Этот протокол представляет собой выдержку из Nazario-Toole and Wu, Assessing the Cellular Immune Response of the Fruit Fly, Drosophila melanogaster, Using an in vivo Phagocytosis Assay, J. Vis. Exp. (2019).
1. Подготовка частиц флуоресцеина для инъекций
- Восстановите 10 мг коммерчески доступных, убитых теплом бактериальных частиц, меченных флуоресцеином (см. Таблицу материалов), до исходной концентрации 10 мг/мл путем добавления 990 мкл стерильного 1x PBS и 10 мкл 50 мМ азида натрия. Вихрь перемешать.
- Разделите на одноразовые 8 мкл аликвот в пробирках объемом 0,2 мл и храните в темной коробке при температуре 4 °C><, чтобы свести к минимуму светочувствительность.
ПРИМЕЧАНИЕ: Консервант азид натрия не является обязательным и может быть исключен, если запасы 10 мг/мл изготовлены из 1 мл стерильного 1x PBS, аликвотированы, и хранятся при температуре -20 °C.
- Приготовьте 10 мл раствора 5% пищевого красителя в 1x PBS, смешав 500 мкл шприца, отфильтрованного зеленым пищевым красителем, и 9,5 мл стерильного 1x PBS.
- Промойте частицы перед инъекцией, чтобы удалить азид натрия. Смешайте 42 мкл стерильного 1x PBS и 8 мкл 10 мг/мл в пробирке объемом 1,7 мл. Центрифуга на максимальной скорости в течение 2,5 мин при комнатной температуре.
- Удалите надосадочную жидкость, добавьте 50 μл 1x PBS и центрифугируйте на максимальной скорости в течение 2,5 минут при комнатной температуре.
- Повторите шаги 1.3 и 1.3.1 2 раза, всего 3 стирки.
- После окончательной промывки выбросьте надосадочную жидкость и повторно суспендируйте частицы до 1,6 мг/мл в 50 мкл 5% пищевого красителя в 1x PBS.
- Оберните трубку алюминиевой фольгой для защиты от света. Хранить при температуре 4 °C, выбросить через 1 неделю.
2. Подготавливаем станцию впрыска и полеты
- Подготовьте инъекционную прокладку. Чтобы ввести до 4 генотипов мух одновременно, с помощью лабораторной ленты разделите прямоугольную площадку для мух CO2 на 4 секции. На скамейке рядом с микроскопом обозначьте места для размещения флаконов после того, как мухи выстроятся на подушечке (по одной на каждый угол подушечки).
- Подготовьте флаконы соответствующего возраста, возрастом 4-7 дней, мух для инъекций. Для каждого тестируемого штамма пересадите 5 самцов и 5 самок в свежий флакон с готовым кормом для мух с маркировкой и храните при температуре 25 °C.
- Подготовьте пневматический инжектор (см. Таблицу материалов), установив прибор в режим 100 мс (короткие всплески давления газа для вытеснения жидкости, позволяющие подавать субнанолитровые объемы).
- Подготовьте предметные стекла для микроскопа. Отрежьте полоски изоленты диаметром 1,5 дюйма, согните в петлю клейкой стороной наружу и положите на предметное стекло микроскопа с этикеткой.
3. Подготовьте стеклянные капиллярные иглы
- Вытяните стеклянные иглы (тонкостенные стеклянные капилляры) с помощью иглосъемника.
- Подержите иглу под микроскопом с микрометром и сломайте кончик пинцетом из нержавеющей стали #5. Наконечников размером 100 мкм достаточно, чтобы проколоть кутикулу мухи, минимизируя при этом нанесение ран.
- Измерьте объем жидкости, который будет введен в каждую муху. Загрузите иглу стерильным 5% пищевым красителем в 1x PBS и выдавите жидкость на каплю минерального масла на ступенчатом микрометре 0,01 мм.
ПРИМЕЧАНИЕ: Если капля жидкости имеет сферическую форму, то объем в пиколитрах рассчитывается как (размер)3/1910. Игла диаметром 100 мкм выбрасывает ~2 нл за 100 мс.
4. Впрыскивание мух
- Нанесите пипеткой 10 мкл частиц 1,6 мг/мл на небольшой квадрат парапленки.
- Втяните жидкость в иглу и установите форсунку инжектора (см. Таблицу материалов).
- Обезболите мух с CO2 и выстройте их в отведенном для этого месте на подушечке, подфюзеляжной стороной вверх и головой, направленной к передней части подушечки. Поместите флаконы в соответствующие места на столе.
- Впрыскивание мушек в верхний угол живота с помощью 5 100 мс насосов жидкости (всего ~10 нл).
- Переложите введенных мух в соответствующие флаконы, отметьте время на флаконе. Хранить при температуре 25 °C.
- Загрузите новую иглу с 0,4% раствором трипанового синего цвета.
- Установите пневматический инжектор в положение GATED, что обеспечивает постоянный поток воздуха для выталкивания жидкости из иглы.
- Обезболивайте мух после того, как они отдохнут в течение 30 минут, и вводите Trypan Blue до тех пор, пока брюшная полость не станет полной и раздутой.
ПРИМЕЧАНИЕ: При исследовании созревания фагосом частицами, помеченными pH-чувствительным красителем, дайте мухам отдохнуть в течение 1 ч и не вводите трипановый синий перед посадкой мух.
- Крепление мушек на предметных стеклах микроскопа с помощью изоленты подфюзеляжной стороной вниз. Сдвиньте крылья в сторону ширинки и закрепите их на ленте. Также аккуратно вдавливайте головку в ленту, чтобы мушка не сдвинулась с места.