Методическая статья

Генерация дендритных клеток из костного мозга: метод получения дендритных клеток из костного мозга мыши

30 апреля 2023 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник:Nguyen, H. D., et al. Платформа для трансплантации костного мозга для исследования роли дендритных клеток при реакции "трансплантат против хозяина". J. Vis. Exp.. (2020).

В этом видео описывается протокол генерации дендритных клеток - ключевых антигенпрезентирующих клеток, которые активируют Т-клетки - из костного мозга взрослой мыши.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Создание дендритных клеток, полученных из костного мозга (BM-DCs).

  1. Выделите костный мозг из бедренных и большеберцовых костей мышей с WT или фактором B (fB)-/- на фоне B6. Кратко соберите большеберцовую и бедренную кости с обеих ног с помощью щипцов и ножниц. Поместите их в ледяные RPMI, содержащие 1% FCS и 100 Ед/мл пенициллина/стрептомицина и 2 мМ L-глутамина (1% RPMI) в конические пробирки объемом 50 мл. Тщательно очистите бедренную и большеберцовую кости, удалив все мышечные ткани с помощью щипцов и ножниц. Перенесите бедренную и большеберцовую кости из конических трубок объемом 50 мл в чашку Петри диаметром 92 мм, содержащую 1% RPMI. С помощью ножниц разрежьте концы бедренной кости или большеберцовой кости. Наполните пробирку объемом 50 мл 25 мл 1% среды RPMI 1640. Используйте его для наполнения шприца объемом 3 мл, прикрепленного к игле 26 G, 3 мл 1% RPMI. Вставьте этот шприц в кость и нажмите на поршень, чтобы вымыть костный мозг (БМ) из полости в пробирку для сбора с 1% RPMI (~3 мл/кость). Вращайте ячейки при 800 x g в течение 5 минут.
  2. Ресуспендируйте гранулу в 5 мл лизирующего буфера ACK для лизиса эритроцитов. Инкубируйте клеточную суспензию в течение 5 мин на льду. Добавьте 10 мл 1% RPMI в клеточную суспензию, чтобы остановить лизис, и центрифугируйте при 800 x g в течение 5 мин при 4 °C. Выбросьте надосадочную жидкость.
  3. Ресуспендируйте клеточные гранулы в 10 мл питательной среды (RPMI 1640, содержащей 10% FBS, 100 Ед/мл пенициллина/стрептомицина, 2 мМ l-глутамина и 50 мМ β-меркаптоэтанола) и отрегулируйте объем до достижения конечной концентрации 2 x 106 клеток/мл.
  4. Добавьте в клеточную суспензию 20 нг/мл гранулоцитарно-макрофагального колониестимулирующего фактора (GM-CSF). Культивируют клетки костного мозга в чашках Петри размером 100 x 15 мм при 37 °C и 5%CO2 в течение 6 дней.
  5. Замените половину текущей питательной среды (около 5 мл) свежей средой, содержащей 40 нг/мл GM-CSF на 3-й день.
  6. Предварительно подогрейте питательную среду на водяной бане при 37 °С. Соберите около 5 мл среды из посуды для культивирования костного мозга. Центрифугируйте при 800 x g в течение 5 мин при 4 °C. Выбросьте надосадочную жидкость. Ресуспендируйте клеточную гранулу в 5 мл питательной среды, содержащей 40 нг/мл GM-CSF.
  7. Добавьте 25 мкг/мл липополисахарида (ЛПС) в среду на 6-й день культивирования для созревания ДК-ДК. Сохраните аликвоту 2 х10 6 клеток для определения эффективности дифференцировки ДК с помощью проточной цитометрии.
  8. Собирайте созревшие BM-DC: Используйте клеточные подъемники, чтобы мягко соскрести DC с чашек Петри. Соберите все клеточные суспензии в конические пробирки объемом 50 мл. Центрифугируйте при 800 x g, в течение 5 мин при 4 °C. Выбросьте надосадочную жидкость. Промойте гранулы ячейки 3 раза 50 мл ледяного PBS. Сохраните около 2 x 106 BM-DC для иммунологического анализа фенотипа методом проточной цитометрии.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
10-кратный PBSНаучный центр ФишераБП3994Буфер MACS
B6 fB-/- мышиУниверситет Центральной ФлоридыВ домеПолучателей
В6. мыши Ly5.1 (CD45.1+ )Чарльз Ривер546Доноров
BALB/c мышиЧарльз Ривер28Реципиенты трансплантатов
C57BL/6 мышейЧарльз Ривер27Доноры/реципиенты
Фетальная бычья сыворотка (FBS)Система исследований и разработок Atlanta BilogicalsД17051Клеточная культура
Липополисахарид (ЛПС)Миллипора СигмаЛ4391-1МГDC зрелый
Нью-Брансуик Галакси 170R инкубаторЭппендорфГалакси 170 РКлеточная культура
Пенициллин+стрептомицинПенициллин/стрептомицин (10 000 единиц пенициллина / 10 000 мг/мл стрептококка)GIBCONo 15140медиа
РПМИ 1640Thermo Fisher Scienctific11875-093медиа

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Bone Marrow Dendritic CellsDendritic Cell GenerationGM CSF DifferentiationLPS ActivationACK Lysis BufferBone Marrow IsolationCell Culture ProtocolAntigen Presenting CellsProgenitor Cells

Похожие статьи