Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Подготовка образцов Myxococcus xanthus для изображения живых клеток

404 просмотров

28 ноября 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Шумахер, Д. и др. Флуоресцентное живоклеточное изображение полного вегетативного клеточного цикла медленнорастущей социальной бактерии Myxococcus xanthus. J. Vis. Exp. (2018)

В этом видео демонстрируется подготовка и визуализация Myxococcus xanthus — медленнорастущей почвенной бактерии. Культура выращивается в окружающей среде, наносится на покрытие с флуоресцентными микросферами и накладывается на заранее подогретую агарозную подушечку для поддержки гидратации и питательных веществ. Такая система позволяет проводить долгосрочную временную живую визуализацию клеточных процессов во время деления бактериальных клеток.

Протокол

1. Подготовка образцов микроскопии

Заметка: Клетки, предназначенные для микроскопии, помещаются на микроскопическое покрытие, а затем покрываются агарозной подушечкой с питательными веществами. Накладка приклеена к пластиковой или металлической раме для механической поддержки. В подготовке к микроскопии заранее следует подготовить большую площадку с 1% агарозой/TPM/0,2% CTT, как описано в шагах 2.1–2.3. Пожалуйста, также ознакомьтесь с Таблицей материалов для конкретных используемых здесь продуктов.

1. Подготовьте 500 мл буфера TPM (10 мМ Tris-HCl pH 7,6, 1 мМ KH2PO4 pH 7,6, 8 мМ MgSO4) и стерилизуйте автоклав или фильтр с помощью фильтра с крышкой бутылки.

ЗАМЕТКА: Стерильный буфер можно хранить несколько месяцев при комнатной температуре.

2. Приготовьте 1% агарозный микроскопический раствор, содержащий 0,2% КТТ (смешайте 1 г агарозы с 80 мл буфера TPM и 20 мл среды 1% КТТ). Разогревайте в микроволновке до расплавления агарозы.

ЗАМЕТКА: КТТ 0,2% достаточно, чтобы клетки могли расти и предотвратить голодание. Более высокие концентрации КТТ в микроскопической среде приводят к высокой фоновой флуоресценции.

3. Наполните чашку Петри расплавленной агарозой толщиной 0,5 см (для чашки Петри размером 11,5 см на 11,5 см требуется примерно 60 мл расплавленной агарозы) и дайте ей остыть до комнатной температуры.

ЗАМЕТКА: Агарозная подушечка может храниться при 4 °C во влажной среде до 2 дней.

1. Предварительно прогрейте 1% агарозу/TPM/0,2% CTT при 32 °C не менее 15 минут перед использованием.

ЗАМЕТКА: Чтобы подготовить клетки к микроскопии, следуйте шагам 2.4–2.8.

4. Разместить стерильную стеклянную накладку (60 мм x 22 мм, толщина: 0,7 мм) на пластиковую или металлическую раму с отверстием посередине (рисунок 1A); Эта рама служит механической опорой для тонкого скольжения и помогает уменьшить дрейф во время микроскопии. Прикрепите обложку к раме скотчем.

1. Для подготовки рамы вырежьте раму диаметром 75 мм × 25 мм из металлической пластины толщиной 1 мм, затем вырежьте отверстие соответствующего размера (20 мм × 30 мм в этом эксперименте) в центре.

5. Добавьте 10–20 мкл экспоненциально выращенных клеток M. xanthus на покрытие.

6. Добавить флуоресцентные микросферы 0,5 мкм в качестве фидуциальных маркеров к клеткам для упрощения отслеживания клеток или белков в таймлапс-записях.

1. Разбавить микросферы в буфере TPM 1:100 и хранить при 4 °C до нескольких месяцев. Тщательно встряхните перед использованием и добавьте 5–10 мкл разбавленных микросфер в клетки.

ЗАМЕТКА: Здесь использовались микросферы, флуоресцентные во всех распространённых синих, зелёных, жёлтых и красных люминесцентных каналах.

7. Вырежьте небольшую подушечку примерно размером с покрытие большого предварительно нагретого 1% агарозы/TPM/0,2% CTT и разместите её поверх ячеек (рисунок 1B). Положите покров сверху на агарозную прокладку 1% агарозы/TPM/0,2% CTT, чтобы предотвратить испарение и поддерживать клетки во влажной среде.

ЗАМЕТКА: Само покрытие предотвращает значительное испарение как минимум на 2 часа. Для более длительных таймлапс-записей 1% агароза/TPM/0,2% CTT pad и сэндвич с ковлзом должны быть запечатаны парафиновой пленкой, чтобы предотвратить испарение.

8. Инкубировать микроскопический образец при 32 °C в течение 15–20 минут, чтобы клетки прикрепились к дну агарозного подушечника. Затем начните записи таймлапс-микроскопии.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

24253_Figure_1.jpg

Рисунок 1: Схема экспериментальной установки, использованной на протяжении всего исследования. (A) Металлическая или пластиковая рама служит опорой для образца. На металлической раме закрепляется ковл-слайк с помощью ленты, ...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
DMI6000B с AFCМикросистемы Leica11888945Автоматический инвертированный широкопольный флуоресцентный микроскоп с адаптивным управлением фокусировки
Универсальная монтажная рамаМикросистемы Leica11532338Держатель для сцены для разных размеров выборок
HCX PL FLUOTAR 100x/1.30 oil PH3Микросистемы Leica11506197Объектив фазового контраста
Камера Orca Flash 4.0Хамамацу115329524,0-мегапиксельная sCMOS-камера для захвата изображений
Набор фильтров TXR ET, kМикросистемы Leica11504170Набор флуоресцентных фильтров, Пример: 560/40 Эм: 645/75
Набор фильтров L5 ET, kМикросистемы Leica11504166Набор флуоресцентного фильтра, Пример: 480/40 Эм: 527/30
Набор фильтров YFP ET, kМикросистемы Leica11504165Набор флуоресцентных фильтров, Например: 500/20 Эм: 535/30
ProScan IIIПредшествующийH117N1, V31XYZEF, PS3J100Контроллер автоматизации микроскопа с интерактивным центром управления
Источник света EL 6000Микросистемы Leica11504115Внешний источник флуоресцентного света
Incubator BLX BlackПекон11532830Чёрная инкубационная камера вокруг микроскопа
Контроль температуры 37-2 цифровойМикросистемы Leica11521719Автоматический контроль температуры для инкубационной камеры
Генмициновый сульфатКарл Рот233.4Гентамицин
Окситетрацилин-дигидратСигма Олдрич201-212-8Окситетрациклин
Сульфат канамицинаКарл РотT832.3Канамицин
Фильтр Filtropur BT25 с крышкой бутылки 0.2Сарштедт831,822,101Фильтр на крышке бутылки для стерилизации буферов
DeckgläserVWR630-1592Стеклянная крышка (60 x 22 мм, толщина: 0,7 мм)
Seakem LE agaroseЛонза50004Агароза для микроскопических слайдов
Leica Metamorph AFМикросистемы Leica11640901Программное обеспечение для управления микроскопом и для анализа изображений
Tetraspeck Microsperes, 0,5 мкмThermoFisherT7281Флуоресцентные микросферы
чашка ПетриBio-one Грейнера688102120 мм x 120 мм x 17 мм квадратная чашка Петри для агарозных подушек
BD Бакто КаситонеБектон Дикинсон225930Каситоне
Parafilm MVWR291-1213Парафильм
Трис(гидроксиметил)-аминометанКарл РотAE15.2Трис
Гептагидрат сульфата магнияКарл РотP027.2Сульфат магния
Калий дигидрофосфат по популярности.Карл Рот3904.1Дигидрофосфат калия
1% КТТ-среда: 1 % (в/в) BD™ Bacto каситон, 10 мМ Tris-HCl ph 8,0, 1 мМ буферный pH фосфатного калия 7,6, 8 мМ MgSO₄  Среда для культивации M.xanthus
Буфер TPM: 10 мМ Tris-HCl ph 8,0, 1 мМ буфер фосфатного калия pH 7,6, 8 мМ MgSO₄  Буфер для подготовки микроскопических препаратов для M.xanthus

Теги

CTT