (2 мм в ширину, 19 мм в длину и 500 мкм в высоту) для оптимизации эффективность перемешивания перед входом perifusion камеры. Создание различных градиентов глюкозы в том числе линейных, форму колокола, и квадратные формы также могут быть созданы в микрожидкостных сети perifusion и продемонстрировал.

Протокол

А. микротехнологий из 3-х слойные устройство perifusion микрожидкостных

Нижняя Ну Мастер протокола (150 мкм глубоких скважин)

  1. Чистая пластины использованием лезвие в случае необходимости. Очистите ацетон, метанол, и МПА. Выполните плазменной обработки на 50 Вт в течение 30 сек
  2. Спиновые SU8-100 @ 2000 оборотов в минуту. [Шаг 1: 500 оборотов в минуту, 10 с, 100 об / с, Шаг 2: 2000 оборотов в минуту, 30 с, 300 об / с].
    [Примечание: не держите пластины с помощью пинцета после вращения SU8]
  3. Мягкие выпекать пластины при температуре 65 ° С в течение 20 мин, а при 95 ° С в течение 50 мин.
  4. Пластины под действием УФ света через желаемую маску. Доза для 150 мкм высота составляет 650 мДж / см 2.
  5. Сообщение экспозиции выпекать пластины при температуре 65 ° С в течение 1 мин, а при 95 ° С в течение 12 мин.
  6. Разработка пластин в SU8 разработчика в течение 15 мин.

Microchannel Мастер протоколу (500 мкм глубоких скважин)

  1. Чистая пластины использованием лезвие в случае необходимости. Очистите ацетон, метанол, и МПА. Выполните плазменной обработки на 50 Вт в течение 30 сек
  2. Спиновые SU8-2150 @ 1000 оборотов в минуту. [Шаг 1: 500 оборотов в минуту, 10 с, 100 об / с, Шаг 2: 1000 оборотов в минуту, 30 с, 300 об / с].
  3. Мягкие выпекать пластины при температуре 65 ° С в течение 15 мин, а при 95 ° С в течение 2 часов и 30 минут.
  4. Пластины под действием УФ света через желаемую маску. Экспозиционной дозы на 650 мкм, высота 685 мДж / см 2.
  5. Сообщение экспозиции выпекать пластины при температуре 65 ° С в течение 5 мин, а при 95 ° С в течение 35 минут.
  6. Разработка пластин в SU8 разработчика в течение 20-30 мин.

PDMS приготовления раствора

  1. Полидиметилсилоксан (PDMS) раствор готовят тщательного перемешивания 10 частей силиконового эластомера с 1 частью отвердителя стандартного Sylgard 184 комплекта.
  2. Пузырьками генерируется в решение PDMS в процессе смешивания происходит с помощью вакуум-эксикаторе.
  3. Без пузырей решение PDMS медленно обойтись на SU8 мастеров и пустые чашки Петри для третьего слоя.
  4. Температура горячей пластине установлен до 75 ° С и PDMS лечится при этой температуре в течение 2 часов
  5. Входы, выходы и обмен скважин штампуют используя соответствующий размер отверстия перфоратором.
  6. Слои соединены вместе на предметное стекло (размер 0,1 мм) с помощью портативного устройства плазмы.

Б. Экспериментальная установка

  1. Поток 70% этанола через микро-устройства для стерилизации. Поток DI воды, чтобы смыть этанола. Заливать 50 мл 0,5% BSA через устройство для предотвращения неспецифической адсорбции инсулина микроканальных стен.
  2. Градиент глюкозы рампы и другие связанные с градиентами порожденных LabView программное обеспечение, которое взаимодействует с шприцевые насосы проходят тестирование, чтобы убедиться, градиенты являются стабильными.
  3. 25-30 мышей островки инкубировали с 5 мкМ Fura-2/AM (кальций показатель, Молекулярные зонды, CA) и 2,5 мкМ родамина 123 (Rh123, митохондриальная Индикатор потенциалов, Sigma, MO) в течение 30 мин при 37 ° С в Кребс-Рингер буфер (KRB), содержащий 2 мМ глюкозы
  4. Мышей островков тщательно пипеткой в ​​микрожидкостных устройств perifusion через входное отверстие.
  5. Микрожидкостных сеть, то установку, подключив входе шприцевые насосы использованием трубки Tygon и Y-разъем и выход на долю коллектора. Устройство сидит на стадии нагрева (37 ° С) на микроскоп и впускной трубы нагревают на плите, чтобы поддерживать температуру в камере и раствора при температуре 37 ° C.
  6. Сразу же после установки, мышей островки perifused с KRB, содержащий 2 мМ глюкозы в течение 10 мин, а затем глюкозы рампы (2 мм 25 мм) в течение 25 мин.
  7. Покадровый изображения собраны и проанализированы каждые 15 с программным обеспечением SimplePCI. Perifusate также собираются каждую минуту с использованием фракция коллектор для анализа секреции инсулина использованием ИФА.

Представитель Результаты

Мышь островки были perifused с линейным градиентом 2-25 мМ глюкозы. Как показано на рисунке 1, приток кальция и секрецию инсулина срабатывает примерно через 13 минут perifusion, что соответствует 6 мМ глюкозы. Изменения в митохондриальной потенциалы видели ранее, как ожидается, около 11 минут. Эти данные демонстрирует преимущество использования этой микрожидкостных сети, чтобы охарактеризовать островок физиологии.

Рисунок 1
Рисунок 1. Физиологические ответы на островковых клеток стимуляции.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Традиционные островок perifusion систем (макроуровне и микромасштабной) имеют некоторые ограничения в том числе сложные настройки и дизайн, высокие технические требования, а также трудности для создания пользовательских предписано химические градиенты в системе. Микрожидкостных системы perifusion описанные здесь преодолевает эти ограничения с простой геометрией проектирование и изготовление. Что более важно, эта система может быть интегрирована с флуоресценции подход изображений, которые обеспечивают как уникальный инст...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Благодарности

Эта работа была поддержана AAUW международной стипендии Adeola Adewola, NIH / NCRR (U42RR023245) Хосе Оберхольцером, и проект Чикаго диабета.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Шприцы 60mlBD Biosciences
Флуоресцентный краситель Fura-2Molecular Probes, Life Technologies
Флуоресцентный краситель Rhodamine123Molecular Probes, Life Technologies
ГлюкозаSigma-Aldrich
Бычий сывороточный альбуминSigma-Aldrich
Силиконовые трубки 30"Cole-Parmer1/16 x 1/8in
Пробирки Эппендорф 1.5mlFisher Scientific
Y-образные соединителиCole-Parmer1/16” & 4mm
Соединители для шприцевCole-Parmerразъем Luer female 1/16”
Прямые соединителиCole-Parmer1/16”
Угловой соединительCole-Parmer1/16”
Шприцевой насос HavardHarvard Apparatus
Устройство для перифузии
Плитка нагревательнаяPMC
ТермометрOmega Engineering, Inc.
Фракционирующий коллекторGibson
ДозаторFisher Scientific
Инвертированный эпифлуоресцентный микроскопOlympus CorporationIX71
ПЗС-камера (CCD)QImagingRetiga-SRV, Fast 1394

Ссылки

  1. Mohammed, J. S., Wang, Y., Harvat, T. A., Oberholzer, J., Eddington, D. T. Microfluidic device for multimodal characterization of pancreatic islets. Lab Chip. 9, 97-106 (2009).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Анализ секреции инсулинавизуализация притока кальцияизмерение митохондриального потенциалапрофили градиента глюкозылунки для иммобилизации островковустановка для флуоресцентной микроскопиисистема фракционного коллекторауправление шприцевым насосомсборка устройства из ПДМС