Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Роящееся поведение Pseudomonas aeruginosa в условиях антибиотического стресса

919 просмотров

⸱

26 сентября 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Бру, Д., и др., Покадровая визуализация бактериальных роев и коллективная реакция на стресс. J. Vis. Exp. (2020)

В этом видео показана процедура анализа роевого поведения Pseudomonas aeruginosa путем наблюдения за ростом бактерий от центральной культуры к сателлитным пятнам, содержащим ту же культуру, смешанную с антибиотиком, с использованием агаровой пластины и покадровой визуализации.

Протокол

1. Рост P. aeruginosa и условия гальванизации

  1. Приготовьте 400 мл лизогенного бульона (LB), добавив 10 г порошковой смеси LB-Miller к 400 мл ddH2O. Добавьте еще 8 г агара для 2% LB-агара для чашек Петри. Автоклав для стерилизации.
  2. Налейте 20 мл расплавленной среды LB-агар в чашки Петри диаметром 10 см и дайте им застыть при комнатной температуре в течение ночи. Храните жидкие среды при комнатной температуре, а агаровые пластины при 4 °C.
  3. Нанесите полосу P. aeruginosa на чашку Петри из замороженного бульона, хранящегося при -80 °C, с помощью стерильных петель или деревянных палочек. Инкубируйте чашку Петри вверх дном в течение ночи при температуре 37 °C. Храните чашку с LB-агаром при температуре 4 °C до 1 недели.
  4. Выберите одну колонию из чашки Петри с помощью стерильной петли или деревянной палочки, внесите ее в среду объемом 2 мл и инкубируйте культуру до насыщения в течение ночи (16–18 ч) при 37 °C в роликовом барабане со скоростью 100 об/мин.
  5. Пипетируйте 5 мкл ночного посева с шага 1.4 с помощью пипетки P20 и нанесите точку в центр роящейся агаровой пластины, подойдя к кончику пипетки под углом (10–45°) на 2,5 см над областью пятнистости, пипетируя вниз до первой остановки и касаясь агара только каплей жидкости (рис. 1B).
    1. Избегайте прикосновения к агару кончиком пипетки, так как это может повредить агар. Используйте шаблон, чтобы расположить пятно последовательно на разных роящихся агаровых пластинах.
  6. Для лечения антибиотиками смешайте 30 мкл ночного посева P. aeruginosa с этапа 1.4 с 6 мкл 3 мг/мл гентамицина, 10 мкл 100 мг/мл канамицина или 7,5 мкл 100 мг/мл фосфомицина. Сразу переходите к следующему шагу.
    1. Пипетировать 6 мкл обработанной антибиотиками P. aeruginosa с помощью пипетки P20 и обнаружить в 6 равноудаленных спутниковых положениях на концентрической окружности радиусом 2,8 см вокруг центра чашки, приблизившись к кончику пипетки под углом (от 10 до 45°) на 2,5 см над областью пятен, пипетируя до первой точки, и прикосновение к агару только каплей жидкости (Рисунок 1D).
    2. Не прикасайтесь к агару кончиком пипетки, так как это может привести к его повреждению. Используйте шаблон гальванического покрытия для согласованности.
  7. Замените прозрачные крышки чашек Петри на черные крышки (рисунок 2A).
  8. Поместите роящиеся агаровые планшеты на сканер в инкубатор, установленный при температуре 37 °C, с водяной баней объемом 10 л для поддержания влажности 75% (рис. 1E, рис. 2B). ОСТОРОЖНОСТЬ: Не тревожьте пятнистые клетки на роящихся агаровых пластинах. Всегда держите тарелки лицевой стороной вверх.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1

Рисунок 1: Схема анализа роения P. aeruginosa и коллективной реакции на стресс. (А) клетки P. aeruginosa выращивают в течение ночи (от 16–18 ч до600 OD приблизитель...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Реагентов   
Бактоагар, обезвоженныйBD Difco214010Для пластины LB-агара и роящейся агаровой пластины
КазаминокислотыBD Difco223050Для роящихся сред
D-глюкозаФишер КемикалД16500Глюкоза. Для роящихся сред
Фосфомицин динатриевая сольТокийская химическая промышленностьФ0889Стоковая концентрация: 200 мг/мл. Растворен в ddH₂O
Сульфат гентамицинаСигма-ОлдричГ1914Исходная концентрация: 3 мг/мл. Растворен в ddH₂O
Канамицина сульфатСигма-Олдрич60615Стоковая концентрация: 100 мг/мл. Растворен в ddH₂O
ЛБ-МиллерBD Difco244620Для бульона LB и пластин с LB-агаром
Гептагидрат сульфата магнияСигма-Олдрич230391Для роящихся сред
Штаммов   
Синегнойная палочка (Pseudomonas aeruginosa)Лаборатория СирьяпорнАФС27Э.118Штамм PA14
Припасы   
Наждачная бумага из оксида алюминия3 МИН.150 ШтрафнойДля черных век
Черная тканьДжоанPRD7089Черная ткань
Черная аэрозольная краскаКрылон5592 Матовый черныйДля черных век
Фляга ЭрленмейераКимакс26500250 мл
Стеклянные бутылки для храненияПирекс13951Л250 мл, 500 мл, 1000 мл
8-дюймовые стяжки на молнииГарднер БендерE173770Для крепления черной матовой ткани
Чашки Петри (100 мм x 15 мм)РыбакFB0875712Пенополистирольные пластины 100 x 15 мм
Деревянные палочкиРыбак23-400-102Для нанесения полос и инокуляции бактерий
Оборудование   
АвтоклавМаркет Кузница ИндастриевСТМ-ЕДля стерилизации реагентов
Пипетка 25 млСША Сайентикал, Инк.1072-5410К пипетке 20 мл для роящихся агаровых пластин
ВлагопоглотительFrigidaireFAD704DWD 70 пинтДля поддержания относительной влажности воздуха в помещении на уровне около 45%
ИнкубаторВВР89032-092Для роста бактерий при 37 °C
Водяная баня IsotempРыбак15-462-21QДля охлаждающих сред до 55 °C
Ламинарный колпакКомпания БейкерСГ603АДля сушильных пластин
Пипетка-20ГилсонF123601Пятнистость на роящихся агаровых пластинах
Контроллер пипеткиБрендТехАкку-ДжетК пипетке 20 мл для роящихся агаровых пластин

Больше статей

Тайм-лапс визуализацияподготовка агариковрост бактерийсигналы стрессареакция избеганиясканирующий инкубаторсателлитные пятна