Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Анализ устойчивости на этанол для оценки целостности матрицы биопленки

237 просмотров

26 февраля 2026 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Bucher, T. и др. Методологии изучения биопленок B. subtilis как модели характеристики ингибиторов маломолекулярных биопленок. J. Vis. Exp .(2016).

Это видео демонстрирует, как целостность матрицы биопленки влияет на устойчивость бактерий к этанолу, сравнивая колониообразующие единицы в необработанных и нарушений ингибиторами биопленок. Снижение CFU в образцах, обработанных ингибиторами, демонстрирует, что внеклеточный матрикс необходим для защиты клеток, встроенных в биопленку, от антимикробного стресса.

Протокол

1. Анализ устойчивости к этанолу

  1. Выращивайте биопленки и после 68 часов роста при 30 °C разрежьте колонии биопленки на две равные части с помощью лезвия бритвы и шаблона.
  2. Аккуратно поднимите каждую половину колонии биопленки с агарной пластины небольшой лопаткой и переместите её в микроцентрифугную трубку объемом 1,5 мл с 500 мкл фосфатно-буферного физиологического раствора (PBS). При необходимости соскребите оставшиеся клетки из пластины и перенесите их также в микроцентрифугную трубку.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Вторая половина колонии биопленки обрабатывается по-разному, в зависимости от того, является ли она контролем или для проверки устойчивости к стерилизующим средствам.
  3. Для контроля инкубировать вторую половину колонии биопленки в 500 мкл PBS. Для оценки устойчивости к стерилизующим агентам переведите вторую половину колонии биопленки на 500 мкл 50% (v/v) этанол.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Могут использоваться альтернативные стерилизующие агенты, такие как гипохлорит натрия. Для всех используемых стерилизующих агентов определите активную концентрацию и время инкубации в предварительном эксперименте.
  4. Инкубировать биопленочные колонии в течение 10 минут на столе при комнатной температуре.
  5. Центрифугуйте колонии биопленки на 5 минут при 18 000 г и аккуратно удалите супернатант пипеткой. Добавьте 300 мкл PBS.
  6. Слегка соникуйте клетки (амплитуда 10%, импульс 5 секунд) с помощью микронаконечника соникатора.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Энергия соникации должна быть достаточной для разделения заполнителей биопленки. Однако слишком жёсткая сонификация может привести к лизированию клеток. Заранее проверьте световой микроскопией, что используемая энергия соника не лизирует клетки и что все агрегаты растворяются.
  7. Добавьте 700 мкл PBS к итоговому объёму 1 мл. Проведите серийное разбавление (до 10-7) в PBS и распределите 100 мкл 3 разбавления на пластину ЛБ-1,5% агар, используя стерильные стеклянные шарики.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Оптимальные разбавления для покрытия должны быть определены в предварительном эксперименте, так как это зависит от количества клеток в интересующей колонии биопленки и уровня выживаемости клеток в ответ на стерилизующий агент.
  8. Инкубировать пластины ночью при 30 °C, подсчитать CFU и определить CFU/мл. На основе итогового CFU/ml каждой половины биопленочных колоний рассчитайте процент выживших.
    ПРИМЕЧАНИЕ: При проведении и анализе в соответствии с описанием две половины контрольной биопленки и необработанная и этанолированная половина необработанной биопленки должны дать различия в жизнеспособных клетках менее 10%, что подтверждает симметрию или устойчивость колонии соответственно. Альтернативно, результаты можно представить в общем CFU. Количество клеток в контрольной и необработанной биопленке колонии должно оставаться в том же порядке. В отличие от этанола, количество клеток в обработанной этанолом части колонии биопленки, обработанной малыми молекулами, ожидается, что снизится как минимум на два порядка, чтобы гарантировать повышенную чувствительность к стерилизующему агенту.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Лурия Брот, ЛенноксDifco240230 
Бакто АгарDifco214010 
Монобазичный калийфосфатСигма, 136,09 г/мольP0662-500G 
Калийфосфат дибазичныйFisher Scientific, 174,18 г/мольBP363-1 
3-(N-морфолино)пропансульфоновая кислотаFisher Scientific, 209,27 г/мольBP308-500 
Гексагидрат хлорида магнияMerck, 203,30 г/моль1.05833.0250 
Безводный хлорид кальцияJ.T. Baker, 110,98 г/моль1311-01 
Тетрагидрат марганцев(II) хлоридаСигма, 197,91 г/моль31422-250G-R 
Гексагидрат хлорида железа(III)Sigma, 270,30 г/мч)F2877-500G 
Безводный цинкхлоридAcros Organics, 136,29 г/моль424592500 
Тиамин гидрохлоридСигма, 337,27 г/мольT1270-100G 
L-триптофанFisher Scientific, 204,1 г/мольBP395-100 
L-фенилаланинСигма, 165,19 г/мольP5482-100G 
L-треонинСигма, 119,12 г/мольT8625-100G 
Глицерин безводныйBio-Lab Itd712022300 
Гидратируют соль мононатрия L-глутаминовой кислотыСигма, 169,11 г/мольG1626-1KG 
D-лейцинСигма, 169,11 г/моль855448-10G 
Этанол бесводныйГадот830000054 
Лезвие бритвыЭддисонNA 
Круглая целлюлозная фильтровая бумагаWhatman, 90 мм1001-090 
ГлутаральдегидEMS (Электронная микоскопия), 25% в воде16220 
ПараформальдегидСкорая помощь, 16% в воде15710 
Какодилат натрияMerck, 214,05 г/моль8.2067 
Хлорид кальция 2-гидратMerck, 147,02 г/моль1172113 
Шейкер 37 °CНью-Брансуик Scientific Innowa42NA 
ЦентрифугаНастольная центрифуга Eppendorf 5424NA 
Цифровой сонификатор, модель 250, используется с микронаконечником Double StepБрэнсонNA 
Инкубатор 30 °CПапкаNA 
Инкубатор 23 °CПапкаNA 
Система фильтрации, 500 мл, полистиролКорниг ИнкорпорейтедNA 
Вращательный шейкер — Orbitron Rotatory IIБёкельNA 

Теги

Колониеобразующие единицыанализ биопленкивнеклеточный матриксантимикробный стресссерийное разведениеметод соникациивыживаемость бактерий