Методическая статья

Микродиссекции данио рерио эмбриональных тканей глаз

16.1K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/2028

⸱

27 июня 2010 г.

 , 
1Department of Biological Sciences, Purdue University

В этой статье

Краткое содержание

В этой статье описывается подход к microdissect данио сетчатки и без пигментного эпителия сетчатки связаны, от одного до трех дней эмбрионы функции организма крыс.

Аннотация

Данио рерио является популярная модель животного для исследования на развитие глаза из-за его быстрого

Протокол

Часть 1: Подготовка перед микродиссекции

  1. Решения
    1. E3 среду 4 (5 мМ NaCl, 0,17 мМ KCl, 0,33 мМ CaCl 2 и 0,33 мМ MgSO 4).
    2. Раствор Рингера 1, 5 (116 мМ NaCl, 2,9 мМ KCl, 1,8 мМ CaCl 2, 5 мМ HEPES, pH7.2), фильтр стерилизовать.
    3. 5N NaOH.
  2. Химическое травление вольфрамовой иглы
    1. Безопасные небольшой химический стакан, содержащий 5N NaOH на чашку Петри на глине.
    2. Прикрепить скрепку на стороне стакана, так что он вступает в контакт с раствором NaOH.
    3. Подключите отрицательный электрод от источника питания постоянного тока на скрепку и положительного электрода к одному концу короткая часть (~ 2 см) из вольфрамовой проволоки.
    4. Оберните другой конец вольфрамовой проволоки с небольшим шариковый пластилин и падения этой целью в раствор NaOH.
    5. Повышение напряжения до примерно 3 В и падение проволоки вверх и вниз в раствор NaOH до хорошую скорость травления достигается. Иглу в хорошем качестве можно обычно запечатлелись в 10 минут.
    6. Вольфрамовой проволоки подвергаются решение будет постепенно стали тоньше. Когда мяч глины падает, с другой стороны провода, который все еще присоединен к положительному электроду будет резкое форму иглы.
    7. Промыть острой иглой с раствором Рингера или E3, чтобы удалить отложения солей.
    8. Прикрепить иглы аппликатора деревянные лентой или иглодержателя для легкой обработки.
  3. Культура пластин
    1. Сокол 60 х 15 мм пластинах полистирола культуры готовы использовать для сетчатки микродиссекции.
    2. Для вскрытия РПЭ-прилагается сетчатки, раздавить двух эмбрионов полностью в культуру пластину, содержащую раствор Рингера, чтобы избавиться от клейкости поверхности за 30 минут до вскрытия. Незадолго до вскрытия, вымыть пластины широко раствором свежего Рингера.
  4. Эмбрионы сбора и постановки
    1. Взрослых рыбок данио ведутся, как описано 4, 5.
    2. Отдельные родители рыбы в стационарных цистерн разведения попарно делителя ночь перед размножением.
    3. Удалить разделитель после комнате свет включен в следующее утро. Разрешить родителям крест на 10-минутным интервалом каждые полчаса. Отдельные рыбы после каждого перехода.
    4. Поддерживать эмбрионами собрали с каждого пересечения в E3 среду отдельно при 28 ° C.
    5. Этап эмбрионов на 10 до 12 часов после оплодотворения (HPF) и restage непосредственно перед рассечение на конкретные моменты времени, в соответствии с установленными критериями 1, 6.

Часть 2: Dissection - удаление мозга и глаз выдержка 1

  • Процедуры, описанные в этом разделе, являются общими для вскрытия сетчатки (Часть 3А) и РПЭ-прилагается сетчатки (Часть 3B).
  • Все прекрасно вскрытия осуществляются при помощи кончика Дюмон щипцов и помогать другой паре Дюмон щипцы для позиционирования ткани. Химическим травлением вольфрамовой иглы могут использоваться для тонкой манипуляции, если необходимо.
  • Все прекрасно вскрытия проводятся на ~ 5-8-кратным увеличением при Olympus SZX16 микроскоп с 1X цель или эквивалент.
  • Поддерживать эмбрионами в E3 среды в настольный инкубатор при 28 ° C рядом с микроскопом для легкого доступа эмбриона во время вскрытия.
  • Столике микроскопа нагревают до 28 ° С пластиной термо чтобы свести к минимуму влияние колебаний температуры на экспрессию генов.
  1. Передача эмбриона на конкретной стадии развития, чтобы раствор Рингера в Сокол 60 X 15 мм пластины культуры получали, как описано в части 1 # 3.
  2. Отрезанная голова с частью передней ствол быстро из организма.
  3. Pin заднем конце этой ткани на культуру пластину с помощи щипцов.
  4. Открытая головка на спинной стороне, начиная с переднего лоб.
  5. Удалить мозга так, чтобы медиальной стороны глаз подвергается и вверх для дальнейших манипуляций.

Часть 3А: вскрытие сетчатки 1

  1. Подготовка эмбрионов, как описано в Части 2.
  2. Тщательно кисти подвергается ПЭС на медиальной стороне глазного яблока, который сталкивается в сторону повышения на кончике пинцета, пока небольшое отверстие в сетчатке видел.
  3. Продолжить чистки и пилинга действия до медиальной стороны сетчатки почти все выступающие. Избегайте царапин и штамповки подвергаются сетчатки.
  4. Для удаления боковых ПЭС на сетчатке, которая в настоящее время сталкивается вниз, подход, который и кисть под углом примерно 45 ° от поверхности пластины культуры.
  5. Удалить НПП, который прилагается довольно твердо ора Серрата, закрепив отдельные части НПП, чтобы сulture пластина для вскрытия, а затем поднимите сетчатки мягко.
  6. Ролл сетчатки на дне культуры блюдо для очистки остаточных ППД.
    1. Мы заметили, что этот конкретный полистирола Сокол культуры пластина имеет преимущественное соблюдение НПП в течение приблизительно 20 минут один эмбрион подавлено. Это свойство используется для удаления остатков РПЭ. Тем не менее, клетки сетчатки сделать прилипают к поверхности, в меньшей степени, которые могут быть проверены тесно при большом увеличении. Нужно найти баланс между полнотой НПП удаления и сетчатки целостности.
    2. Линзы часто придерживается культуры пластины и отделяется от сетчатки в процессе прокатки. Иногда, необходимо отделить объектив травления иглы вольфрама с закрученной действие на поверхности линзы.
  7. Эти процедуры могут успешно удалить НПП от сетчатки без ущерба для целостности тканей. На это указывает хорошее общее морфологии (рис 1B и B ') и гистологии (рис. 1В "), стрелка, в частности, сохранение внеклеточного матрикса между слоем фоторецепторов и РПЭ является исключительно хорошим (рис. 1В."; сравнить с гистологии со всего эмбриона (рис. 1А ")).

Часть 3B: НПП подключением сетчатки рассечение 3

  1. Подготовка эмбрионов, как описано в Части 2.
  2. Pin головы до культуры пластины ассистент пинцетом. Поднимите глаза мягко от задней боковой-н-ролл на передней стороне.
    1. Предполагаемого сосудистой оболочки и склеры ткани на внешней стороне слоя НПП крепятся довольно плотно к коже и может быть главным образом снимают прокаткой глаза внимательно передней стороне.
  3. Снимите объектив с вольфрамовой иглы после боковой стороне глаз подвергается и тогда, когда глаз еще привязаны к коже.
  4. Эти процедуры могут успешно сохранить целый пласт РПЭ с сетчаткой. Фиксированные choroids и склеры ткань может быть в значительной степени удалено (рис. 1С, С и С ").

Часть 4: образец ткани коллекции для работы РНК

  1. Расчлененный образцы могут быть собраны в TRIzol в РНКазы без микроцентрифужную трубки для определения характеристик вниз по течению РНК, как описано выше 1.

Представитель Результаты

Рисунок 1
Рисунок 1. () Боковые и (') спинной зрения данио личиночной головы на 52 HPF до вскрытия. (") Соответствующей гистологической части личиночной головы () & ('). (В) и бокового (В') спинной зрения расчлененные сетчатки на 54 HPF. Поверхности сетчатки цел с обеих боковых и спинной взглядов. (В ") соответствующей гистологической части расчлененного сетчатки (B) и (В '). Структура сетчатки и сетчатки ламинирования был цел. В частности, внеклеточного матрикса между слоем фоторецепторов и НПП (", стрелки) хорошо сохранился в расчлененный сетчатки (В", стрелки). (C) Боковые и (С) медиальные зрения расчлененные РПЭ-прилагается сетчатки на 52 HPF. НПП слой цел и непрерывным, который также обозначается гистологической части расчлененного ткани (C "). Белую область в С" является зрительного нерва (стрелка). Для гистологии, образцы тканей были собраны и зафиксированы в 4% параформальдегида. Пластиковые вложения и секционирования этих образцов были выполнены, как описано 3. Шкала бар = 50 мкм.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Микродиссекция тканей данио глаз может эффективно получить нетронутыми сетчатки и РПЭ-прилагается сетчатки. Это существенно помогает выражение исследований, касающихся конкретных тканей глаза (например, сетчатки или РПЭ). На самом деле, мы успешно использовал эти процедуры, чтобы пол...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Эксперименты на животных были проведены в соответствии с руководящими принципами и правилами установленными Пердью уходу и использованию животных комитета.

Благодарности

Эта работа поддерживается запуск фонд от Отделения биологических наук Университета Пердью.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Беспроводной мотор ступкиVWR international47747-370
Источник питания постоянного токаLascarPSU130Любой источник постоянного тока подойдет. Специфическое напряжение другой машины потребует дополнительной оптимизации.
Одноразовые ступки и микропробирки, 1,5 мл (бедные на ДНазу, РНазу и пирогена)VWR international47747-366Они используются для сбора тканей в TRIzol для анализа экспрессии.
Пинцет Dumont #5, наконечники: 0,05 х 0,01мм, из нержавеющей сталиWorld Precision Instruments, Inc.500341Желательно иметь наконечники тонкие, но это не является обязательным, так как время от времени может потребоваться заточка наконечников.
Пинцет Dumont #5SF, наконечники: 0,025 х 0,005мм, из нержавеющей сталиFine Science Tools11252-00Желательно иметь наконечники тонкие, но это не является обязательным, так как время от времени может потребоваться заточка наконечников.
Культуральные пластинки из полистирола Falcon, 60 X 15 ммBD Biosciences351007Эти пластинки используются как диссекционные.
Стереомикроскоп Olympus SZX16Olympus CorporationSZX16Любой стереомикроскоп подойдет. Мы использовали стереомикроскоп Leica в предыдущих исследованиях1-3 без каких-либо проблем. Мы также используем объектив 1X исключительно для диссекции, несмотря на то, что у нас установлен объектив 2X.
Остроительный каменьFine Science Tools29008-01Используйте его для заточки наконечников пинцета, если необходимо
Термо плитаTokai HitMATS-U55SZX2BЭто используется для поддержания температуры ткани в течение всей диссекции и минимизации влияния колебаний температуры на экспрессию генов. Мы также размещаем весь микроскоп в условиях контролируемой среды при 28°С во время диссекции в предыдущих исследованиях1-3 с хорошими результатами.
Trizol, 100 млInvitrogen15596-026
Вольфрамовая проволока, диаметр 0,015 дюймаWorld Precision Instruments, Inc.TGW1510
Деревянная аппликаторPuritan807Это используется для удержания химически травленной вольфрамовой иглы.

Ссылки

  1. Leung, Y. F., Dowling, J. E. Gene expression profiling of zebrafish embryonic retina. Zebrafish. 2, 269-283 (2005).
  2. Leung, Y. F., Ma, P., Link, B. A., Dowling, J. E. Factorial microarray analysis of zebrafish retinal development. Proc Natl Acad Sci U S A. 105, 12909-12914 (2008).
  3. Leung, Y. F., Ma, P., Dowling, J. E. Gene expression profiling of zebrafish embryonic retinal pigment epithelium in vivo. Invest Ophthalmol Vis Sci. 48, 881-890 (2007).
  4. Nusslein-Volhard, C., Dahm, R. . Zebrafish : a practical approach. , (2002).
  5. Westerfield, M. The zebrafish book : a guide for the laboratory use of zebrafish (Danio rerio). , (2000).
  6. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Dev Dyn. 203, 253-310 (1995).
  7. Fadool, J. M., Dowling, J. E. Zebrafish: a model system for the study of eye genetics. Prog Retin Eye Res. 27, 89-110 (2008).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

40

Похожие статьи