Методическая статья

Кристаллизации белков для рентгеновской кристаллографии

DOI:

10.3791/2285

16 января 2011 г.

В этой статье

Краткое содержание

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

3-D структура молекулы дает уникальное понимание того, как функции молекулы. Основным методом определения структуры в ближнем атомное разрешение рентгеновской кристаллографии. Здесь мы демонстрируем, современные методы получения трехмерных кристаллов любой макромолекулы, которые подходят для определения структуры методом рентгеновской кристаллографии.

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Использование трехмерной структуры биологических макромолекул сделать вывод, как они функционируют является одним из важнейших направлений современной биологии. Наличие атомных структур разрешение обеспечивает глубокое и уникальное понимание функции белка, и помогает раскрыть внутренние механизмы живой клетки. На сегодняшний день 86% Protein Data Bank (rcsb-PDB) записи макромолекулярных структур, которые были определены с помощью рентгеновской кристаллографии.

Для получения кристаллов подходит для кристаллографических исследований, макромолекулы (например, белки, нуклеиновые кислоты, белок-белкового комплекса или белково-нуклеиновых кислот комплекса) должны быть очищены до гомогенного состояния, или как можно ближе к однородности. Однородности подготовки является ключевым фактором в получении кристаллы, которые преломляют с высоким разрешением (Bergfors, 1999; Макферсон, 1999).

Кристаллизация требует приведения макромолекулы пересыщения. Выборка должна быть сосредоточена в максимально возможной концентрации, не вызывая агрегации или осаждения макромолекулы (обычно 2-50 мг / мл). Введение образца осадителя может способствовать зарождению кристаллов белка в решение, которое может привести к большим трехмерным выращивания кристаллов из раствора. Есть два основных метода получения кристаллов: диффузии пара и пакетного кристаллизации. В диффузии водяного пара, капли, содержащие смесь осадителя и белковых растворов запечатывается в камере с чистой осадителя. Водяной пар затем диффундирует из падают осмолярность падение и осадителя равны (рис. 1А). Обезвоживания падение причины медленного концентрации белка и осадителя, пока равновесие достигается, в идеале в кристалле зоне зарождения фазовой диаграммы. Партия метод основан на ввоз белок непосредственно в зоне зарождения, смешивая белки с соответствующим количеством осадителя (рис. 1В). Этот метод обычно проводится под парафином / смесь минерального масла, чтобы предотвратить распространение воды из капли.

Здесь мы покажем два вида экспериментальной установки для диффузии пара, висячей капли и, сидя капли, в дополнение к партии кристаллизации в масле.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Материалы по теме:

  • Белки образца - лизоцима (50 мг / мл)
  • Висячие падение 24-а лоток
  • Сидя падение 24-а лоток
  • Microbatch кристаллизации 96 и лоток
  • Кристаллизация решений (как коммерческих, в наличии или домашний)
  • Силиконовая смазка
  • 5 мл шприц без Луер-Лок
  • Силиконизированный слайды крышкой
  • Оптический уплотнительная лента
  • Парафин
  • 0.1-2 мкл микропипетки с низким уровнем удержания советы
  • Пинцет
  • Профессиональные салфетки

1. Висячие / сидя удалить процедуру:

  1. Для начального экрана можно использовать коммерчески доступные экраны, которые эксплуатируют разреженной матрицы неполной факториал методом проб условиях. Разреженной матрицы неполной факториал метод искаженных и выбраны из известных условий кристаллизации для макромолекул (Картер и Картер, 1979; Cudney и др., 1994;. Jancarik и Ким, 1991;. Jancarik и др., 1991). Если кристаллизация условие уже известно, узкий экран может быть собрана, варьируя осадителя концентрации и рН вокруг оригинального хита. Наиболее часто успешным осадителя полиэтиленгликоля (ПЭГ), затем следуют сульфат аммония. Вместе эти два осадителей приходится примерно 60% всех зарегистрированных макромолекулярных осадителей использован для кристаллизации (Гиллилэнд и др., 1994;. Кимбер и др., 2003;.. Страницу и др., 2003).
  2. Подготовка решения кристаллизации. Как правило, эти условия сочетаются с осадителя, соль какого-то и буфер для установки рН. В некоторых случаях добавки могут быть добавлены специально для белок. Все акции решения должны быть отфильтрованы с помощью 0,22 мкм фильтр. Некоторые из маточного раствора может быть очень вязкой (50% ПЭГ, глицерин, ПЭГ-MME, и т.д.).
    • Подготовка 1,5 мл 0,6, 0,8, 1,0, 1,2, 1,4, 1,6 М NaCl каждый в 0,1 М NaOAc рН 4,0, 4,3, 4,6 и 4,9 (в общей сложности 24 решений)
  3. Оттепель вашего белка образца и держать на льду. Белки запасы должны храниться при температуре -80 ° С, если белок чувствителен к циклов замораживания / оттаивания (если да, то хранить при 4 ° С). Типичные концентрации белка в диапазоне 5-50 мг / мл, с более высокой концентрацией обычно дает лучшие результаты.
  4. Спиновые образец 15min/18, 000xg / 4 ° C - некоторые белки, как правило, частично совокупности и осадок после оттепели шаг. Эти агрегаты могут способствовать аморфное осаждение остальных белковых молекул, поэтому тщательный спином вниз обеспечит вас есть только растворимые молекулы в вашей выборке. Держите белка на льду до создания лоток.
  5. Определение концентрации белка от его поглощению при 280 нм с использованием УФ-спектрофотометр. Концентрация белка может быть вычислена по измерять оптическую плотность и коэффициент экстинкции белка. Коэффициент экстинкции может быть рассчитана с помощью инструмента ProtParam на Expasy сайте: http://ca.expasy.org/tools/protparam.html
  6. Заполните скважин 24-а висит / сидя падение поднос с 500 мкл осадителя решение по схеме лоток установки (рис. 2В). Создать кольцо силиконовой смазки вокруг края хорошо. Кольцо должно иметь небольшой зазор, чтобы предотвратить наращивание давления воздуха, как хорошо запечатан. В сидя капли, нет необходимости для смазки с хорошо запечатана с лентой (рис. 2А).
  7. Возьмите крышку слайд и очистите его со сгущенным воздухом спрей, или профессионального стереть - попадания в него пыли облегчит интерпретацию кристаллизации снижение и устранение загрязнения. Для сидя капель, крышка слайд не используются. Вместо этого, также содержит полка, на которой белка и осадителя носят смешанный характер.
  8. Положите равные объемы образца белка и водохранилища решение на обложке слайда. Различные объемы белка и осадителя может быть осужден как часть процесса оптимизации. Использование большего количества белка, чем осадителя приводит к чистой концентрации белка в падение после равновесия, которое может быть желательным для разбавленных образцов белков, и, чтобы замедлить зарождения кристалла или рост. Любые другие нелетучих веществ в капле решение также будет сосредоточено столько же раз. Когда пипетирования белка и резервуар решения на крышку слайд, будьте очень осторожны, чтобы избежать образования пузырьков. Это часто происходит, когда воздух выдувается из пипетки.
    • Висячей капли: Load 2 мкл 50 мг / мл лизоцима в 0,02 М NaOAc рН 4,9 до центре крышки слайд и добавить к нему 2 мкл водохранилище решение.
    • Сидя капли: Load 2 мкл 50 мг / мл лизоцима решение центре шельфа и добавить к нему 2 мкл водохранилище решение.
  9. Переверните крышку слайд мягко и отдать ее на смазку кольцо на верхней части колодца. Пресс мягко так, чтобы воздух мог выйти из скважины через выемку в смазку пр.событие давления воздуха наращивание хорошо и держать плотно закрытой. Давление воздуха в наращивание также может поднять крышку слайд, ущерба и печатью. В заседании капельным методом, оптически прозрачный лента используется для покрытия скважин. Следовательно, в этом методе уплотнения будут проводиться раз в строку / столбец.
  10. Переходите к следующему хорошо, пока лоток завершена.
  11. Проверьте лоток на установку - устранение частиц пыли и других загрязнений может уменьшить ложное срабатывание идентификации белковых кристаллов.
  12. Используйте забил лист документировать эксперимент.
  13. Место лоток на нужной температуры инкубации, как правило, от 4 до температуры ° С и комнаты. 20 ° С чаще всего успешно. Позаботьтесь, чтобы обрабатывать лоток мягко и избежать тряски. Будьте осторожны при открытии и закрытии двери инкубатора. Вибрации или изменения температуры во время передачи или инкубации может предотвратить рост кристаллов или отрицательно влияют на качество кристалла. Амортизирующие материалы (например, пенопласт упаковка) может быть использована в качестве набивки под кристалл лотков.
  14. Проверьте лоток для кристаллов на следующий день, а затем каждые несколько дней, всегда обработки лотков с осторожностью. Документ каких-либо выводов и падение морфологии в лоток конкретный лист скоринга. Кристаллы обычно занимает 2-5 дней появляются, хотя кристаллы иногда появляются гораздо раньше (почти сразу) или выше (до нескольких месяцев!). Как только условия кристаллизации были выявлены и темпы роста кристаллов, как известно, лучше всего оставить лотки спокойно, пока кристаллы появились и выросли, по крайней мере половину своих окончательных размеров. Оставив лотки спокойно можете уменьшить количество кристаллических зародышей событий, что ведет к меньшим числом более крупных кристаллов.

2. Microbatch процедуры:

  1. Образце белка и осадителя препарата, как описано выше.
  2. Пневматическое распыление новый лоток microbatch, чтобы избежать пыли и других крупных частиц.
  3. В microbatch лоток, заполните парафинового масла до 3 мм (как раз достаточно, чтобы покрыть скважин). Удалить доступ на нефть.
  4. Нагрузка 1 мкл раствора белка (50 мг / мл лизоцима) в масло предварительно заполненных хорошо - убедитесь, что пипетка раствор непосредственно на дне колодца (рис. 2А).
  5. Нагрузка 1 мкл раствора в осадок и в соответствии со схемой установки лотка (рис. 2Б) - убедитесь, что капля опускается на дно колодца и сливается с белком капли.
  6. Перейти к следующему хорошо, пока лоток завершена.
  7. Выполните шаги 11-14 из повешение / сидя падение процедуры.

3. Представитель Результаты:

Кристаллизация обычно называют узкое рентгеновской кристаллографии. Разреженной матрицы неполной факториал экране осаждения условиях обычно производит много различных типов агрегации белков и осадки, в том числе крупных монокристаллов. Если белка или осадителя концентрация слишком высока можно увидеть коричневые дело без каких-либо различных формы и размера (аморфные осадки). Когда решение недосыщены, падение часто будет вполне ясно и лишенной каких-либо осадков. На рисунке 3 показано несколько примеров для осаждения явлений и кристаллов (Дессау и соавт., 2006). Больше осадков явлений с более подробной интерпретации можно найти на http://xray.bmc.uu.se/terese/tutorials.html .

Фазовая диаграмма кристаллизации белка с зарождением и осаждением; Экспериментальная установка для анализа.
Рисунок 1. Принцип кристаллизации белков.
Принцип кристаллизации белков. В эксперименте диффузии пара () равные объемы осадителя и белка присутствуют в капле. Вода будет диффузная, и как осадителя и концентрации белка будет удвоен до равновесие достигается между каплей и водохранилища решение. В пакетном кристаллизации (B) осадителя и концентрация белка не изменяются в процессе эксперимента. Точка - белка остается недосыщены кристаллов не может быть сформирована, Point B - белка происходит зарождение, кристаллы начали формироваться и концентрация белка в растворе падает до насыщения. Точка C - Белки осадков, но кристаллы могут по-прежнему расти. (C) Диализ кристаллизации использованием гель-подключен капилляр. Кристаллы появляются как соль диффундирует из белка выборки (и / или осадителя диффундирует в образце белка) через гель пробки.

Диаграмма кристаллизации белка с диффузией пара, методами микропартий и экспериментальной сеткой NaCl-pH.
Рисунок 2. План типичных экспериментов кристаллизации белков.
() Процедуры для подвешивания диффузии падение пары, сидя диффузии падение пара и кристаллизации microbatch белка. В каждом случае небольшого объема концентрированного образца белка смешивают с равным или меньшим объемом precipitanт решение и позволил, чтобы уравновесить. (B) Для кристаллизации куриного лизоцима, 24-а лоток устанавливается с различным содержанием хлорида натрия (осадок) и с 0,1 М ацетата натрия в качестве буфера при различных значениях рН (4,0 - 4,9).

Результаты кристаллографии; изображения кристаллов белка; микроскопический анализ; Исследования в области структурной биологии.
Рисунок 3. Типичные результаты эксперимента кристаллизации белков.
(А) аморфные осадки. Когда белок или осадителя (или оба) находятся в высокой концентрации. (B) Разделение фаз. Белки или моющего средства могут быть разделены на различные фазы, когда смешивается с определенным осадителей при высокой концентрации. (C) Род формы кристаллов белка AtCSN7 полученные в полиэтиленгликоля 8000 и магния ацетат (Дессау и соавт., 2006). (D) Лизоцим кристаллы, полученные в 1,0 М NaCl и ацетата натрия рН 4,9. (Е) В насыщенном капель обычно остаются ясно. Фотограф Моше Дессау.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Кристаллизацию обычно называют узким местом рентгеновской кристаллографии. Разреженный матричный неполный факторный скрининг условий осаждения обычно приводит к множеству различных типов агрегации и осаждения белков, в том числе к крупным монокристаллам. Если концентрация белка или осадка слишком высока, можно увидеть коричневое вещество без четкой формы и размера (аморфные осадки). Когда раствор недонасыщен, капля часто будет полностью прозрачной и лишенной каких-либо осадков. На рисунке 3 показано несколько примеров яв...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В этой статье мы расскажем и продемонстрировать общие текущие протоколы для кристаллизации белков. Так как это многоступенчатая процедура Есть несколько соображений, нужно быть в курсе. При работе с очень малых объемах (0,5-2 мкл), сушки капли за счет испарения является основной проблемой. Следовательно, рекомендуется для работы в хорошо контролируемых условиях (с низким потоком воздуха, высокая влажность и жесткий контроль температуры) и принять метод, который сводит к минимуму воздействие снизится до открытом воздухе....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Нет конфликта интересов объявлены.

Благодарности

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эта работа была поддержана следователь Burroughs Wellcome награду Ю.М. и Brown-Кокс Докторантура стипендий из Йельского университета Мэриленд.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
ЛизоцимSigma-aldrichL6876-1G
24 лунки VDX PlateHampton researchHR3-142
24 лунки Cryschem PlateHampton researchHR3-158
Dow Corning Vacuum GreaseHampton researchHR3-510
Силиконизированное стекло круглые колпачкиHamptonresearch HR3-231
100% парафиновое маслоHampton researchHR3-411
Кристально прозрачная уплотнительная лента шириной 1,88 дюймаHampton researchHR3-511
96 Пластина для Imp@ct лунок (микропакетная пластина)Hampton research HR3-098

Ссылки

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Bergfors, T. M. Protein crystallization : techniques, strategies, and tips : a laboratory manual. , International University Line. La Jolla, Calif. (1999).
  2. Carter, C. W., Carter, C. W. Protein crystallization using incomplete factorial experiments. J Biol Chem. 254, 12219-12223 (1979).
  3. Cudney, R., Patel, S., Weisgraber, K., Newhouse, Y., McPherson, A. Screening and optimization strategies for macromolecular crystal growth. Acta Crystallogr D Biol Crystallogr. 50, 414-423 (1994).
  4. Dessau, M., Chamovitz, D. A., Hirsch, J. A. Expression, purification and crystallization of a PCI domain from the COP9 signalosome subunit 7 (CSN7). Acta Crystallogr Sect F Struct Biol Cryst Commun. 62, 1138-1140 (2006).
  5. Gilliland, G. L., Tung, M., Blakeslee, D. M., Ladner, J. E. Biological Macromolecule Crystallization Database, Version 3.0: new features, data and the NASA archive for protein crystal growth data. Acta Crystallogr D Biol Crystallogr. 50, 408-413 (1994).
  6. Jancarik, J., Kim, S. H. Sparse matrix sampling: a screening method for crystallization of proteins. J Appl Cryst. 23, 409-411 (1991).
  7. Jancarik, J., Scott, W. G., Milligan, D. L., Koshland, D. E., Kim, S. H. Crystallization and preliminary X-ray diffraction study of the ligand-binding domain of the bacterial chemotaxis-mediating aspartate receptor of Salmonella typhimurium. J Mol Biol. 221, 31-34 (1991).
  8. Kimber, M. S., Vallee, F., Houston, S., Necakov, A., Skarina, T., Evdokimova, E., Beasley, S., Christendat, D., Savchenko, A., Arrowsmith, C. H. Data mining crystallization databases: knowledge-based approaches to optimize protein crystal screens. Proteins. 51, 562-568 (2003).
  9. Lorber, B., Sauter, C., Theobald-Dietrich, A., Moreno, A., Schellenberger, P., Robert, M. C., Capelle, B., Sanglier, S., Potier, N., Giege, R. Crystal growth of proteins, nucleic acids, and viruses in gels. Prog Biophys Mol Biol. 101, 13-25 (2009).
  10. McPherson, A. Crystallization of biological macromolecules. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring Harbor, NY. (1999).
  11. McPherson, A. Introduction to protein crystallization. Methods. 34, 254-265 (2004).
  12. Page, R., Grzechnik, S. K., Canaves, J. M., Spraggon, G., Kreusch, A., Kuhn, P., Stevens, R. C., Lesley, S. A. Shotgun crystallization strategy for structural genomics: an optimized two-tiered crystallization screen against the Thermotoga maritima proteome. Acta Crystallogr D Biol Crystallogr. 59, 1028-1037 (2003).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи