Описание процедуры:
Используя этот подход, белков клеточной поверхности, которые ковалентно меченные биотином По имеющейся внеклеточной остатков лизина использованием мембраны impermeant, дисульфид-связанных биотинилирование реагента (сульфо-NHS-SS-биотин), при торговле ограничительных условий (например, низкая температура) (см. рис 1. Для иллюстрации). Один комплект клетки смещено к торговле людьми разрешительных условий (37 ° С) и биотинилированного белков усвоить. Другой набор клеток сохраняются при низкой температуре, в качестве контроля для: 1) общий белок поверхности в момент = 0, и 2) зачистки контроля. После короткого периода интернализации, клетки смещаются обратно к низкой температуре, чтобы остановить интернализации, и любой остаточной биотин поверхности отгоняют при обработке клеток с восстановителем, который расщепляет дисульфидные связи биотин. Биотинилированные белки, которые возникли из клеточной поверхности и были внутренним защищены от зачистки шаг, и будет только биотинилированного белки, которые остаются. После лизиса клеток, биотинилированного белки выделяли стрептавидин аффинной хроматографии и белок обнаруживается количественная иммуноблоттинга. Чтобы определить, endocytic ставка, сумма интернализованных белка по сравнению с тотальным контролем поверхности помечены в момент = 0. Мы успешно использовали этот подход для измерения скорости интернализации нейронов норадреналина и дофамина 1 1-4 перевозчиков.
Подробная Протокола:
День 1:
- Пластина клеток в 6 луночных, что они будут ~ 80% сливающийся в День 2. Или же, если трансфекции клетки используются, трансфекции при плотности такое, что они будут ~ 80% сливающийся в то время интернализации скорость будет измеряться. Если клетки не сильно единомышленником, посуда культуры тканей следует относиться с подложки клеточной адгезии (например, поли-D-лизин), чтобы предотвратить потерю клеток при обширных шаги стирки.
- Для каждого белка проходит испытания, пластины 2 скважин на одной пластине, которые будут использоваться в качестве общего белка поверхности (г = 0) и зачистки управления. На второй пластине, пластина одной скважины для каждого интернализации условиях проходит испытания (например, базальные endocytic ставка против наркотиков обработанных).
- Подготовьте следующие решения и хранить при указанных температурах для использования на 2-й день:
- PBS 2 +: фосфатным буферным раствором (рН 7,4) с добавлением 1,5 мМ MgCl 2, 0,2 мМ CaCl 2, (4 ° С)
- Биотинилирование Quench Решение: PBS 2 + дополнена 100 мМ глицин, (4 ° С)
- NT буфера: 150 мМ NaCl, 1,0 мМ ЭДТА, 0,2% БСА, 20 мМ Трис, рН 8,6, (4 ° С)
- RIPA буфера: 10 мМ Трис, рН 7,4, 150 мМ NaCl, 1,0 мМ ЭДТА, 0,1% SDS, 1,0% Triton X 100, 1,0% натрия дезоксихолата, (4 ° С)
- Сульфо-NHS-SS-биотин маточный раствор: Растворить в диметилсульфоксид (ДМСО) до 200 мг / мл, (-20 ° С)
- Трис (2-карбоксиэтил) фосфин гидрохлорид (TCEP) исходного раствора: 500 мм H 2 O, (-20 ° C, покрытый фольгой, чтобы блокировать свет)
День 2:
- Подготовка PBS 2 + дополнена 0.18g/ml глюкозы, 0,2% IgG / протеазы без бычьего сывороточного альбумина (PBS 2 + / г / BSA). Предварительно это решение теплой до 37 ° С на водяной бане.
- Оттепель из сульфо-NHS-SS-биотин маточного раствора на скамье сверху расплава ДМСО. Непосредственно перед применением, готовить свежий сульфо-NHS-SS-биотин раствор (2,5 мг / мл в ледяной PBS 2 +, достаточных для 0,75 мл / лунку). Vortex решение энергично, чтобы растворить ДМСО. Обратите внимание, что NHS-биотин реагент легко гидролизуется в водном растворе. Таким образом, все решения должны быть подготовлены непосредственно перед использованием.
- Биотинилирование: Место пластин на ледяной бане в холодной комнате и промыть 3 х 2 мл с ледяным PBS 2 +. Будьте уверены, что пластины под небольшим углом, чтобы обеспечить полный дренаж и удаление буферного раствора. Добавить 0,75 мл / лунку свежий сульфо-NHS-SS-биотин раствора в каждую лунку. Инкубируйте х 15 ', 4 ° С на ледяной бане при энергичном встряхивании. После инкубации завершена, подготовить еще один свежий сульфо-NHS-SS-биотин решение. Замените старый раствор свежий раствор и инкубировать х 15 ', 4 ° C.
- Тушение: Очень важно, чтобы все не реагирует NHS-биотином молекулы закаленных, так что они не будут вступать в реакцию с biotinylate и внутриклеточных белков раз клетки лизируются. Вымойте клетки 3 х 2 мл с тушением раствора и инкубировать в два раза в 2 мл утолить решение х 15 ', 4 ° С с осторожном встряхивании.
- Интернализация: Если медикаментозное лечение проходят испытания, добавьте соответствующей концентрации препарата PBS 2 + / г / BSA. Контролируйте пластины при температуре 4 ° С и довести интернализации пластину из холодной комнате. Вымойте 3 х 2 мл подогретого PBS 2 + / г / BSA (+ / - д-рПХГ) и оставить в те же решения (2 мл / лунку). Заполнить пустые скважины с подогретого решением для обеспечения равномерного распределения температуры по всей пластине. Передача клетки 37 ° C инкубатора для 10 '. Непосредственно перед концу 37 ° С инкубационный, готовить свежий 50 мМ TCEP решение в буфер NT, которые будут использоваться для снятия шаг и хранить на льду. Подготовка достаточное количество для 1,0 мл / лунку.
- Зачистка: немедленно перевести пластины (ей) ледяной бане и вернуться в холодном помещении. Быстро мыть клетки с ледяной NT буфер, 3 х 2 мл, чтобы остановить эндоцитоза. Также мыть полосе контроля скважин 3 х 2 мл буфера NT. Добавить 1,0 мл свежей зачистки раствора в каждую лунку. Инкубировать на льду, 15 ', 4 ° С с осторожном встряхивании. Замените скважин со свежими зачистки раствора и инкубировать еще 15 ', 4 ° C на льду.
- Лизис: Вымойте все колодцы, которые подвергались зачистки раствора, 3 х 2 мл NT буфера. Затем промыть все лунки (в том числе общего управления) с 3 по 2 мл PBS 2 +. Lyse в 300μl/well RIPA буфера (или другого буфера для лизиса совместимы для белок), содержащие свежие ингибиторов протеазы (1,0 ммоль PMSF, 1,0 мкг / мл leupeptin, апротинин и пепстатина). Lyse путем встряхивания х 20 ', 4 ° C. Трансфер в микроцентрифужную труб и ясно распада клеток путем центрифугирования 18000 мкг, 10 ', 4 ° C.
- Определение концентрации белка: Используйте белка анализа совместима с вашей лизис условиях (например, постоянного анализа белка, Bio-Rad) для определения концентрации белка лизатов по сравнению со стандартной кривой BSA.
- Стрептавидином аффинной хроматографии: Подготовка микроцентрифужную трубы с эквивалентным количеством белка для каждого образца. Добавить лизис буфера принести окончательный объем каждого образца 200 мкл. Vortex стрептавидин агарозном бисером активно привлекать к даже подвеску. Использование 200 мкл пипетки с наконечником отрезаны, пипетки бисером в каждую пробирку. Рекомендуемая 20 мкл beads/50 мкг лизат. Инкубируйте ночь, 4 ° С на трубке ротатора.
День 3:
- Бусы моющие: Центрифуга образцы, 18000 мкг, 2 'собирать бусы. Аспирируйте от лизат, стараясь не приближаться шарик шарик с аспиратором. Используйте пластиковым наконечником пипетки на конце аспиратор для лучшего контроля. Добавить 0,75 мл лизирующего буфера в каждую пробирку, и вихрь мыть шарики. Центрифуга образцы, 18000 мкг, 2 'собирать бусы и стремление повторить и мытье в два раза (три моется в общей сложности). После последней промывки, аспирация, поскольку значительная часть буфера возможно, не нарушая бусинка гранул. Чаевые трубки к аспиратор помогает с этим шагом.
- Пример элюирования: Добавить 25 мкл 20-2x Laemmli образца буфера (уменьшение) в каждую пробирку. Восстановителя будет расщеплять NHS-SS-биотин дисульфидные связи, освобождая изолированных белков в растворе. Большинство мембранных белков являются весьма уязвимыми к агрегации при варке, и не должна быть нагрета до погрузки на гели для SDS-PAGE. Определите тепла чувствительности ваших белок до выполнения этих экспериментов. Если белка не может терпеть кипения / отопление, инкубировать на ротатор, 30 ', комнатной температуры перед анализом на SDS-PAGE. Этого достаточно, чтобы расщеплять дисульфидные связи и элюции белков.
- SDS-PAGE и иммуноблоттинг: Отдельная белков SDS-PAGE. Для каждого образца, проще всего запустить образцов в следующем порядке: общая площадь (время = 0), полоса, интернализации состояние # 1, Состояние # 2 и т.д. Переход на мембраны для иммуноблоттинга и промокните с соответствующими антителами для белок интересов. Захват иммунореактивного диапазонах CCD-камеры гель документации система, будучи уверен, что Есть нет насыщенных пикселей. Количественная каждого диапазона плотности с помощью геля анализ / денситометрии программного обеспечения.
Представитель Результаты:
Репрезентативный результат иммуноблоттинга показано на рисунке 2А. Сильный сигнал находится в "общем" переулок (T), которая является общей сумме поверхностного белка до интернализации. "Полоса" управления (S) в идеале должна быть близкой к пустым, который демонстрирует, что полоса была эффективной для эксперимента. Полосы эффективность рассчитывается путем сравнения плотности "полоса" полосу, что и "общего" переулок (например, белок, который был биотинилированного параллельно полосе, но не было ни нагревают до 37 ° С и не подвергаться зачистки раствора). Используется следующая формула:
[1 - (полоса / всего)] * 100%
Используя эту формулу, полосы на рисунке 2, составляла 99,8% эффективнее. Наконец, вы увидите полосы меньшей интенсивностью, чем в общей интернализации переулок (ов) (I). В примере (рис. 2), клетки, обработанные обрабатывали либо транспортное средство или 1 мкм форбол миристат ацетат (PMA) в течение 10 'интернализации и допамина ставки транспортер интернализации были измерены для 10' начальный период интернализации. Интернализации курс рассчитывается какследующим образом:
внутреннее / всего * 100
Как видно на рисунке 2B, 10.4% поверхности DAT внутренним более 10 "под автомобиль обработанных условиях. PMA лечение более высокие показатели DAT интернализации до 23,2% от общего числа DAT поверхности.

Рисунок 1. Протокол иллюстрации. Клетки биотинилированного при 4 ° С до исключительно этикетки поверхности населения, а сдвинуты до 37 ° С до начала интернализации. После интернализации, клетки быстро охлажденная, чтобы остановить endocytic процессов и остаточной биотин поверхности удаляется при обработке клеток с восстановителем. Биотинилированного только белки, которые остаются те, которые возникли из поверхности при т = 0, и было внутреннее, тем самым защищая их от зачистки лечения. Биотинилированные белки выделяли партии аффинной хроматографии с бисером стрептавидином и белок обнаруживается иммуноблоттинга.

Рисунок 2. PKC активации увеличивает DAT endocytic ставки. Интернализация анализа. PC12 клетках стабильно выражения DAT были биотинилированного, 4 ° С, как описано в разделе "Подробная протокола". Клетки быстро нагревают до 37 ° C ± 1 мкм PMA и инкубировали 10 ', 37 ° C. Остаточная биотин был лишен за счет сокращения, клетки лизировали и биотинилированного белки были выделены стрептавидин аффинной хроматографии. () Представитель иммуноблота отражает суммарный DAT поверхности при т = 0 (Т), полоса контроля (S), и внутреннее DAT (I) при указанных условиях. (В) Группы были захвачены с ПЗС-камерой и количественно с Количество данных программного обеспечения (Bio-Rad). Данные представлены в виде% от общего мин DAT internalized/10.

Рисунок 3. Пример иммуноблота изображающие плохой полосы биотин. Интернализация анализа. PC12 клетках стабильно выражения DAT были биотинилированного, 4 ° С, как описано в разделе "Подробная протокола". Клетки быстро нагревают до 37 ° С и инкубировали 10 ', 37 ° C. Остаточная биотин был лишен за счет сокращения, клетки лизировали и биотинилированного белки были выделены стрептавидин аффинной хроматографии. Иммуноблота показывает общую DAT поверхности при т = 0 (Т), полоса контроля (S), а также внутреннюю DAT (I). Обратите внимание на видимом диапазоне в полосе контроля полосы, что свидетельствует о недостаточной эффективности полосы.