В этом видео демонстрируется получение генетически модифицированной культуры Borrelia burgdorferi, сконструированной с использованием ДНК спящего бактериофага, несущей ген устойчивости к антибиотикам. После выбора антибиотика и инкубации химический индуктор вызывает повреждение ДНК, что приводит к эксцизии, репликации и сборке новых вирионов, содержащих ген устойчивости. После второго центрифугирования и ресуспензии бактериальные клетки, содержащие зрелые вирусные частицы, готовы к последующему применению.
Протокол
1. Подготовка культуры B. burgdorferi к производству φBB-1
Приготовьте среду Barbour-Stoenner-Kelly с добавлением 6,6% термоинактивированной нормальной сыворотки кролика (BSK). Для 1 л 1x BSK смешайте компоненты, перечисленные в таблице 1 , в 900 мл воды, отрегулируйте pH до 7,6, используя 1 N гидроксид натрия, и медленно перемешайте при 4 °C в течение 2-4 часов. После завершения смешивания проверьте и при необходимости отрегулируйте pH до 7,6, а также увеличьте объем до 1 л воды. Простерилизуйте среду, пропустив через фильтр 0,22 мкМ (см. Таблицу материалов) и используйте в свежем виде или храните при температуре 4 °C в течение ≤2 месяцев.
За три-пять дней до начала протокола трансдукции инокулируйте 150 мкл соответствующего клона(ов) B. burgdorferi в 15 мл 1x BSK в плотно закрытые стерильные конические центрифужные пробирки (см. Таблицу материалов). Дополните среду соответствующей концентрацией антибиотиков или комбинацией антибиотиков для отбора и поддержания гетерологичной ДНК в клонах B. burgdorferi (Таблица 2). ПРИМЕЧАНИЕ: B. burgdorferi является организмом уровня биобезопасности 2. Принимайте все соответствующие меры предосторожности во время работы с этим организмом. Все работы с живыми культурами B. burgdorferi выполнять в сертифицированном и должным образом продезинфицированном шкафу биобезопасности II класса. Надлежащим образом утилизируйте весь материал, контактирующий с B. burgdorferi и самими микроорганизмами, в соответствии с рекомендациями Центров по контролю и профилактике заболеваний (CDC).
Инкубируют культуры при температуре 33 °С, не встряхивая, до тех пор, пока культуры не достигнут плотности ≥5 ×10 7 спирохет·мл−1, что занимает примерно 3-5 дней.
3. Индукция фага B. burgdorferi φBB-1
ПРИМЕЧАНИЕ: Стерилизуйте всю стеклянную и пластиковую посуду путем автоклавирования; стерилизуют все растворы путем автоклавирования или фильтрации через фильтр 0,22 мкМ. Приведенные ниже шаги основаны на объемах 15 мл, но метод можно масштабировать на меньшие или большие объемы в зависимости от индивидуальных потребностей эксперимента.
Для культуры B. burgdorferi , из которой будет получен фаг (донор), используйте концентрацию, рассчитанную любым из методов на шаге 2, чтобы определить объем закваски, необходимый для получения 4 мл 2 × 108 спирохет·мл-1. В результате получается конечная концентрация 5 × 107 спирохетов·мл-1 в 15 мл на стадии восстановления (шаг 3.6 ниже).
Центрифугируйте объем культуры, рассчитанный на шаге 3.1, при 6000 х г в течение 10 мин. Сцедите надосадочную жидкость и повторно суспендируйте гранулу в 4 мл свежего BSK. Перенесите образец в самую маленькую стерильную пробирку, доступную для хранения образца с минимальным пространством для напора.
Добавьте соответствующее количество индуцирующего агента к рекомендуемой концентрации (Таблица 3) из расчета на объем культуры 4 мл, чтобы индуцировать продукцию фагов. Плотно закройте тюбик крышкой и тщательно перемешайте.
Инкубируйте образец при температуре 33 °C в течение 2-4 часов.
После инкубации переложите образец в центрифужную пробирку объемом 15 мл. Центрифугируйте образец при давлении 6 000 x g в течение 10 минут. Сцедите надосадочную жидкость.
Ресуспендируйте клеточную гранулу в 15 мл 1x BSK.
Таблица 1: BSK для культивирования и отбора клонов B. burgdorferi для трансдукционных анализов. Описанная здесь рецептура и приготовление 1x BSK для культивирования B. burgdorferi и 1,5x BSK для твердофазной селекции клонов B. burgdorferi основаны на методе Сэмюэля. Различные составы BSK (или MKP), которые поддерживают рост B. burgdorferi,еще не были протестированы с помощью трансдукционного анализа.
Таблица 2: Потенциальные антибиотики и концентрации, которые могут быть использованы для отбора и поддержания гетерологичной ДНК у B. burgdorferi. Этот список основан на современных маркерах, устойчивых к антибиотикам, обычно используемых у Borrelia burgdorferi. Канамицин, гентамицин и стрептомицин получают в воде, стерилизуют фильтром через фильтр 0,22 мкМ и хранят при -20 °C. Эритромицин получают в 95% этаноле и хранят при -20 °C. Многие лаборатории сообщают об успешном использовании канамицина для селекции в концентрации 200 мкг·мл−1; При использовании гентамицина и канамицина для отбора в трансдукционных анализах используют 400 мкг·мл-1 канамицина. Ген aadA обеспечивает устойчивость как к стрептомицину, так и к спектиномицину. Для подбора конструкций, содержащих ген aadA в E. кишечной палочки, 100 мкг·мл-1 спектиномицина. Обратите внимание, что аминогликозиды (канамицин, гентамицин и стрептомицин) не являются клинически значимыми при лечении болезни Лайма; Тем не менее, эритромицин используется клинически в определенных ситуациях. Несмотря на то, что сообщалось о естественной устойчивости к этому антибиотику у B. burgdorferi , этот маркер резистентности до сих пор не использовался в анализах трансдукции, описанных здесь.
Антибиотик
Концентрация запасов
Конечная концентрация в культуре Bb
Канамицин
100 mg.mL-1 (в воде)
200-400 мк g.mL-1
Гентамицин
50 mg.mL-1 (в воде)
50 мкм g.mL-1
Стрептомицин
50 mg.mL-1 (в воде)
50 мк g.mL-1
Эритромицин
2 mg.mL-1 (в EtOH)
0,06 мкм g.mL-1
Таблица 3: Потенциальные индуцирующие агенты и концентрации, используемые для индукции φBB-1 из B. burgdorferi. Было продемонстрировано, что N-метил-N'-нитро-N-нитрозогуанидин (MNNG), митомицин C и этанол, а также метанол и изопропанол индуцируют φBB-1 выше конститутивных уровней в штамме B. burgdorferi CA.11-2A. МНГ является подозреваемым канцерогеном и опасностью для окружающей среды; Используйте с осторожностью, растворите в горючем растворителе и сожгите для утилизации. Митомицин С является подозреваемым канцерогеном и потенциальной опасностью для окружающей среды; Используйте с осторожностью под вытяжным шкафом для химикатов и утилизируйте надлежащим образом. В то время как опубликованные данные свидетельствуют о том, что МННГ является наиболее эффективным агентом для индуцирования φBB-1, опасность работы с этим химическим веществом и трудности в его приобретении затрудняют его использование, особенно для студентов. Индукция этанолом всегда лучше, чем метанолом или изопропанолом, и чаще всего используется в трансдукционном анализе.
Индуцирующий агент
Концентрация исходного материала (растворитель)
Конечная концентрация в образце
Этанол
100% (нет)
5%
Митомицин С
2 mg.mL-1 (вода)
20 мк g.mL-1
1-метил-3-нитрозо-нитрогуанидин (МННГ)
50 mg.mL-1 (ДМСО)
10 мкм g.mL-1
Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.
Материалы
Список материалов, использованных в этой статье
Имя
Компания
Каталожный номер
Комментарии
Фильтрующие установки 1 л (PES, размер пор 0,22 мкм)
Миллипора Сигма
S2GPU10RE
Трубка 12 мм x 75 мм (двухпозиционная крышка) (полипропилен)
США Сайентифик
1450-0810
вмещает 4 мл с малым объемом пустот (для индукции)