Method Article

Первичные культуры нейронов из мозга дрозофилы поздней стадии куколки

DOI:

10.3791/200

May 28th, 2007

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Это видео демонстрирует подготовки первичных нейронов культур из мозга дрозофилы поздней стадии куколки. Просмотров живых культур показывают результат аксонов и отображения уровня кальция использованием Фура-2.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В этом видео, мы демонстрируем подготовки первичных нейронов культур из мозга дрозофилы поздней стадии куколки. Процедура начинается с удаления из мозга животных на 70-78 часов после пупария образования. Изолированные мозги показываются после краткой инкубации в папаин последовало несколько моет в бессывороточной ростовой среды. Процесс механической диссоциации каждой мозга в 5 мкл капли СМИ на покровное иллюстрируется. Аксонов и дендритов после митотического нейроны sheered с рядом сома в период раздробленности, но нейроны начинают восстанавливать процессы в течение нескольких часов обшивки. Изображения показывают живые культуры на 2 дня. Нейроны продолжить разработку процессов в течение первой недели в культуре. Конкретные нейронные популяции могут быть идентифицированы в культуре использованием GAL4 линии ездить ткани конкретное выражение флуоресцентные маркеры, такие как GFP и RFP. Всего записей ячейки продемонстрировали культурные нейроны формируют функциональные, спонтанно активных холинергической и ГАМК-синапсы. Короткий сегмент видео иллюстрирует динамику кальция в нейроны культурный использованием Фура-2 в качестве красителя показатель кальция для контроля спонтанной переходных кальция и никотина вызвала ответы кальция в блюдо культурный нейронов. Эти куколки культур мозга полезной модели системы, в которой генетические и фармакологические средства могут быть использованы для определения внутренних и внешних факторов, которые влияют на формирование и функции центральных синапсов.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Подготовка до дня культивирования:

  1. Сделать стерильной рассекает решение.
  2. Сделать стерильной DMEM и храните в 10 мл аликвот при 4 ° С в течение 2 недель.
  3. Сделать стерильной DDM2 добавки и заморозить в 50 или 100 мкл аликвоты в течение 1 месяца.
  4. Сделать ConA / ламинин.
  5. Пальто покровные.
    Дополнительно: Сделать стерильной CNBM и хранить замороженными до 4 месяцев.

В день культивирования

I. Подготовка раствора фермента (ES) в ламинарном потоке капот

  1. Положите 5 мл рассекает решение (DS) в 15 мл центрифужную пробирку.
  2. Взвесить 0,8 мг L-....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Нейроны найденным на мозг эмбриональных / послеродовой грызуны могут быть выращены в первичной культуре клеток, где они распространяются невриты и форма функциональной синаптических связей. Методы подготовки этих культур, хорошо известны и учится в грызунах нейронных культур сыграли решающую роль в идентификации генов и экологических факторов, участвующих в регуляции формирование синапса и функция (банкир и Гослин, 1991). Хотя насекомых нейронов из различных видов также может быть выращен в культуре, только нейроны насекомых показано, форми.......

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эта работа была поддержана NIH грант NS27501 к DKOD. Дополнительная поддержка для этой работы был предоставлен грант на UC Irvine в поддержку DKOD в рамках Программы профессор HHMI.

....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

Покрытие Покровные: Положите автоклавного покровных в 60 мм чашке Петри. Внесите 5 мкл Con / Ламинин смеси на центр каждого покровное. Место в 37 С инкубаторе в течение 2 часов. Промыть 3x покровные с 100 мкл из автоклавного воды каждый. Использование вакуумных прилагается к стерильной пипетки Пастера. Во время последнего полоскания, забрать покровное щипцами и сухой обеих сторон. Передача покровное к блюду 35мм Петри. Хранить при комнатной температуре на срок до месяца.

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Culturing Nerve Cells. Banker, G., Goslin, K. , MIT Press. Cambridge. (1991).
  2. Rohrbough, J., O'Dowd, D. K., Baines, R. A., Broadie, K. Cellular bases of behavioral plasticity: Establishing and Modifying synaptic circuits in the Drosophila Genetic System. J. Neurobiol. 54, 254-271 (2003).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Drosophila Pupae BrainPrimary Neuronal CultureMechanical DissociationEnzymatic DissociationCalcium ImagingFura 2 DyeGFP ExpressionWhole Cell RecordingNicotine ResponseSynaptic Function

Related Articles