Методическая статья

Измерение мышечной площади C. elegans: стандартизированный метод количественной оценки морфологии поперечно-полосатой мышцы

30 апреля 2023 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Teoh, J. S. et al. Количественные подходы к изучению клеточных структур и морфологии органелл у Caenorhabditis elegans.J. Vis. Exp.(2019).

C. elegans имеют два типа мышц: одиночный саркомер и множественный саркомер, или поперечно-полосатые мышцы. Это видео описывает расположение поперечно-полосатых мышц стенки тела, которые отвечают за передвижение червя, и включает в себя образец протокола для измерения морфологии мышц с помощью программного обеспечения для анализа изображений.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Этот протокол взят из Teoh et al, Quantitative Approaches for Study Cellular Structures and Organella Morphology in Caenorhabditis elegans, J. Vis. Exp. (2019).

1. Количественная оценка мышечной структуры стенки тела

  1. Флуоресцентная визуализация мышечной структуры стенки тела
    1. Получите штамм (например, RW1596), несущий трансген stEx30(Pmyo-3::gfp::myo-3 + rol-6(su1006))), который маркирует миозиновые волокна GFP.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Введение трансгена животным может быть достигнуто либо путем скрещивания интересующего штамма с животными, которые уже экспрессируют трансген, либо путем микроинъекции ДНК в дистальное плечо гонады. «Перекатывающийся» фенотип, индуцированный мутацией rol-6 в этом трансгене, облегчает визуализацию мышц. Мышцы стенки тела проходят вдоль спинной и вентральной сторон, которые обычно исключены из поля зрения у диких животных, потому что они обычно лежат на одной из их боковых сторон. Аллель rol-6(su1006) индуцирует скручивание животных, тем самым обнажая некоторые мышечные клетки для визуализации.
    2. Визуализируйте животных с помощью флуоресцентного микроскопа в сочетании с камерой с заряженной связью (ПЗС) высокого разрешения, объективом 40X или выше, фильтром GFP и программным обеспечением для сбора данных.
    3. Отрегулируйте время экспозиции и интенсивность освещения, чтобы предотвратить перенасыщение изображений.
    4. Захват и сохранение изображений мышц (400-кратное увеличение) из сечения животного, содержащего по крайней мере одну полную видимую косую мышечную клетку. Избегайте областей с одной неполной мышечной клеткой или секциями, которые не в фокусе. Также исключите изображения из крайних передних и задних областей, а также областей, прилегающих к вульве.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Если у животного нет ни одной видимой полной мышечной клетки, осторожно сдвиньте покровное стекло, чтобы повернуть животное так, чтобы обнажить целую клетку.
  2. Измерение площади мышечных клеток
    1. Откройте изображение в программном обеспечении Fiji (версия 2.0.0 использовалась в этом исследовании).
    2. Используйте выделение полигона, чтобы аккуратно обвести вокруг одной косой мышечной клетки. Скорректируйте линию многоугольника в конце, перетащив точку привязки для улучшения трассировки.
    3. Перейдите на вкладку «Анализ» в верхней части программы и нажмите «Измерить», чтобы рассчитать площадь выбора. Будет показана отдельная таблица результатов, содержащая площадь и другие измерения. Если измерение площади отсутствует в таблице результатов, перейдите в раздел «Задать измерения» на вкладке «Анализ» и убедитесь, что установлен флажок «Площадь». Точно так же снимите флажки с других измерений, которые не нужны.
    4. Для мышечных клеток с вырожденной/отсутствующей областью обведите отсутствующую область с помощью инструмента выделения полигона и нажмите Измерить еще раз. Если в ячейке имеется несколько пропусков, обведите каждый из них отдельно.
    5. Рассчитайте отношение площади разрыва ко всей отдельной мышечной клетке. Высокий коэффициент указывает на более высокую степень мышечной дегенерации из-за больших промежутков внутри клетки. Если отсутствуют области, как это обычно наблюдается у диких животных, то соотношение будет рассчитано как ноль.
      ПРИМЕЧАНИЕ: В качестве контроля оценивайте также дефекты мышечной структуры визуально и сравнивайте результаты с количественным измерением. Это особенно полезно, если штамм впервые изучается в лаборатории. Для фенотипической оценки оцените животных как дефектных или недефектных на основе целостности филаментов. Например, животные с потерей отчетливых бороздок нитей, слипанием GFP или пробелами в мышечных клетках из-за структурного разрушения будут оценены как дефектные.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Конфокальный микроскопLeicaTCS SP8Перевернутая платформа
Флуоресцентный микроскопКарл Цейсс АГИмиджер Zeiss Axio M2
Стеклянные покровные стекла #1ТермонаукаMENCS22221GP
Стеклянные покровные стекла #1.5Цейсс474030-9000-000Сделано в SCHOTT
Стеклянные горкиТермонаукаMENS41104A/40

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

FijiGFP

Похожие статьи