$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. Жидкий токсичный анализ C. elegans с помощью Aeromonas
ПРИМЕЧАНИЕ: Чтобы избежать загрязнения, следует выполнять этапы в ламинарном вытяжном выпоке.
- На следующий день после посева червей L1 на плите ENGM (обогащённая среда роста нематод) с E. coli OP50, выберите по одной колонии каждого из четырёх штаммов Aeromonas и E. coli OP50, и выращивайте бульоном по 5 мл фунтов при температуре 37 °C в течение 16 часов.
ПРИМЕЧАНИЕ: В протоколе использовались следующие штаммы бактерий: E. coli OP50 — обычный источник пищи для C. elegans. A. dhakensis AAK1 — первый полностью секвенированный клинический патогенный изолят A. dhakensis . A. hydrophila A2-066, A. veronii A2-007 и A. caviae A2-9307121 являются клиническими изолятами из Национальной университетской больницы Чэн Кунг.
ПРИМЕЧАНИЕ: Для приготовления обогащённого NGM (ENGM) растворите 3 г NaCl, 5 г бактериального пептона, 1 г экстракта дрожжей и 30 г агар в 1 л деионизированной воды. Автоклав при 121 °C в течение 20 минут. Дождитесь, пока температура остынет до 55 °C в водяной бане, затем добавьте 1 мл 1 M CaCl2, 1 мл 1 M MgSO4, 1 мл 5% холестерина в этаноле и 25 мл буфера фосфатов. Помешайте, чтобы хорошо смешать. - Измерьте поглощение бактериального бульона приOD 600 .
- Центрифугуйте бактериальный бульон в концентрации 3500 г в течение 15 минут, чтобы удалить бульон LB. Суспензируйте бактерии и отрегулируйте бактериальный бульон доOD 600 = 3.0 с S-средой. Добавьте 195 мкл бактериального бульона в S-среде как минимум в 8 колодец пластины на 96 лунок.
ПРИМЕЧАНИЕ: Состав S-среды: Для приготовления S-среды смешать 40 мл S Basal, 0,4 мл 1 M цитрат калия, 0,4 мл раствора следовых металлов, 0,12 мл 1 MCaCl 2, 0,12 мл 1 MMgSO 4, 40 мкл 5% холестерина в этаноле и 1 мл 8 мМ FudR перед использованием. - Смойте черви L4 на пластине ENGM E . coli OP5 с помощью среды M9. Отрегулируйте червячный раствор до концентрации 5 червей на мкл и добавьте 5 мкл червячного раствора в каждую скважину пластины с 96 лунками. Убедитесь, что в каждой скважине примерно 25 червей.
- Инкубировать пластину с 96 лунками на шейкере при 200 об/мин при 25 °C.
- Посчитайте количество живых и мёртвых червей после 24, 48 и 72 часов. Рассчитайте показатели выживаемости каждой скважины по следующей формуле: (Живые черви/Общее количество червей) × 100%.
- Нарисуйте график рассеяния с помощью ежедневного расчёта данных.