Методическая статья

Оценка активности бактериального шаперона через термическое разворачивание модельного белка

28 ноября 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Dahl, J. и др. Обнаружение pH-зависимой активности Escherichia coli Chaperone HdeB in vitro и in vivo. J. Vis. Exp . (2016)

В этом видео демонстрируется анализ на основе флуоресцентного спектрофотометра для оценки активности шаперонов на белке субстрата под кислотным и тепловым стрессом. В нём изложены этапы мониторинга разворачивания и агрегации субстрата с помощью рассеяния света, сравнивая условия с и без сопровождающего.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Анализ активности шаперонов с использованием термически разворачивающейся малатдегидрогеназы (MDH)

ЗАМЕТКА: Влияние очищенного HdeB на агрегацию термически разворачивающейся свиной митохондриальной малатдегидрогеназы (MDH) при различных значениях pH отслеживалось, как описано ниже. Все перечисленные концентрации белка относятся к концентрации мономера.

  1. Для подготовки MDH диализируйте MDH при 4 °C ночью против 4 л буфера C (50 мМ калий фосфат, 50 мМ хлорида натрия (NaCl), pH 7,5) и концентрируйте белок примерно до 100 мкм с помощью центробежных фильтров с молекулярным порогом 30 кДа.
    ЗАМЕТКА: Требуется тщательный диализ MDH, так как MDH подаётся в виде раствора сульфата аммония.
  2. Для удаления агрегатов центрифугуйте белок в течение 20 минут при 20 000 x g при 4 °C. Определите концентрацию MDH посредством поглощения на 280 нм (ε 280 нм = 7 950 м-1 см-1). Подготовьте 50 мкл аликвотов MDH и быстро заморозьте аликвоты для хранения.
  3. Поместите кварцевую кювету объемом 1 мл в флуоресцентный спектрофотометр, оснащённый держателями и мешалками для образцов с контролируемой температурой. Установите λex/em на 350 нм.
  4. Добавьте соответствующие объёмы предварительно нагретого (43 °C) буфера D (150 мМ калийфосфата, 150 мМ NaCl) при нужных значениях pH (здесь: pH 2,0, pH 3,0, pH 4,0 и pH 5,0) в кювету и установите температуру в держателе на 43 °C. Общий объём составляет 1 000 мкл.
  5. Добавьте в буфер 12,5 мкм HdeB (или, альтернативно, тот же объём буфера хранения HdeB для управления буфером), а затем 0,5 мкм MDH. Начните мониторинг рассеяния света. Инкубировать реакцию в течение 360 секунд, чтобы обеспечить достаточное разворачивание MDH.
  6. Поднимите pH до 7, добавив объём 0.16-0.34 2 M небуферизованного K2HPO 4 и продолжайте запись рассеяния света ещё 440 секунд.
  7. Установите степень агрегации MDH, зафиксированной в отсутствие шаперона в определённый момент времени после нейтрализации (далее через 500 секунд, когда наблюдалось максимальное рассеяние света MDH), на 100%. Нормализовать активность HdeB относительно сигнала рассеяния света MDH при отсутствии HdeB при каждом указанном pH-значении.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Малатдегидрогеназа (MDH)Рош10127914001 
Калиев фосфат (монобазический)Fisher ScientificBP362-500 
Калийфосфат (дибазовый)Fisher ScientificBP363-1 
Флуоресцентный спектрофотометр F-4500HitachiFL25 
Кюветка флуоресцентных клетокHellma Analytics119004F-10-40 
Соляная кислотаFisher ScientificA144-212 
Гидроксид натрияFisher ScientificBP359-500 
Центробежные фильтры Amicon Ultra 30KМиллипорUFC803024 
Хлорид натрияFisher ScientificS271-10 
Мембрана диализа Spectra/Por 1 MWCO: 6 кДаSpectrum Laboratories132650 
Спектрофотометр Varian Cary 50Agilent Tech  

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

pHEscherichia coliHdeBMDH

Похожие статьи