1. Трансфекция miR-143 и miR-506
ВНИМАНИЕ: Используйте латексные перчатки, защитные очки и лабораторный халат во время проведения описанных экспериментов. При необходимости используйте шкаф биобезопасности с включенным вентилятором, не блокируя дыхательные пути и не нарушая ламинарный поток воздуха. Всегда устанавливайте защитное стекло на соответствующую высоту, указанную производителем.
- Семена клеток NSCLC A549 в колбе T25 см2 колбы/6/96 лунки в среде DMEM/F12K с добавлением 10% FBS и 1% пенициллин-стрептомицина (питательные среды) в вытяжке для культуры тканей и инкубируют в течение ночи при 37 °C с 5%CO2 в инкубаторе для тканевых культур.
- Суспендируйте мимики miR-143 и/или miR-506 или скремблируйте миРНК с трансфективным агентом (2,4 мкг miR смешивали с 14 мкл трансфективного агента; см. таблицу материалов) в 500 мкл трансфекционной среды и 1,5 мл сыворотки и безантибиотиковых сред DMEM/F12K при конечной концентрации микроРНК 100 нМ. Количество микроРНК может потребовать оптимизации на различных клетках и концентрациях. Подходящие подходы включают трансфекцию клеток с возрастающими концентрациями микроРНК (т.е. 50-200 нМ) и оценку подавления экспрессии интересующих генов.
- Удалите питательную среду из колбы/тарелки и промойте один раз 1x PBS.
- Добавьте микроРНК/комплексы скрембл-трансфективных агентов и инкубируйте при 37 °C с 5%CO2 в течение 6 ч (размер колбы определяет добавленный объем инкубации).
- Замените среду 4 мл питательной среды и инкубируйте клетки в течение 24 ч и/или 48 ч.
- Соберите трансфицированные клетки методом трипсинизации, добавив 1 мл трипсина-ЭДТА в каждую колбу T25 см2, инкубируйте в течение 5-10 минут при 37 °C и добавьте 3 мл питательной среды для сбора клеток. Поместите содержимое каждой колбы в отдельную, помеченную пробирку объемом 15 мл. Работа в вытяжке для культуры тканей.
- Центрифугируйте при 751 x g в течение 5 мин и удалите надосадочную жидкость.
заметка: Во время удаления надосадочной жидкости требуется осторожность, так как перемешивание трубки может привести к потере клеток.
- Добавьте 2 мл 1x PBS и центрифугируйте в течение 5 минут при 751 x g.
- Повторите шаги 7 и 8 один раз, чтобы удалить любые следы среды и надосадочной жидкости.
заметка: На этом этапе пробирки с образцами можно хранить при температуре -80 °C или использовать сразу.
2. Выделение РНК
- Очистите рабочую зону, распылив 70% изопропиловый спирт и раствор для обеззараживания РНКазы.
- Экстракцию РНК следует проводить с использованием соответствующего набора РНК (см. Таблицу материалов).
- Снимите трубки с температуры -80 °C и дайте им оттаять. Добавьте 300 мкл буфера для лизиса и пипеткой вверх и вниз, чтобы разрушить клеточную мембрану.
- Добавьте равный объем 100% ультрачистого этанола.
- Хорошо перемешайте и поместите в разделительную колонну.
- Центрифугируйте при давлении от 11 до 16 x g в течение 30 с и удалите проточный поток.
- Добавьте 400 мкл промывочного буфера и центрифугу, чтобы удалить буфер.
- Добавьте 5 μL DNAse I с 75 μL буфера для расщепления ДНК в каждый образец и инкубируйте в течение 15 минут.
- Промойте образец 400 мкл буфера для подготовки РНК.
- Промойте 2 раза с буфером для промывки РНК.
- Добавьте в колонку воду, не содержащую нуклеаз, центрифугуйте, затем соберите РНК.
- Измерьте общую концентрацию РНК с помощью УФ-спектрофотометра.