Методическая статья

Измерение спонтанной индукции фагов в лизогенных бактериях в динамике

83 просмотров

31 августа 2026 г.

В этой статье

Аннотация

1. Временное прямое подсчет спонтанной индукции (Рисунок 1) 1.1. Приготовьте ночные стартовые культуры лизогена (например, лизогена P. aeruginosa PAO1, несущего фаги LES (Liverpool Epidemic Strain)) и индикаторного хозяина (PAO1-RifR (рифампицин-резистентный Pseudomonas aeruginosa PAO1)), инокулировав одну колонию в 5 мл бульона LB (бульон Лурии-Бертани), и инкубируйте при 37 °C с перемешиванием при 180 об/мин (18–24 ч). 1.2. Приготовьте свежие культуры лизогена и индикаторного хозяина, инокулировав ночные культуры в 100 мл бульона LB в соотношении 1:100, и инкубируйте при 37 °C с перемешиванием (180 об/мин). 1.3. Контролируйте рост лизогена, измеряя OD600 и количество жизнеспособных клеток методом Майлза-Мисры. Для этого каждые час в течение 8 ч с момента инокуляции отбирайте пробу объемом 1 мл из каждой культуры лизогена. 1.4. Сразу после сбора проведите серийное разведение пробы, добавив 100 мкл пробы в 900 мкл соответствующей среды. Тщательно перемешайте на вортексе на максимальной скорости, меняйте наконечник при каждом разведении и продолжайте серию разведений от 10⁻¹ до 10⁻⁹. 1.5. Нанесите по 10 мкл необходимых разведений в трех повторностях на чашку с агаром LB, дайте им высохнуть и инкубируйте при 37 °C в течение 18–24 ч. 1.6. Чтобы рассчитать количество жизнеспособных бактериальных клеток, выберите разведение с легко подсчитываемым количеством колоний. Подсчитайте число колоний в каждой точке, а затем используйте следующую формулу: ПРИМЕЧАНИЕ: По мере роста культуры лизогена в результате спонтанной индукции будут вырабатываться активные фаговые частицы. Продукция инфекционных фагов означает, что транскриптом популяции лизогенов теперь загрязнен экспрессией генов, связанных с литическим циклом репликации, вызванной сигналом литической репликации фага и соответствующим ответом клетки-хозяина. Таким образом, важно определить стадию роста, при которой соотношение лизогенных клеток к свободным инфекционным фаговым частицам максимально, чтобы максимально ограничить фоновый транскрипционный шум (генерируемый транскриптомом литического фага) в наборе данных. 1.7. Для подсчета инфекционных фаговых частиц в каждой временной пробе инокулируйте 5 мл стерильного 0,4% бактериологического агара в среде LB (верхний агар) 100 мкл индикаторного хозяина в середине экспоненциальной фазы (OD600: 0,4–0,5; в данном случае PAO1-RifR) в присутствии соответствующего селективного агента (в данном случае 50 мкг·мл⁻¹ рифампицина, так как МПК для хозяина PAO1 составляет всего 16 мкг·мл⁻¹). 1.8. Нанесите по 10 мкл того же серийного разведения (см. пункт 1.4) на инокулированный слой верхнего агара, дайте ему высохнуть перед инкубацией при 37 °C в течение 18–24 ч. 1.9. Для расчета количества инфекционных фаговых частиц выберите разведение с легко подсчитываемыми бляшками. Подсчитайте число бляшек в каждой точке. Определите время/условие, при котором спонтанная индукция на одну КОЕ (колониеобразующую единицу) минимальна, для последующих этапов эксперимента. Кришнамурти, Р., и др. Изучение влияния умеренных бактериофагов на их лизогены с помощью транскриптомики. J. Vis. Exp. (2024).

В этом видео демонстрируется временное количественное определение спонтанной индукции фагов у лизогенных Pseudomonas aeruginosa путем подсчета жизнеспособных бактериальных клеток (КОЕ) и инфекционных фаговых частиц (ПОЕ) с течением времени. Благодаря отбору проб через определенные интервалы во время роста и анализу образования колоний и бляшек данный метод позволяет определить время, когда спонтанная индукция минимальна. Это дает возможность выявить оптимальные временные точки для последующего транскриптомного анализа с минимальным влиянием литического цикла.

Протокол

1. Временной прямой подсчет спонтанной индукции (Рисунок 1)

  1. Подготовьте ночные стартовые культуры как лизогена (например, лизогена P. aeruginosa PAO1, несущего фаги LES (бактериофаги эпидемического штамма Ливерпуля)), так и индикаторного хозяина (PAO1-RifR) (рифампицин-резистентный штамм Pseudomonas aeruginosa PAO1), инокулировав одну колонию в 5 mL LB (бульона Луриа-Бертани), и инкубируйте при 37 °C с перемешиванием при 180 rpm (18–24 ч).
  2. Подготовьте свежие культуры лизогена и индикаторного хозяина, инокулировав ночные культуры в 100 mL LB в соотношении 1:100, и инкубируйте при 37 °C с перемешиванием (180 rpm).
    1. Контролируйте рост лизогена, измеряя OD600 и число жизнеспособных клеток методом Майлза — Мисры. Для этого каждые час в течение 8 ч с момента инокуляции отбирайте пробу объемом 1 mL из каждой культуры лизогена.
    2. Сразу после сбора проведите серийное разведение пробы, добавив 100 µL пробы в 900 µL соответствующей среды. Тщательно перемешайте на вортексе на максимальной скорости, меняйте наконечник при каждом разведении и продолжайте серию разведений от 10−1 до 10−9.
    3. Нанесите по 10 µL необходимых разведений в трех повторностях на чашку с LB-агаром, дайте им высохнуть и инкубируйте при 37 °C в течение 18–24 ч.
    4. Для расчета количества жизнеспособных бактериальных клеток выберите разведение с легко подсчитываемыми колониями. Подсчитайте число колоний в каждой точке нанесения, а затем используйте следующую формулу:
       

      figure-protocol-1


      ПРИМЕЧАНИЕ: По мере роста культуры лизогена в результате спонтанной индукции будут вырабатываться активные фаговые частицы. Продукция инфекционных фагов означает, что транскриптом популяции лизогена теперь загрязнен экспрессией генов, связанных с литическим циклом репликации, вызванной сигналом репликации литического фага и соответствующим ответом клетки-хозяина. Таким образом, важно определить стадию роста, при которой соотношение лизогенных клеток к свободным инфекционным фаговым частицам максимально, чтобы максимально ограничить фоновый транскрипционный шум (генерируемый транскриптомом литического фага) в наборе данных.

  3. Для подсчета инфекционных фаговых частиц в каждой временной пробе инокулируйте 5 mL стерильного 0,4% бактериологического агара в LB (верхний агар) 100 µL культуры индикаторного хозяина в середине экспоненциальной фазы (OD600: 0,4–0,5; в данном случае PAO1-RifR) в присутствии соответствующего селективного агента (в данном случае 50 µg·mL−1 рифампицина, так как МПК для хозяина PAO1 составляет всего 16 µg·mL−1)
    1. Нанесите по 10 µL того же серийного разведения (см. шаг 1.2.2) на инокулированный слой верхнего агара, дайте им высохнуть и инкубируйте при 37 °C в течение 18–24 ч.
    2. Для расчета количества инфекционных фаговых частиц выберите разведение с легко подсчитываемыми бляшками. Подсчитайте число бляшек в каждой точке нанесения.
       

      figure-protocol-2
    3. Определите время/условие, при которых спонтанная индукция на одну КОЕ (колониеобразующую единицу) минимальна, для последующих этапов эксперимента.

Результаты

figure-results-1

Рисунок 1: Схема эксперимента по определению количества ПФЕ и КОЕ лизогена из одного и того же образца.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
PAO1 6 
LESB58 6 
фаги LESИндуцированы и очищены из LESB58 с использованием норфлоксацина.  
Бульон для лизогении (LB)Merck1.10285.500 
Агар LBMerck1.10283.500 
Агар-агарFisherA/1080/53 
Верхний агар0,4 г агара + 2,5 г бульона LB на 100 мл воды; автоклавировать и использовать.- 
РифампицинSigma (сток: 50 мг/мл в метаноле) — тщательно перемешать перед использованием 0.22µm профильтруйте для стерилизации и храните при -20°C до использования)R3501 

Теги

Метод агаровых слоевколониеобразующие единицыбляшкообразующие единицыPseudomonas aeruginosaвременной подсчетлитический циклклетки-индикаторысерийное разведение