Методическая статья

Разработка мышиной модели хронической кожной рановой инфекции Pseudomonas aeruginosa

2 февраля 2026 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: де Врис, К. Р., et.al. Отсроченная модель прививки при хронической инфекции раны Pseudomonas aeruginosa . J. Vis. Exp . (2020)

В этом видео демонстрируется задержка инокуляции люминесцентной Pseudomonas aeruginosa мыши с двумя полноразмерными спинными ранами на коже, покрытыми прозрачной плёнкой. Это способствует формированию биоплёнки и формированию хронической инфекции. Регулярный мониторинг биолюминесценции позволяет количественно оценивать нагрузку бактерий и отслеживать прогрессирование инфекции со временем.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры, связанные с животными моделями, были рассмотрены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным советом JoVE.

1. Инокуляция Pseudomonas aeruginosa

  1. Разбавить за ночь культуру PAO1:lux доOD 600 = 0,05 в 75 мл среды бульона Лизогенез (LB), содержащей 100 мкг/мл карбенициллина, и вырастить бактерии до ранней экспоненциальной фазы (OD 600≈0,3). Это займет примерно 2–3 часа.
  2. Разбавите PAO1:lux в фосфатно-буферном физиологическом растворе (PBS) до концентрации (7,5 ± 2,5) x 102 CFU/mL. Обязательно подготовьте избыточный инокулюм, чтобы обеспечить достаточный объём и позволить сервовать после эксперимента. При транспортировке между объектами используйте двойную изоляцию в герметичной коробке с чёткой маркировкой «Биологическая опасность».
  3. Выполнять все работы с P. aeruginosa и мышами с использованием одобренных средств индивидуальной защиты в биологическом шкафе для биологической безопасности (BSC) уровня биобезопасности для животных уровня 2 (ABSL-2). Многоразовое оборудование, такое как весы, должно быть покрыто пищевой пленкой для предотвращения загрязнения.
  4. Анестезиируйте мышь с помощью 3% изофлурана. Взвесьте мышь и запишите вес. Введите мыши подкожно предварительно нагретый стерильный хлорид натрия 0,9%, по 250 мкл на каждую сторону, всего 500 мкл.
  5. Если прозрачная плёнка с мыши снялась за ночь, аккуратно удалите остатки корки и нанесите новую повязку.
  6. Используйте 500 мкл туберкулинового защитного шприца 27 G, чтобы ввести 40 мкл суспензии PAO1:lux через прозрачную плёнку в каждую рану. Для неинокуляций/PBS-контроля ран следует использовать разные мыши, чтобы предотвратить перекрёстное загрязнение с противоположной стороны.
  7. Положите мышь обратно в клетку на грелку и следите за её вниманием, пока она не проснётся. Всех мышей следует содержать по отдельности в отдельных клетках, чтобы предотвратить перекрёстное загрязнение.
  8. Дайте высококалорийную пищевую пасту, зажатую между пищевыми гранулами на полу клетки.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
0,9% инъекция хлорида натрияHospira2484457 
Самцы мышей C57BL/6JЛаборатория Джексона664 
Фосфатно-буферный физиологический раствор (PBS) 1 разКорнинг21-040-CV 
Пресс и герметизация пищевой пленкиРадн/д 
Инсулиновый шприц Safetyglide, 1/2 мл, 30 г x 5/16 ТВтBD305934 
МасштабOhaus Scout ProSP202 
Пищевая добавкаHenry Schein Animal Health29908 

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Pseudomonas aeruginosa

Похожие статьи