Method Article

Подготовка ткани мышиного мочевого пузыря для визуализации бактериальной инфекции

January 30th, 2026

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: O'Brien, V. P. и др., Рецидивирующая инфекция мочевыводящих путей Escherichia coli, вызванная воздействием мочевого пузыря Gardnerella vaginalis у мышей. J. Vis. Exp. (2020)

В этом видео демонстрируется использование сканирующей электронной микроскопии для визуализации колонизации бактерий и взаимодействия хозяина с патогеном в эпителии мочевого пузыря в модели мышей до инфицирования.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры, связанные с животными моделями, были рассмотрены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным советом JoVE.

  1. Визуализация мочевого пузыря с помощью сканирующей электронной микроскопии

    ПРИМЕЧАНИЕ: Эту процедуру можно провести в любой момент времени, когда требуется визуализация уротелия. Как показано на рисунке 1 (фиолетовые квадраты), уропатогенные взаимодействия E. coli (UPEC) и уротелиального организма лучше всего визуализировать между 6 чами и 24 часами после инокуляции UPEC во время формирования резервуара, а уротелиальная эксфолиация, вызванная Gardnerella vagina....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
24362_Figure1.jpg

Рисунок 1. Схема модели мыши. Временная шкала выделена для отражения этапов или процедур модели, описанной в протоколе. Фаза 1 (оранжевый): Создание внутриклеточных уропатогенных резервуаров E. coli (UPEC). Мыши трансуретрально инъеки.......

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Иглы размером 30G x 1/2BD305106Для катетеров
5 1/2" прямой щипца гемостатМакКессон487377Фиксация мочевого пузыря in situ
ACE 600 Sputter coaterLeica Обработка выборок SEM
Заготовка алюминиевого SEMТед Пелла16111Обработка выборок SEM
Хлорид кальцияEMS12340Фиксация мочевого пузыря in situ
Проводящая углеродная клеевая вкладкаТед Пелла16084-1Обработка выборок SEM
Проводящая серебряная краскаТед Пелла16034Обработка выборок SEM
Критическая сушилка CPD 300Leica Обработка выборок SEM
Металлический клипс цитоворонкиСимпортM964Bцитоспан анализы мочи
ЭтанолEMS15050Обработка выборок SEM
ГлюкозаSigmaG7528Для среды роста G. vaginalis NYCIII
ГлутаральдегидEMS16320Фиксация мочевого пузыря in situ
Набор для окраски Hema 3Фишер23123869Цитоспрутованный анализ мочи
HEPESCellgro25-060-CLДля среды роста G. vaginalis NYCIII
ИридийТед Пелла91120Обработка выборок SEM
Merlin FE-SEMZeiss Сканирующий электронный микроскоп
Очиститель воды Milli-QМиллипорIQ-7000Обработка выборок SEM
Тетроксид осмияEMS19170Обработка выборок SEM
ПараформальдегидEMS15710Фиксация мочевого пузыря in situ
Полиэтиленовые трубкиИнтрамедик427401для катетеров
Протеозный пептон #3ФишерDF-122-17-4Для среды роста G. vaginalis NYCIII
Двулезовое лезвие бритвы с покрытием PTFEEMS72000Нарезка мочевого пузыря для СЭМ

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Mouse Bladder TissueBacterial Infection VisualizationScanning Electron MicroscopyFixative InstillationUrethral CatheterizationTissue SectioningOsmium Tetroxide StainingEthanol DehydrationCritical Point DryingBladder Urothelium

Related Articles