Method Article

Иммуногистохимическое окрашивание: метод получения пространственной информации из тонких срезов тканей

April 30th, 2023

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Baharom F. et al., Дендритные клетки легких человека: пространственное распределение и фенотипическая идентификация в эндобронхиальных биопсиях с использованием иммуногистохимии и проточной цитометрии. J. Vis. Exp. (2017)

Это видео описывает технику иммуногистохимического окрашивания для идентификации дендритных клеток из эндобронхиальной биопсии.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Секционирование GMA.

  1. Приготовьте 0,05% раствор аммиака с дистиллированной водой. Поместите стеклянный нож и биопсию в микротом. Тщательно выровняйте биопсийный блок с лезвием, отрегулировав держатель ножа и угол наклона биопсийного блока так, чтобы лезвие ровно прилегало к поверхности блока.
  2. Отрежьте срезы толщиной 2 мкм с помощью микротома на медленной скорости резки и с помощью щипцов перенесите и всплытие срезов на аммиачной воде. Поместите срезы на 45-90 секунд, обеспечивая бережное извлечение антигена и разворачивание среза.
  3. Поднимите срезы предметным стеклом микроскопа. Проверьте гистологию биопсии путем быстрого окрашивания толуидиновым синим.
  4. Высушите предметные стекла на горячей плите, установленной при температуре 50 °C, и нанесите 500 μл отфильтрованного синего цвета толуидина на срез с помощью пластиковой дозатора Пастера. Прогрейте участок на горячей плите до тех пор, пока на краю пятна не начнет появляться зеленое кольцо, а затем смойте его водой.
  5. С помощью светового микроскопа проверьте гистологию биопсии. Срезы, используемые для иммуногистохимии, должны содержать хорошие участки неповрежденной собственной пластинки и эпителия, с как можно меньшим количеством желез и гладких мышц.
  6. Вырежьте срезы с хорошей гистологией и возьмите их с помощью предметных стекол микроскопа с покрытием из поли-L-лизина (PLL-покрытия) для иммуногистохимического окрашивания. Вырежьте не менее двух срезов из каждой биопсии для анализа. Сушите предметные стекла не менее 1 часа. После высыхания секции можно завернуть в оловянную фольгу и хранить при температуре -20 °C до 2 недель, или же на них можно сразу нанести иммуномутное окрашивание.

2. Иммуногистохимическое окрашивание эндобронхиальных биопсий, встроенных в GMA

ПРИМЕЧАНИЕ: Азид натрия токсичен. Приготовьте 0,1% раствор азида натрия в вытяжном шкафу вдали от кислот. При контакте с кислотами выделяется токсичный газ.

  1. Нарисуйте секции с помощью ручки с алмазным наконечником и разложите слайды на решетке для окрашивания.
  2. Выполните блокирование пероксидазой. Приготовьте блочный раствор пероксидазы из 0,3% перекиси водорода в 0,1% растворе азида натрия. Нанесите на срезы 1 мл пероксидазного блока и инкубируйте в течение 30 минут.
  3. Приготовьте промывочный раствор из 0,05 М Трис-буферного физиологического раствора (ТБС), pH 7,6. Вымойте предметные стекла в TBS, 3x 5 мин.
  4. Приготовьте 1% блочный раствор BSA в DMEM. Сделайте это заранее и в больших объемах, аликвотируйте и заморозьте его до тех пор, пока не понадобится. Слейте воду из предметных стекол и инкубируйте срезы в блочном растворе в течение 30 минут, чтобы блокировать связывание неспецифических антител. Если неспецифическое связывание все еще происходит, включите 30-минутный этап инкубации с 5% сывороткой крови того же вида, что и вторичное антитело.
  5. Разбавлять первичное антитело (CD45 или CD1a) в TBS до желаемой концентрации (CD45 разбавлять в соотношении 1:1000; CD1a разбавляют в соотношении 1:1,00) и наносят его на предметные стекла. Накройте секции и инкубируйте на ночь в RT.
  6. Вымойте слайды в TBS три раза. Разведите биотинилированное вторичное антитело (направленное против первичного вида антитела-хозяина, в данном случае кролика против мыши F(ab'2)) в TBS до желаемой концентрации (разведение 1:300) и нанесите его на предметные стекла. Инкубировать в течение 2 часов при RT.
  7. Приготовьте стрептавидин-биотинпероксидазный комплекс не менее чем за 30 минут до применения. Убедитесь, что их достаточно, чтобы покрыть все горки. Вымойте горки в TBS три раза. Нанесите раствор на предметные стекла и инкубируйте в течение 2 часов при RT.
  8. Вымойте горки в TBS три раза. Приготовьте субстрат 3-амино-9-этилкарбазола (АЭС) пероксидазы (изготовленный в соответствии с инструкцией производителя). Нанесите его на предметные стекла и выдерживайте в течение 20-30 минут или до тех пор, пока не разовьется желаемая интенсивность пятна.
  9. Промойте предметные стекла в проточной водопроводной воде в течение 5 минут. Прокройте срезы фильтрованным раствором гематоксилина Майера в течение 2 минут. Промойте стекла в проточной водопроводной воде в течение 5 минут.
  10. Слейте воду с горок и накройте секции постоянным водным монтажным материалом. Высушите предметные стекла при температуре 80 °C в сушильном шкафу. Дайте предметным стеклам остыть, а затем закрепите их с помощью DPX и установите защитное стекло.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Секционирование GMA
Предметные стекла для микроскопа ThermoFisher Scientific 10143562КЭФ Обрезанные края, матовый конец
Раствор поли-L-лизина Сигма-Олдрич П8920-500мл 1:10 для рабочего решения
Полоски из листового стекла для ультрамикротомии Алкар
Подросток 20 Сигма-Олдрич П2287 Моющий раствор (0,1% Tween20)
LKB 7800B Найфмейкер ЛКБ
Капсюльный сплиттер Лаборатории ТААБ С065
Однолезвийные лезвия из углеродистой стали Лаборатории ТААБ В054
порок
Аммиак, 25% ВВР 1133.1 Кабельный номер 1133.12 мл в 1 л, 1:500 (0,05%)
микротом Лейка Leica RM 2165
источник света Лейка Leica CLS 150 XE
Микроскоп с подставкой с поворотным кронштейном Лейка Лейка MZ6
Иммуногистохимия GMA
Ручка с алмазным наконечником Гитолаб No 5218
Перекись водорода 30% раствор AnalaR Нормапур No 23619.264
Азид натрия Сигма-Олдрич С8032
Трис Рош 10708976001
Хлорид натрия Химикаты VWR No 27810.295
Бычий сывороточный альбумин Многородность 82-045-2 Пробумин БСА диагностического класса
Модифицированный орел Dulbecco medium
(ДМЭМ)
Сигма-Олдрич Д5546
Антитела к CD45 человека Биолегенда 304002Мышь моноклональная, клон HI30, изотип IgG1k. Рабочая концентрация 500 нг/мл
AbD против антител к CD1a человека Серотек MCA80GAМышиный моноклональный, клон NA1/34-HLK, изотип IgG2a. Рабочая концентрация 10 мкг/мл
Мышиный моноклональный IgG1 изотип
контроль
Абкам АБ27479
Мышиный моноклональный IgG2a изотип
контроль
ДакоX094301-2
Стандартный комплект Vectastain ABC Elite Векторные лаборатории ПК-6100
AEC (3-амино-9-этилкарбазол)
Пероксидазный субстрат Воздушный змей
Векторные лаборатории СК-4200
Гематоксилин Майерса ГистоЛаб 1820 г
Постоянный водный монтаж
Терпимая
АбД Серотек BUF058C
Сушильный шкаф
Решение для стационарного монтажа DPX ВВР 360292Ф
оптический микроскоп Лейка Leica DMLB
Камера для микроскопа Лейка Лейка DFC 320
Программное обеспечение для анализа Лейка Leica Qwin V3
Кабель .

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Immunohistochemical StainingTissue SectioningAntigen RetrievalPrimary AntibodySecondary AntibodyPeroxidase BlockingChromogenic SubstrateHematoxylin CounterstainLight MicroscopyEndobronchial Biopsy

Related Articles