Method Article

Чувствительный визуальный метод для обнаружения бактерий, продуцирующих сероводород

September 26th, 2025

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Чжу, В., и Чу, В. Чувствительный визуальный метод для обнаружения бактерий, продуцирующих сероводород. J. Vis. Exp. (2022)

В этом видео демонстрируется чувствительный визуальный метод для быстрого обнаружения бактерий, продуцирующих сероводород. Изменение цвета с желтого на черный указывает на активность бактерий за счет образования сульфида висмута.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Штаммы бактерий

ЗАМЕТКА: Для этого эксперимента использовали девять стандартных штаммов, в том числе Salmonella paratyphi A, Salmonella paratyphi B, Fusobacterium nucleatum, Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa PAO1, Aeromonas hydrophila YJ-1, Proteus vuigaris и Klebsiella pneumoniae. Сальмонелла паратифи A, Fusobacterium nucleatum, Pseudomonas aeruginosa и Proteus vuigaris могут продуцироватьH2S.

  1. Подготовка бактериального посева
    1. Перенесите одну колонию бактерий Salmonella paratyphi A, Salmonella paratyphi B, Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa PAO1, Aeromonas hydrophila YJ-1 и Klebsiella pneumoniae из агарового планшета Лурия-Бертани (LB) в 100 мл среды LB и культивируйте при 37 °C в течение 12-16 ч до тех пор, пока концентрация бактерий не составит около 1 x 109 клеток/мл (как указано в OD600 = 1).
    2. Перенесите одну колонию бактерий Fusobacterium nucleatum и Proteus vuigaris из агаровых планшетов триптиказы соевого бульона (TSB) в 100 мл среды TSB и культивируйте при 37 °C анаэробно в течение 24 ч до тех пор, пока концентрация бактерий не составит около 1 x 109 клеток/мл (как указано OD600 = 1).

2. Анализ обнаружения H2S

  1. Испытание производства сероводорода
    1. Смешайте 100 мкл бактериальной культуры со 100 мкл вновь приготовленного раствора висмута (pH 8,0; 10 мМ хлорида висмута (III), 0,4 М триэтаноламина-HCl, 20 мМ пиридоксаль-5-фосфата моногидрата, 20 мМ ЭДТА (этилендиаминтетрауксусная кислота) и 40 мМ L-цистеина) в 96-луночных микротитровальных планшетах и культуре в течение 20 мин при 37 °C. Для каждого штамма бактерий выполняйте анализ в трех экземплярах.
    2. Через 20 минут проверьте изменение цвета. Если цвет раствора меняется со светло-желтого на черный, это говорит о том, что бактерия способна вырабатывать H2S. Повторите это измерение 3 раза.
  2. Чувствительность метода
    1. Определяют чувствительность метода с использованием различных концентраций гидросульфида натрия (NaHS): 2 мМ, 1 мМ, 0,8 мМ, 0,6 мМ, 0,4 мМ, 0,2 мМ, 0,1 мМ и 0 мМ, смешанных с раствором BS (сульфида висмута).
    2. Определите наличие HS/S2− , наблюдая за образованием черного осадка BS. Оцените цвет лунок с помощью визуальной шкалы от отсутствия цвета (-) до самого темного черного цвета (++++++).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Хлорид висмута (III)Шанхайская биохимическая компания Macklin Co., Ltd7787-60-2 
ЭДТАНанкинская химическая реагентная компания Co., Ltd60-00-4 
Fusobacterium nucleatumАТКС25586 
L-цистеинАмреско52-90-4 
Триэтаноламин-гидрохлоридШанхай Аладдин Биохимическая Технология Ко., Лтд.637-39-8 
Гидросульфид натрия   
Пипетка   

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Hydrogen Sulfide DetectionBismuth Sulfide FormationBacterial H2S ProductionColorimetric AssaySodium Hydrosulfide StandardBismuth Chloride SolutionL Cysteine Sulfur SourceVisual Color Gradient96 Well Microtiter PlatesHydrogen Sulfide Sensitivity

Related Articles