Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Анализ устойчивости на этанол для оценки целостности матрицы биопленки

242 просмотров

⸱

26 февраля 2026 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Bucher, T. и др. Методологии изучения биопленок B. subtilis как модели характеристики ингибиторов маломолекулярных биопленок. J. Vis. Exp .(2016).

Это видео демонстрирует, как целостность матрицы биопленки влияет на устойчивость бактерий к этанолу, сравнивая колониообразующие единицы в необработанных и нарушений ингибиторами биопленок. Снижение CFU в образцах, обработанных ингибиторами, демонстрирует, что внеклеточный матрикс необходим для защиты клеток, встроенных в биопленку, от антимикробного стресса.

Протокол

1. Анализ устойчивости к этанолу

  1. Выращивайте биопленки и после 68 часов роста при 30 °C разрежьте колонии биопленки на две равные части с помощью лезвия бритвы и шаблона.
  2. Аккуратно поднимите каждую половину колонии биопленки с агарной пластины небольшой лопаткой и переместите её в микроцентрифугную трубку объемом 1,5 мл с 500 мкл фосфатно-буферного физиологического раствора (PBS). При необходимости соскребите оставшиеся клетки из пластины и перенесите их также в микроцентрифугную трубку.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Вторая половина колонии биопленки обрабатывается по-разному, в зависимости от того, является ли она контролем или для проверки устойчивости к стерилизующим средствам.
  3. Для контроля инкубировать вторую половину колонии биопленки в 500 мкл PBS. Для оценки устойчивости к стерилизующим агентам переведите вторую половину колонии биопленки на 500 мкл 50% (v/v) этанол.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Могут использоваться альтернативные стерилизующие агенты, такие как гипохлорит натрия. Для всех используемых стерилизующих агентов определите активную концентрацию и время инкубации в предварительном эксперименте.
  4. Инкубировать биопленочные колонии в течение 10 минут на столе при комнатной температуре.
  5. Центрифугуйте колонии биопленки на 5 минут при 18 000 г и аккуратно удалите супернатант пипеткой. Добавьте 300 мкл PBS.
  6. Слегка соникуйте клетки (амплитуда 10%, импульс 5 секунд) с помощью микронаконечника соникатора.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Энергия соникации должна быть достаточной для разделения заполнителей биопленки. Однако слишком жёсткая сонификация может привести к лизированию клеток. Заранее проверьте световой микроскопией, что используемая энергия соника не лизирует клетки и что все агрегаты растворяются.
  7. Добавьте 700 мкл PBS к итоговому объёму 1 мл. Проведите серийное разбавление (до 10-7) в PBS и распределите 100 мкл 3 разбавления на пластину ЛБ-1,5% агар, используя стерильные стеклянные шарики.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Оптимальные разбавления для покрытия должны быть определены в предварительном эксперименте, так как это зависит от количества клеток в интересующей колонии биопленки и уровня выживаемости клеток в ответ на стерилизующий агент.
  8. Инкубировать пластины ночью при 30 °C, подсчитать CFU и определить CFU/мл. На основе итогового CFU/ml каждой половины биопленочных колоний рассчитайте процент выживших.
    ПРИМЕЧАНИЕ: При проведении и анализе в соответствии с описанием две половины контрольной биопленки и необработанная и этанолированная половина необработанной биопленки должны дать различия в жизнеспособных клетках менее 10%, что подтверждает симметрию или устойчивость колонии соответственно. Альтернативно, результаты можно представить в общем CFU. Количество клеток в контрольной и необработанной биопленке колонии должно оставаться в том же порядке. В отличие от этанола, количество клеток в обработанной этанолом части колонии биопленки, обработанной малыми молекулами, ожидается, что снизится как минимум на два порядка, чтобы гарантировать повышенную чувствительность к стерилизующему агенту.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Лурия Брот, ЛенноксDifco240230 
Бакто АгарDifco214010 
Монобазичный калийфосфатСигма, 136,09 г/мольP0662-500G 
Калийфосфат дибазичныйFisher Scientific, 174,18 г/мольBP363-1 
3-(N-морфолино)пропансульфоновая кислотаFisher Scientific, 209,27 г/мольBP308-500 
Гексагидрат хлорида магнияMerck, 203,30 г/моль1.05833.0250 
Безводный хлорид кальцияJ.T. Baker, 110,98 г/моль1311-01 
Тетрагидрат марганцев(II) хлоридаСигма, 197,91 г/моль31422-250G-R 
Гексагидрат хлорида железа(III)Sigma, 270,30 г/мч)F2877-500G 
Безводный цинкхлоридAcros Organics, 136,29 г/моль424592500 
Тиамин гидрохлоридСигма, 337,27 г/мольT1270-100G 
L-триптофанFisher Scientific, 204,1 г/мольBP395-100 
L-фенилаланинСигма, 165,19 г/мольP5482-100G 
L-треонинСигма, 119,12 г/мольT8625-100G 
Глицерин безводныйBio-Lab Itd712022300 
Гидратируют соль мононатрия L-глутаминовой кислотыСигма, 169,11 г/мольG1626-1KG 
D-лейцинСигма, 169,11 г/моль855448-10G 
Этанол бесводныйГадот830000054 
Лезвие бритвыЭддисонNA 
Круглая целлюлозная фильтровая бумагаWhatman, 90 мм1001-090 
ГлутаральдегидEMS (Электронная микоскопия), 25% в воде16220 
ПараформальдегидСкорая помощь, 16% в воде15710 
Какодилат натрияMerck, 214,05 г/моль8.2067 
Хлорид кальция 2-гидратMerck, 147,02 г/моль1172113 
Шейкер 37 °CНью-Брансуик Scientific Innowa42NA 
ЦентрифугаНастольная центрифуга Eppendorf 5424NA 
Цифровой сонификатор, модель 250, используется с микронаконечником Double StepБрэнсонNA 
Инкубатор 30 °CПапкаNA 
Инкубатор 23 °CПапкаNA 
Система фильтрации, 500 мл, полистиролКорниг ИнкорпорейтедNA 
Вращательный шейкер — Orbitron Rotatory IIБёкельNA 

Теги

Колониеобразующие единицыанализ биопленкивнеклеточный матриксантимикробный стресссерийное разведениеметод соникациивыживаемость бактерий