1. Иммуноокрашивание белков: Для маркировки интересующих белков. Слейте PBS (фосфатно-солевой буфер) и добавьте на покровное стекло 20 мкл блокирующего буфера (1% масс./об. BSA (бычий сывороточный альбумин), 10% об./об. FBS (эмбриональная телячья сыворотка) в PBS с 0,1% об./об. Tween-20 (PBST)). Инкубируйте 1 ч при комнатной температуре. Слейте блокирующий буфер и нанесите 20 мкл первичных антител, разведенных в PBST + 1% масс./об. BSA. Инкубируйте 1 ч при комнатной температуре. Дважды промойте предметное стекло PBST в течение 10 мин при комнатной температуре с встряхиванием. Нанесите выбранные вторичные антитела на 1 ч при комнатной температуре в PBST + 1% масс./об. BSA. Промойте предметное стекло PBST в течение 10 мин при комнатной температуре с встряхиванием. 2. Окрашивание ядер: Контрастное окрашивание ядер после иммуноокрашивания. Слейте PBST и нанесите DAPI (4',6-диамидино-2-фенилиндол) или выбранный краситель для ядер на 1 мин при комнатной температуре. Дважды промойте предметное стекло PBS в течение 10 мин при комнатной температуре с встряхиванием. Шах, Р., и др.Мультиплексная флуоресцентная визуализация на уровне отдельных клеток для визуализации вирусных нуклеиновых кислот и белков, а также мониторинга инфекции ВИЧ, HTLV, ВГВ, ВГС, вируса Зика и гриппа. J. Vis. Exp. (2020)
В данном видео демонстрируется одновременная визуализация ДНК, РНК и капсидного белка ВИЧ-1 в инфицированных лимфоцитах человека с использованием гибридизации разветвленной ДНК и иммунофлуоресценции, что позволяет детально анализировать стадии репликации вируса в отдельных клетках.