Методическая статья

Таймлапс-визуализация сегрегации хромосом у флуоресцентно маркированных бактерий

203 просмотров

31 марта 2026 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Шумахер, Д., и Согаард-Андерсен, Л. Флуоресцентное живоклеточное изображение полного вегетативного клеточного цикла медленнорастущей социальной бактерии Myxococcus xanthus. J. Vis. Exp. (2018)

В этом видео демонстрируется использование живых клеток для отслеживания происхождения флуоресцентно помеченных хромосом во время деления бактериальных клеток. Он фиксирует динамику сегрегации хромосом с помощью таймлапс-фазового контраста и флуоресцентной микроскопии.

Протокол

1. Установка микроскопа и таймлапс-обработка

ПРИМЕЧАНИЕ: Описанный здесь протокол был разработан для инвертированного широкопольного микроскопа с автофокусом, масляным объективом PH3 100X/1,30 NA, моторизованной ступенью X, Y, камерой sCMOS, источником света, фильтрами для белоков зелёного флуоресцентного, красно-флуоресцентного или жёлтого флуоресцентного белка, а также инкубационной камеры с контролируемой температурой. Эта камера защищает клетки от света и при постоянной температуре.

  1. Перед началом микроскопии нагрейте инкубационную камеру и микроскоп до 32 °C в течение ~1–2 часа.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В зависимости от установки микроскопа, нагрев может занять больше времени. Предварительный нагрев необходим для снижения дрейфа и стабилизации системы управления автофокусом.
  2. Включите микроскоп и запустите программное обеспечение управления микроскопом. Выберите правильный объектив, а также нужные зеркала и фильтры для получения изображений фазового контраста, а также изображений белоков с зелёным флуоресцентным и красным флуоресцентным или жёлтым флуоресцентным изображением.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Микроскоп обычно поставляется с предпочтительным программным обеспечением для управления микроскопом и получения изображений. Здесь коммерчески доступное программное обеспечение (см. Таблицу материалов) использовалось для управления микроскопом и получением изображений.
  3. Добавьте каплю высококачественного погружного масла на объективную линзу и на дно образца, предварительно инкубированного при 32 °C. Разместите объектив в минимально возможном положении Z, чтобы не повредить его при размещении образца на стадии микроскопа. Поместите металлическую раму с образцом на ступень микроскопа, с «отверстием» к объективу. Надёжно закрепите образец в держателе сцены.
  4. Сосредоточьтесь на ячейках, приблизив ступень в направлении Z к цели. Двигайте ступень медленно, когда масло падает на нижнюю сторону образца, и объектив контактирует с ним. Двигайте ступень в направлении X/Y, пока в области обзора не появятся несколько отдельных ячеек, когда ячейки находятся в фокальной плоскости. Убедитесь, что в области обзора находится хотя бы одна флуоресцентная микросфера, чтобы позже выровнять полученные изображения.
    ПРИМЕЧАНИЕ: При оптимальных условиях плотность ячеек достигается 15–30 ячеек на область обзора (2 048 x 2 048 пикселей или 133,1 x 133,1 мкм).
  5. Откройте мастер многомерного приобретения в программном обеспечении управления микроскопом, чтобы настроить эксперимент с таймлапсом, который позволяет микроскопу получать изображения с разными длинами волн и позициями ступеней при необходимости.
    1. В главной вкладке активируйте таймлапс и несколько длин волн. Дополнительные вкладки появятся слева в окне.
    2. Нажмите на вкладку «Сохранение » и выберите «Каталог», чтобы выбрать пустую папку на жёстком диске компьютера и сохранить полученные изображения. Активируйте имя базы Increment, если файл существует , чтобы убедиться, что последовательные наборы данных не перезаписывают предыдущие. Затем дайте эксперименту название с датой и названием сорта или названием эксперимента.
    3. Нажмите на вкладку «Таймлапс », чтобы настроить параметры таймлапса. Установите длительность на 24 часа, а интервал времени — на 20 минут. Количество очков времени изменится автоматически.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Оптимальный временной интервал зависит от эксперимента и анализируемой функции клетки. Частое получение изображений может вызвать фотоотбеливание. Таким образом, необходимо эмпирически найти компромисс между временным разрешением и фотоотбеливанием. При удвоении 4–6 часов изображения можно легко получить с интервалом в 5 минут (или даже с меньшими интервалами, если хотите) для фазово-контрастной микроскопии. Если требуется флуоресцентная микроскопия в течение 24 часов, изображения следует делать с интервалом примерно 15–30 минут.
    4. Нажмите на вкладку Wavelengths . Выберите количество длин волн для каждого изображения в каждую точку времени, изменив число.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Для каждой длины волны слевая часть мастера многомерного приобретения появляется новая вкладка, и длины волн будут набираться в порядке сверху вниз. Для каждой длины волны настройки приобретения можно изменять отдельно.
    5. Нажмите на первую вкладку длины волны сверху. Выберите «Фазовый контраст» в выпадающем списке «Освещение ». Выберите 100 мс для Exposure и выберите Every Time Point в выпадающем списке Get . Отключите Auto Expose , выбрав Never в выпадающем списке.
    6. Повторите шаг 3.5.5 для каждой длины волны, которую нужно получить в каждой точке времени. Для экспериментальной установки и флуоресцентно маркированных белков, описанных здесь, используйте следующие параметры для экспозиции: 250 мс для белков mCherry fusion, 200 мс для YFP (жёлтый флуоресцентный белок) и 1 000 мс для GFP (зелёный флуоресцентный белок).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Оптимальные настройки освещения для каждого штамма и флуоресцентного белка должны быть определены заранее, изменяя интенсивность лампы и время получения изображения для каждой длины волны. Слишком долгие сроки получения изображения усиливают фототоксический эффект и в конечном итоге приведут к остановке роста и гибели клеток. Поэтому следует достичь компромисса между качеством изображения и жизнеспособностью клеток.
    7. Получите изображения с нескольких позиций стадии, чтобы увеличить количество ячеек, зафиксированных в одном эксперименте.
      1. Чтобы получить изображения с нескольких позиций уровня, активируйте Multiple Stage Positions во вкладке Main . Затем нажмите на вкладку «Сцена » и нажмите кнопку «Живой эфир», чтобы посмотреть поле зрения.
      2. Двигайте сцену в направлении X/Y, пока область интереса (ROI) не появится в поле зрения. Сохраните координаты X- и Y, нажав «+» во вкладке Stage . Переместите уровень снова в направлении X/Y, пока не найдёте новый ROI, и снова сохраняйте координаты, нажав «+». Продолжайте, пока не соберётся нужное количество регионов.
        ПРИМЕЧАНИЕ: При получении флуоресцентного изображения убедитесь, что интересующие области (ROI) не расположены слишком близко друг к другу, чтобы минимизировать фототоксичность.
  6. Ещё раз проверьте, что ячейки в фокусе, кликнув на разные сохранённые X- и Y позиции, и запустив аппаратный автофокус, нажав AFC hold , чтобы сохранить сохраненную Z-позицию постоянной в течение эксперимента.
  7. Запустите таймлапс-записи в программном обеспечении управления микроскопом, нажав Acquire в мастере многомерного приобретения .
    ПРИМЕЧАНИЕ: Для каждой полученной длины волны появляется одно окно, а также дополнительное окно, показывающее количество полученных точек времени и время до следующего получения изображения.
  8. Проверьте, остаются ли клетки в фокусе после первых нескольких точек таймлапс-записей, чтобы максимизировать качество изображений и при необходимости перефокусироваться.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
DMI6000B с AFCМикросистемы Leica11888945Автоматический инвертированный широкопольный флуоресцентный микроскоп с адаптивным управлением фокусировки
Универсальная монтажная рамаМикросистемы Leica11532338Держатель для сцены для разных размеров выборок
HCX PL FLUOTAR 100x/1.30 oil PH3Микросистемы Leica11506197Объектив фазового контраста
Камера Orca Flash 4.0Хамамацу115329524,0-мегапиксельная sCMOS-камера для захвата изображений
Набор фильтров TXR ET, kМикросистемы Leica11504170Набор флуоресцентных фильтров, Пример: 560/40 Эм: 645/75
Набор фильтров L5 ET, kМикросистемы Leica11504166Набор флуоресцентного фильтра, Пример: 480/40 Эм: 527/30
Набор фильтров YFP ET, kМикросистемы Leica11504165Набор флуоресцентных фильтров, Например: 500/20 Эм: 535/30
ProScan IIIПриорH117N1, V31XYZEF, PS3J100Контроллер автоматизации микроскопа с интерактивным центром управления
Источник света EL 6000Микросистемы Leica11504115Внешний источник флуоресцентного света
Incubator BLX BlackПекон11532830Чёрная инкубационная камера вокруг микроскопа
Контроль температуры 37-2 цифровойМикросистемы Leica11521719Автоматический контроль температуры для инкубационной камеры
Фильтр Filtropur BT25 с крышкой бутылки 0.2Сарштедт831,822,101Фильтр на крышке бутылки для стерилизации буферов
DeckgläserVWR630-1592Стеклянная крышка (60 x 22 мм, толщина: 0,7 мм)
Seakem LE agaroseЛонза50004Агароза для микроскопических слайдов
Leica Metamorph AFМикросистемы Leica11640901Программное обеспечение для управления микроскопом и для анализа изображений
Tetraspeck Microsperes, 0,5 мкмThermoFisherT7281Флуоресцентные микросферы

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Metamorph

Похожие статьи