Методическая статья

Магнитно-активируемая сортировка клеток: метод выделения c-Kit положительных клеток

30 апреля 2023 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Кесарвани, М., и др. Методы оценки роли c-Fos и Dusp1 в онкогенной зависимости. J. Vis. Exp. (2019).

Это видео описывает технику выделения c-kit-положительных клеток из костного мозга мыши. В протоколе мы изолируем c-kit-положительные клетки от трансгенной мыши, чтобы валидифицировать c-Fos и Dusp1 по отдельности или вместе в качестве мишеней для лекарств при лейкемии.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

Выделение клеток c-Kit+ из костного мозга

  1. Принесите мышей в жертву в соответствии с институциональными рекомендациями.
    Примечание: Здесь мыши подвергались воздействию углекислого газа (CO2) с рекомендованной AVMA скоростью потока до тех пор, пока смерть не определялась прекращением дыхания и сердцебиения с последующим вывихом шейки матки.
  2. Соберите у мыши кости ног — две бедренные кости, две голени, две подвздошные. Очистите все ткани от костей, соскоблив их скальпелем. Положите кости ног в холод 1х ПБС на лед — 5 мл в пробирке объемом 15 мл. Высыпьте содержимое тюбика в ступку и раздавите ее пестиком.
  3. С помощью пипетки отфильтруйте клеточную суспензию через сетчатый фильтр 70 μм в пробирку с завинчивающейся крышкой объемом 50 мл с прикрепленной пипеткой объемом 10 мл. Промойте ступку и несколько раз пестиком холодным 1x PBS, собирая и добавляя клеточную суспензию в пробирку объемом 50 мл. Вращайте костный мозг при 1 200 x g при 4 °C в течение 5 минут. Удалите надосадочную жидкость с помощью вакуума с прикрепленной стеклянной пипеткой. Суспендируйте клеточную гранулу в 5 мл 1x PBS с помощью пипетки.
  4. С помощью пипетки медленно добавьте во взвешенный костный мозг до верха 5 мл полисахарозы комнатной температуры (температура критическая), стараясь не нарушить границу раздела. Вращайте при 400 x g при комнатной температуре в течение 20 минут с выключенным тормозом.
  5. Соберите мутную общую моноядерную ячейку (TMNC) с помощью пипетки и поместите ее в новую пробирку объемом 15 мл. Доведите объем до 10 мл с 1x PBS для стирки, взяв 20 μL для подсчета, и отжимайте при 1 200 x g при 4 °C в течение 5 минут. Выбросьте надосадочную жидкость и оставьте гранулу на льду для шага 4.6.1.
  6. Выполните выделение клеток c-Kit+.
    1. Следуйте протоколу набора микрогранул для выделения клеток c-Kit+. Ресуспендируйте клеточную таблетку в 80 мкл 1x PBS + EDTA + BSA до 107 клеток. К клеточной суспензии добавьте 20 μL CD117 MicroBeads/107 всего клеток. Хорошо перемешайте вортексом и инкубируйте в течение 10 минут при 4 °C. Доведите объем до 10 мл, добавив 1x PBS + EDTA + BSA, и отвертите при 1 200 x g при 4 °C в течение 5 минут.
    2. Удалите надосадочную жидкость с помощью вакуума и суспендируйте клеточную гранулу в 500 мкл/10 всего8 клеток в 1x PBS + EDTA + BSA. Используя магнитную подставку с прикрепленной магнитной колонкой, добавьте 3 мл 1x PBS + EDTA + BSA и дайте ему течь под действием силы тяжести в сборную пробирку объемом 15 мл.
    3. После того, как первый буфер пройдет через колонку, добавьте суспензию клеток в колонку, позволив ей протекать под действием силы тяжести в пробирку для сбора объемом 15 мл. Этот протекание и есть нежелательная клеточная фракция.
    4. Промойте колонку 3 раза 3 мл 1x PBS + EDTA + BSA каждый раз, позволяя ему течь под действием силы тяжести в сборную трубку. Снимите колонку с магнита и поместите ее на верхнюю часть пробирки объемом 15 мл.
    5. Добавьте 5 мл 1x PBS + EDTA + BSA и немедленно промойте его с помощью поршня, прилагаемого к колонке. Снимите поршень и повторите промывку с дополнительными 5 мл 1x PBS + EDTA + BSA. Посчитайте ячейки в общем объеме с помощью стандартных методов.
    6. Понизьте температуру клеток при 1200 x g при 4 °C в течение 5 мин. Удалите надосадочную жидкость и ресуспендируйте гранулу в полном IMDM (IMDM + 10% FBS + IL-6 [10 нг/мл] + mSCF [50 нг/мл] + лиганд FLT3 [20 нг/мл] + IL-3 [10 нг/мл]) для посева. Культивируйте эти клетки в течение ночи в 2 x 106 клеток/1 мл полной среды IMDM, поместив их в инкубатор при 37 °C и 5%CO2.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Биологические материалы
ИМДМ Cellgro (corning)15-016-ССР
Рекомбинантный мышиный SCF ПроспекCYT-275
Рекомбинантный мышиный Flt3-лиганд ПроспекЦИТ-340
Мышиный рекомбинантный ИЛ-6 ПроспекЦИТ-350
Мышиный рекомбинантный ИЛ-7 Пепротех217-17
ФБС Атланта биологическая С11150
ПБС Корнинг21040С.В.
70 μм нейлоновый Stariner Бектон ДикинсонNo 352350 (Английский
Колонны LS МилтеньиТел.: 130-042-401
Эдта Амбион АМ9261
БСА сигмаА7906
Ступчатый пестик Coor tek60316 и 60317
CD117 Набор микрошариков МилтеньиТел.: 130-091-224
Магнитная подставка Милтеньи
)

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Bone Marrow IsolationMononuclear Cell SeparationAnti CD117 MicrobeadsDensity Gradient CentrifugationMagnetic Column ElutionFlow Cytometry AnalysisCell Culture ProtocolTransgenic Mouse Model

Похожие статьи