1. Подготовка бактерий
Примечание: Вирулентный штамм Streptococcus suis (S. suis) серотипа 2 P1/7 был выделен у больной свиньи с менингитом. Штамм P1/7 был выращён в бульоне Тодда-Хьюитта (THB, формула на литр THB: инфузия в сердце, 3,1 г; неопептон, 20,0 г; декстроза, 2,0 г; хлорид натрия, 2,0 г; динатрийфосфат, 0,4 г; карбонат натрия, 2,5 г) и покрыт на агаре Тодда-Хьюитта (THA, формула на литр THA: инфузия в сердце, 3,1 г; неопептон, 20,0 г; декстроза, 2,0 г; хлорид натрия, 2,0 г; динатрийфосфат — 0,4 г; карбонат натрия — 2,5 г; агар, 15,0 г) при 37 °C и 5%CO2.
- Коллекция планктонных клеток штама P1/7
- Соберите 5 мл планктонных клеток из культуры среднелогаморфной фазы (OD 600=0,6), центрифугайте 3 минуты при 8000 × г, затем промывайте 3 раза с фосфатно-буферным физиологическим раствором (PBS).
- Суспензируйте клетки с 5 мл 25% глицерила в ТГБ, аликвот в 5 пробирках и храните при -80 °C.
- Коллекция клеток состояния биопленки штама P1/7
- Возьмите 20 мл ночной культуры и добавьте к 180 мл свежего THB; Разбавленную культуру разделите поровну на 10 круглых тарелок и затем поместите их в инкубатор при 37 °C при 5%CO2 на 24 часа.
- После инкубации аккуратно встряхните пластину, чтобы суспензировать бактерии, не прилипшие к пластине, а затем выбросьте супернатант аспирацией.
ПРИМЕЧАНИЕ: Аккуратно потрясите пластину и избегайте повторного взвешивания осадка. - Добавьте 5 мл PBS для получения клеток состояния биопленки, полностью суспензируйте осадок и затем перенесите образец в новую пробирку.
- Сониковать клетки состояния биопленки с последнего шага с помощью следующих параметров: 60 Вт, 4 цикла, 5 с включением и 10 секунд выключения.
- Центрифугуйте 3 минуты при 8000 × г и храните супернатант при -80 °C.
ПРИМЕЧАНИЕ: Супернатант может содержать компоненты биопленки и может использоваться для повторной суспензии бактерий биопленки перед заражением, как описано в экспериментах на животных (Шаг 2). - Суспензировать осадок с 10 мл 25% глицерина в THB, а затем хранить клетки биопленки при -80 °C.
2. Эксперименты на животных
- Используйте SPF 6-недельных самок мышей BALB/C в этом исследовании. Инфицировать всех мышей через внутричерепный субарахноидальный путь инфекции, место инъекции которого находится в 3,5 мм ростраль от брегмы.
- Для гистопатологического анализа инфицируйте две группы мышей (по 5 мышей в группе) с помощью планктонных клеток или клеток биопленки в дозе 3 × 10 7 единицформирования колоний (CFU), а ещё 5 мышей вводят PBS в качестве контроля.
- Для обнаружения экспрессии мРНК TLR2 и цитокинов в мозге инфицируйте две дополнительные группы мышей (по 6 мышей в группе) с помощью планктонных клеток или биопленочных клеток при дозе 3 × 107 CFU.
- Определите количество жизнеспособных бактерий путём нанесения серийных разбавлений на THA.
- Эвтаназия всех мышей через 12 часов после заражения для дальнейших исследований.
ПРИМЕЧАНИЕ: Глицерин из стандартной среды необходимо удалить до заражения. И планктонные клетки, и клетки биопленки, полученные при -80 °C, промываются три раза с помощью PBS. Затем планктонные клетки суспензируются с помощью PBS и разбавляются до соответствующей дозы для инфекции; Клетки состояния биопленки ресуспендируются вместе с накопленным супернатантом (начиная с шага 1.2.5) и разбавляются до соответствующей дозы для инфекции. Объём инфекции не должен превышать 50 мкл.
- Обнаружение экспрессии мРНК TLR2 и цитокинов в ткани мозга
- Извлечете всю РНК из ткани мозга с помощью набора для экстракции РНК.
- Для каждой мыши используйте всю ткань мозга для извлечения РНК. Разделите всю ткань мозга на 5 трубок. Возьмите до 100 мг мозговой ткани и добавьте 1 мл раствора лизиса в каждую трубку, содержащую лизирующую матрицу, предоставленную набором.
- Обработайте трубку в гомогенизаторе 40 секунд при температуре 6,0, затем центрифугайте при 12000 × г и 4 °C в течение 5 минут.
- После центрифугирования перенесите верхнюю фазу в новую микроцентрифугальную трубку.
- Инкубировать перенесённый образец в течение 5 минут при комнатной температуре; Добавьте 300 мкл хлороформа, вихрьте 10 секунд, затем инкубируют 5 минут при комнатной температуре.
- Центрифугуйте трубку при 12000 × г и 4 °C в течение 5 минут. Перенесите верхнюю фазу на новую трубку.
- Добавьте в трубку 500 мкл холодного абсолютного этанола, затем инвертируйте её 5 раз, а затем храните образец при -20 °C не менее 1 часа.
- Центрифугуйте трубку при 12000 × г и 4 °C на 15 минут и удалите супернатант. Промой гранулы 500 мкл холодного этанола 75% в воде без РНазы (H 20).
- Удалите этанол, высушите гранулу на воздухе 5 минут при комнатной температуре и снова суспензуйте РНК в 100 мкл безрназногоH 2O.
- Инкубировать РНК в течение 5 минут при комнатной температуре и определить концентрацию РНК с помощью биоанализатора РНК.
- Провести комплементарный синтез ДНК (cDNA), включая ликвидацию геномной ДНК (gDNA), с помощью термоциклера с набором реагентов для обратной транскрипции (RT).
- Добавьте 1 мкг РНК в пробирку, содержащую 2 мкл 5x буфера для элиминации гДНК, 1 мкл фермента для элиминации гДНК и свободного от РНазыH 2O до достижения объёма 10 мкл. Инкубировать в течение 2 минут при 42 °C.
- Добавьте 10 мкл мастер-смеси (1 мкл фермента RT Mix I, 1 мкл RT праймерной смеси, 4 мкл 5x Buffer 2 и 4 мкл РНаз-свободного H2O) в раствор реакции с последнего этапа и аккуратно перемешайте. Немедленно перейти к реакции RT: 37 °C в течение 15 минут и затем 85 °C в течение 5 секунд.
- Проведите количественный анализ полимеразной цепной реакции в реальном времени (RT-qPCR) с помощью аппарата ПЦР в реальном времени с комплектом SYBR RT-qPCR. Добавьте 10 мкл 2x фермента, 0,8 мкл прямого праймера, 0,8 мкл обратного праймера, 0,4 мкл 50x ROX Reference Dye II, 2 мкл кДНК-шаблона и РНаз-свободногоH2Oдо общего объёма 20 мкл.
- Каждую пробу пропустите в тройном экземпляре с использованием следующих тепловых параметров: 30 с при 94 °C, затем 40 циклов по 5 с при 95 °C и 34 с при 60 °C, с финальной ступенью 15 с при 95 °C, 1 минута при 60 °C и 15 с при 95 °C. Праймеры для RT-qPCR приведены в таблице 1. В качестве внутреннего контроля использовались гены Housekeeping B2m и рРНК 18s .
- Вычислите относительное изменение складки на основе метода 2-ΔΔCt .
Таблица 1: Праймеры для RT-qPCR.
| Название буквы | Последовательность (5'-3') | Генный символ |
| IL-6 вперёд | CTTCCATCCAGTTGCCTTCT | IL6 |
| Реверс IL-6 | CTCCGACTTGTGAAGTGGTATAG | IL6 |
| TLR2 вперёд | CACTATCCGGGGGTTGCATATC | Tlr2 |
| Реверс TLR2 | GGAAGACCTTGCTGTTCTCTAC | Tlr2 |
| Вперед CCL2 | CTCACCTGCTGCTACTCATTC | Ccl2 |
| Обратная версия CCL2 | ACTACAGCTTCTTTGGGACAC | Ccl2 |
| Форвард TNF-α | TTGTCTACTCCCAGGTTCTCTCT | TNF |
| Обратная сторона TNF-α | GAGGTTGACTTTCTCCTGGTATG | TNF |
| β2 м вперёд | GGTCTTTCTGGTGGTGTCT | B2m |
| Обратная сторона β2M | TATGTTCGGCTTCCCATTCTC | B2m |
| Форвард 18 секунд | GTAACCCGTTGAACCCCATT | рРНК 18-х |
| Реверс 18s | CCATCCAATCGGGGTAGTAGCG | рРНК 18-х |