Все процедуры, связанные с сбором образцов, были выполнены в соответствии с руководящими принципами института IRB.
ОСТОРОЖНОСТЬ: Ознакомьтесь с соответствующими Информационными листами по безопасности материалов и следуйте инструкциям и рекомендациям для соответствующего обучения по биобезопасности уровня 2 (BSL-2). Соблюдайте все этапы культивирования в соответствии со стандартными правилами биобезопасности и используйте шкаф BSL-2 с асептическими условиями. Кроме того, образцы кала из разных моделей и у людей могут иметь потенциальный риск распространения микробных заболеваний. Немедленно обратитесь за медицинской помощью в случае травмы или инфекции. Кроме того, использование образцов человеческого и животного кала должно быть одобрено институциональными этическими комитетами и должно соответствовать протоколам использования образцов и информации о испытуемых.
1. Подготовка культурных медиа
- Подготовка культурных сред, подготовка девяти типов бульевых растворов:
- Раствор A (1 000 мл): растворить 5,4 г хлорида натрия (NaCl), 2,7 г дигидрофосфата калия (KH2PO4), 0,16 г хлорида кальция (CaCl2·2H2O), 0,12 г гексагидрат хлорида магния (MgCl2·6H 2O), 0,06 г тетрагидрата хлорида марганца (MnCl2·4H2O), 0,06 г гексагидрат кобальтового хлорида (CoCl2·6H 2O) и 5,4 г сульфата аммония (NH 4)2SO4 в деионизированной воде, что приводит к общему объёму 1 000 мл.
- Раствор B (1 000 мл): Растворить 2,7 г фосфата калия-водорода (K 2HPO 4) в деионизированной воде для получения общего объёма до 1000 мл.
- Раствор микроэлементов (1 000 мл): растворить 500 мг дигидрата динатрия этилендиамина-тетраацетата (Na2EDTA), 200 мг гептагидрата сульфата железа (FeSO 4·7H2O), 10 мг гептагидрат сульфата цинка (ZnSO 4·7H2O), 3 мг тетрагидрата хлорида марганца (II) (MnCl2·4H2O), 30 мг фосфорной кислоты (H3PO4), 20 мг CoCl2·6H2O, 1 мг дигидрата хлорида куприка (CuCl 2·2H2O), 2 мг гексагидрат никель(II) хлорида (NiCl2·6H 2O) и 3 мг натриемолибдатного дигидрата (Na2MoO 4·2H2O) в деионизированной воде с общим объёмом до 1 000 мл.
ЗАМЕТКА: Этот раствор чувствительный к свету, поэтому храните его в тёмных/чёрных или алюминиевых тюбиках/бутылках. - Растворимый раствор витаминов (1 000 мл): растворить 100 мг тиаминохлорида (тиамин-HCl), 100 мг D-пантотеновой кислоты, 100 мг ниацина, 100 мг пиридоксина, 5 мг P-аминобензойной кислоты и 0,25 мг витамина B12 в деионизированной воде, чтобы общий объём достиг 1 000 мл.
- Фолат: биотиновый раствор (1 000 мл): растворить 10 мг фолиевой кислоты, 2 мг D-биотина и 100 мг аммония бикарбоната (NH 4HCO3) в деионизированной воде до общего объёма 1 000 мл.
- Раствор рибофлавина (1 000 мл): растворить 10 мг рибофлавина в растворе 5 мМ HEPES (4-(2-гидроксиэтил)пиперазин-1-этансульфоновая кислота) (1,19 г/л) для получения общего объёма до 1 000 мл.
- Раствор гемина (10 мл): растворить 5 000 мг гемина в растворе гидроксида натрия (NaOH) (0,4 г/л) объёмом 10 мл.
- Смесь короткоцепных жирных кислот (10 мл): Объедините 2,5 мл N-валерата, 2,5 мл изовалерата, 2,5 мл изобутирата и 2,5 мл DL-α-метилбутирата.
ЗАМЕТКА: Этот раствор рекомендуется использовать в вытяжке с дымом, чтобы избежать запаха и паров. - Ресазурин (1 000 мл): растворить 1 г ресазурина в деионизированной воде и сделать общий объём 1 000 мл.
- Среда, используемая для in vitro анаэробной ферментации
- Для приготовления этого материала смешивают 330 мл раствора A, 330 мл раствора B, 10 мл раствора микроэлементов, 20 мл растворимого раствора витаминов, 5 мл фолата: биотинового раствора, 5 мл раствора рибофлавина; 2,5 мл раствора гемина, 0,4 мл смеси короткоцепочечных жирных кислот, 1 мл резазурина, 0,5 г экстракта дрожжей, 4 г карбоната натрия (Na 2CO 3), 0,5 г цистеина HCl-H2O и 0,5 г триптиказа, а также добавление 296,1 мл дистиллированной воды.
- Проверьте pH и убедитесь, что он около 7.0; если нет, отрегулируйте pH с 1 N HCl или 1 N NaOH. Стерилизуйте вакуумной фильтрацией среды с помощью бутылочного фильтра под асептической рабочей станцией.
- В качестве альтернативы смешайте все компоненты (кроме растворов витаминов и гемина) и автоклав при 121 °C в течение 20 минут, чтобы остыть до комнатной температуры. Одновременно фильтруйте и стерилизуйте растворы витаминов и гемина с помощью мембранных фильтров диаметром 0,22 мкм и добавляйте их в автоклавную и охлаждённую среду перед разливом.
2. Подготовка анаэробной камеры и необходимых материалов
- Храните все материалы, растворы и инструменты, необходимые для эксперимента ферментации, внутри анаэробной камеры не менее чем за 48 часов до начала эксперимента, чтобы убедиться, что остатки кислорода, связанные с инструментами и растворимым кислородом в буферах/растворах, будут удалены, а все материалы акклиматизированы к заданным анаэробным условиям.
ЗАМЕТКА: Материалы, необходимые внутри анаэробной камеры (за 48 часов до начала эксперимента): (i) среда ферментации; (ii) анаэробный раствор (подготовлен в соответствии с разделом 4.1), (iii) вихревой вес, (iv) весы, (v) марля из муслина, (vi) ножницы, (vii) воронка, (viii) трубки объемом 1,5, 2,0, 15, 50 мл, (ix) пипетка (2, 20, 200 и 1 000 мкл) и совместимые наконечники пипет, (x) пушечная пипета и пипетки (5 и 10 мл), (xi) бумажные салфетки, (xii) маркеры, (xiii) подставки для трубок для разных трубок, (xiv) контейнер для отходов, (xv) индикатор кислорода и (xvi) бутылка с 70% этанолом (дезинфицирующее средство).
3. Подготовка трубок и волокон
- Взвесить 300 мг инулина и перенести в трубку объёмом 50 мл, после чего асептически добавить 26 мл уже подготовленного и хранящегося в анаэробной камере ферментационного материала. Подготовьте по одной пустой пробирке для каждого типа образца кала и экспериментальной пробирки (в зависимости от количества исследуемых соединений) в три экземпляжа.
- Оставьте эти пробирки внутри анаэробной камеры примерно на 24 часа, чтобы образцы могли увлажниться перед началом эксперимента по ферментации. Убедитесь, что температура трубки на момент инокуляции составляет 37 °C, поэтому поместите трубки в инкубатор, заключённый в анаэробную камеру.
4. Подготовка инокуля
- Анаэробный раствор разбавления (не менее чем за 48 часов до ферментационного эксперимента): растворить 5 г NaCl, 2 г глюкозы и 0,3 г цистеина-HCl в деионизированной воде и получить общий объём до 1 000 мл. Автоклав и храните его в анаэробной камере не менее чем за 48 часов до использования.
- Подготовка фекального инокулума (в день эксперимента по ферментации): взвесить 5 г свежего образца фекалий в конической трубке объёмом 50 мл, добавить анаэробный раствор для окончательного объёма 50 мл (1:10 вт/в) и провести вихрь в течение 15 минут или до полной гомогенизации. Профильтруйте гомогенизированную смесь через 4 слоя стерильной марли (автоклавированной) и немедленно используйте её для инокуляции в трубки с материалом.
ЗАМЕТКА: Образцы фекалий группы участников можно объединить, если цель эксперимента — сравнить влияние конкретного соединения/ингредиента на общее состояние здоровья и заболевшей фекальной микробиоты в целом.
5. Ферментация и отбор проб
- Подготовьте пробирки в соответствии с разделом 4.2 и инокулятируйте заготовки/контрольные и экспериментальные трубки 4 мл разбавленной и фильтрованной фекальной инокуля. Инкубировать инокуляционные трубки при 37 °C внутри анаэробной камеры. Встряхивайте трубки раз в час, аккуратно переворачивая, чтобы снова взвешивать волокна и инокулум.
- Собирайте образцы так часто, как нужно, например, раз в час до 0, 3, 6, 9 и 24 часов во время ферментации, доставая образец объёмом 2 мл аликвота в пробирку на 2 мл из соответствующих ферментационных трубок.
- Измеряйте pH аликвотов с помощью лабораторного pH-метра (непосредственно вставляя pH-электрод в образец); Центрифугуйте оставшийся образец при 14 000 x g в течение 10 минут при 4 °C. Немедленно заморозьте супернатант и гранулу в жидком азоте, а после быстрого заморозки храните супернатант для анализа SCFA (короткоцепочечных жирных кислот) и гранулу для анализа микробиома при -80 °C.