Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Микрохирургическая Венозная Чехол Артериальная-Бифуркация Аневризмы в кролик Модель: Технические аспекты

13.7K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/2718

⸱

11 мая 2011 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Neurosurgery, Hospital Rudolfstiftung, 2Department of Neurosurgery, Kantonsspital Aarau, 3Cerebrovascular Research Group, Department of Biomedical Research, Medical University of Vienna, 4Cerebrovascular Research Group, Department of Intensive Care Medicine, University of Berne, 5Centre for Anatomy and Cell Biology, Department of Systematic Anatomy, Medical University of Vienna, 6Department of Neurology, Paracelsus University Salzburg

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

Оптимальную методику для микрохирургического создания артериальных аневризм бифуркации имитируя бифуркации человека аневризм сосудов головного мозга описывается. Венозный мешок зашивается в искусственно созданных истинное бифуркации и общей сонной артерии. Упрощенный микрохирургической техники и агрессивные послеоперационной антикоагулянтной и анальгезии привести к минимуму заболеваемость и высокий уровень проходимости аневризмы.

Аннотация

Для разрыва аневризмы головного мозга человека эндоваскулярная эмболизация стал равноценной альтернативой для аневризмы отсечения. 1 Однако крупных клинических испытаний показали, разочарование долгосрочные результаты с неприемлемыми высокие показатели реканализации аневризмы и задержки разрыва аневризмы. 2 Для преодоления этих проблем, животных экспериментальных исследований имеют решающее значение для разработки более совершенных эндоваскулярных устройств. 3-5

Несколько животных моделях у крыс, кроликов, собак и свиней имеются. 6-8 Сравнение различных животных моделях показали превосходство кролика модели с точки зрения гемодинамики и сопоставимости свертывающей системы и экономической эффективности. 9-11

Венозный мешок артериальной модель бифуркации у кроликов образуется венозный мешок зашивается в искусственно созданных истинное бифуркации и общей сонной артерии (ССА). Главное преимущество этой модели верны бифуркационные гемодинамики. 12 основных недостатков ГНФАР высокой микрохирургических технические требования и высокие показатели заболеваемости и смертности до 50%. 13 Эти ограничения привели к менее частое использование этого аневризмы модели в последние лет. Эти недостатки могут быть преодолены с улучшением хирургических процедур и изменение пери-и послеоперационных обезболивающее управления и антикоагулянтов. 14-16 Наши методы сообщили в этой статье демонстрируют эту оптимальную методику для микрохирургического создания артериальных аневризм развилки.

Протокол

1. Расположение и подготовка животных

Эксперименты были утверждены ответственные местных этических комитетов и осуществляется в соответствии с Felasa руководящих принципов.

  1. Начало общей анестезии женского Новая Зеландия Белый кролик (2,5-3,5 кг) с внутримышечного введения кетамин (30mg/kg) и Ксилазин (6mg/kg) и продолжить после механической интубации (труба диаметром 4 мм, длина 18 мм) с газовым наркозом ( изофлюрана) в рамках мониторинга ЭКГ. Выполните боли мониторинг через носок щепотку все 15 минут и адаптировать анестезии в случае положительного ответа.
  2. Fix кролика в лежачем положении на bodywarm пластины.
  3. Подготовка области к операции по удалению волос, доносящиеся из угла челюсти до середины грудной клетки. Выполнение всех процедур в стерильных условиях.

2. Подготовка наружной яремной вены

  1. Выполните средней линии разрез от угла челюсти вниз с рукояткой Стэрни.
  2. Используя операцию микроскоп, выберите 1 см в длину сегмента левой наружной яремной вены без венозной ветви и изолировать его микрохирургически (рис. 1а). Во время всей этой операции часто применяют 4% папаверин HCl раствор и раствор антибиотика (неомицин сульфат 5mg/ml) местно на сосуды и анастомозы, чтобы предотвратить спазм сосудов и местных инфекций.
  3. Перевязывать вену проксимально и дистально с 4-0 швов полифиламентных (Викрил, Ethicon Inc, Нью-Джерси, США), то резекцию его и хранить его в гепаринизированной солевой (1000 IU гепарина в 20 мл 0,9% физиологического раствора и 1 мл 4% папаверин HCl ).

3. Подготовка и общей сонной артерии (ОСО)

  1. Подготовка сегмента левого ОСО, доносящиеся из бифуркации сонной артерии до дуги аорты. Заповедник, насколько это возможно артериальной ветки, медиально и поставке гортани и трахеи структур, а также всех нервных структур.
  2. Подготовка правой ОСА. Мобилизация его до бифуркации сонной артерии и вниз, чтобы bracchiocephalic ствола.
  3. Администрирование 1000 МЕ гепарина внутривенно.
  4. Клип право ОСО временно чуть ниже бифуркации сонной артерии.
  5. Лигировать право ОСО проксимально прямо над брахиоцефальных ствола. Cut право ОСО выше лигатура и орошать пень с гепарином физиологического раствора.
  6. Вырезать и резекцию тщательно адвентиции на свободный конец правой ОСА. Бесплатный тщательно сегменте левого ОСО планируется анастомоз адвентиции и клип его дистально и проксимально.

4. Анастомоз как ОСО

  1. Выполните эллиптической arteriotomy левого ОСО между клипами, в соответствии с размером запланированной анастомоза с правом ОСО и венозной сумке. Промывать левой ОСО с гепарином физиологического раствора. (Рис. 1б)
  2. Шовный задней окружности право CCA-пень в arteriotomy левого ОСО, используя 4:56, не рассасывающиеся швы 10-0 мононити (Ethilon 10-0, Ethicon Inc, Нью-Джерси, США).
  3. Сделать продольного разреза в культи правой ОСО адаптироваться к половине окружности венозного сумке. Анастомозируют обратной стороны стены венозной мешочек сначала с arteriotomy в левом ОСО, используя опять от 4 до 5 10-0 швов. Затем анастомозируют обратной стороны венозной чехол с задней правой ОСО с 3 до 4 швов. (Рис. 1в)
  4. Выполните анастомоза в том же порядке на передней стороне. (Рис. 1, г)
  5. Удалить дистальных клип на правой ОСА. Аневризмы, как правило, не полностью запечатаны, поэтому мыть захваченного воздуха и мусора.
  6. Печать шва линии вокруг анастомоза и шейки аневризмы с жировой ткани и фибринового клея (Evicel, Ethicon Biosurgery Inc, Нью-Джерси, США). Удалите оставшиеся клипы.
  7. Используйте 4-0 рассасывающиеся нити (Monocryl, Ethicon Inc, Нью-Джерси, США) за узловыми швами подкожную а затем и для работы cutaneus шва.

5. Послеоперационные управления

  1. Администрирование 10 мг / кг внутривенно ацетилсалициловой кислоты и 60 мл 5% раствора глюкозы подкожно.
  2. Применение трансдермального фентанила матрицы патчи выпуская 12,5 мкг / час в бритой области шеи животных для эффективного обезболивания в течение 72 часов.
  3. Администрирование 250 МЕ / кг низкомолекулярного гепарина подкожно ежедневно в течение 2 недель.

6. Представитель Результаты:

Если процедура проводится правильно, аневризма останется патента и животные выздоравливают в течение около 3 дней. По нашему опыту визуализации процедур должно быть сделано как минимум через неделю. В противном случае животные, возможно, не будет мириться с процедурой и может быть потеряно. Для эмболизации мы рекомендуем подождать около 4 недель, чтобы гарантировать дополненияТе эндотелизации аневризмы neck.Using представлены методы и управление авторов может достичь аневризмы проходимость у 85,7%, а не смертность в своих недавно опубликованных серии 14. Чтобы минимизировать высокие темпы сообщили кишечных осложнений до 20%, 12 мы предоставили длительное послеоперационное обезболивающее управления 72 часа обезболивание, как в сравнении с обычным 24-часовой analgesia.This активизировались управления не привело к желудочных осложнений. Агрессивное управление антикоагулянтной важно для достижения достаточного ставки проходимости аневризмы. Это идет вместе с выводами под Грюнвальдом и соавт. показывающие положительный эффект комбинированной антикоагулянтной 17. Из-за агрессивной антикоагулянтной очень важно иметь эффективный герметизации анастомоза. Мы сделали очень хороший опыт использования новых фибринового клея (Evicel, Ethicon Biosurgery Inc, Нью-Джерси, США). Кроме того, мы рекомендуем использовать небольшие кроликов (максимум 3,5 кг), как в нашем опыте осложнений часто связаны с избыточным весом предметов.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Авторы рекомендуют внимательно следующие важные хирургические ключевых шагов для достижения хороших результатов и патентной аневризмы:

  1. Тщательные вскрытия длинный сегмент левой ОСО для легкой анастомоза без разрушения нервов и малых судов.
  2. Тщательное удаление высоко тромбогенного periadventitial волокнистая ткань до создания анастомоза.
  3. Создание tensionless анастомоза.
  4. Меньше швов: предлагаемая последовательность anastomsis сайтов, начиная с задней стороны обеспечивает лучший к...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Нет конфликта интересов объявлены.

Благодарности

Это исследование было поддержано "Медицинского научного фонда майор города Вены» и Ethicon Biosurgery, Inc Нью-Джерси, США. Авторы выражают благодарность профессору Хевер Ferraz-Лейте, директор «Европейский семинар по микрохирургии и церебральный реваскуляризации 'в Медицинский университет Вены, Австрия, за его ценный обучения микрохирургической.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Название реагента Компания Номер в каталоге Комментарии
Vicryl4-0 полифиламентных восстанавливаемых швов Ethicon Inc J386H
Ethilon 10-0 monofil, не рассасывающиеся швы Ethicon Inc 2814 иглы конические точки
Evicel Bioglue Ethicon Biosurgery ООО 3901
Фентанил кожные патч 12,5 мкг / ч Любой genericon
Гепарин Любой genericon
0,9% Saline Любой genericon
4% Папаверин HCl Любой genericon
Неомицин сульфат 5 мг / мл Любой genericon
Кетамин 50мг/мл Любой genericon
Ксилазин 20mg/ml Любой genericon

Ссылки

  1. Molyneux, A., Kerr, R., Yu, L. International subarachnoid aneurysm trial (ISAT) of neurosurgical clipping versus endovascular coiling in 2143 patients with ruptured intracranial aneurysms: a randomised comparison of effects on survival, dependency, seizures, rebleeding, subgroups, and aneurysm occlusion. Lancet. 366, 809-817 (2005).
  2. Mitchell, P., Kerr, R., Mendelow, A., Molyneux, A. Could late rebleeding overturn the superiority of cranial aneurysm coil embolization over clip ligation seen in the International Subarachnoid Aneurysm Trial. J Neurosur. 108, 437-442 (2008).
  3. Bavinzski, G. Histopathological findings in experimental aneurysms embolized with conventional and thrombogenic/antithrombolytic Guglielmi coils. Minim Invasive Neurosurg. 42, 167-174 (1999).
  4. Bocher-Schwarz, H. G. Histological findings in coil-packed experimental aneurysms 3 months after embolization. Neurosurgery. 50, 379-384 (2002).
  5. Sherif, C., Plenk, H., Grossschmidt, K., Kanz, F., Bavinzski, G. Computer-assisted quantification of occlusion and coil densities on angiographic and histological images of experimental aneurysms. Neurosurgery. 58, 559-566 (2006).
  6. Massoud, T., Guglielmi, G., Ji, C. Experiemental saccular aneurysms. 1. Review of surgically constructed models and their laboratory applications. Neurorad. 36, 537-546 (1994).
  7. Anidjar, S., Salzmann, J., Gentric, D. Elastase induced experimental aneurysms in rats. Circulation. 82, 973-981 (1990).
  8. Wakhloo, A., Schellhammer, F., de Vries, J. Self-expanding and balloon-expandable stents in the treatment of carotid aneurysms: an experimental study in a canine model. AJNR. 15, 493-502 (1994).
  9. Dai, D. Histopathologic and immunohistochemical comparison of human, rabbit, and swine aneurysms embolized with platinum coils. AJNR Am J Neuroradiol. 26, 2560-2568 (2005).
  10. Shin, Y. S. Creation of four experimental aneurysms with different hemodynamics in one dog. AJNR. 26, 1764-1767 (2005).
  11. Abruzzo, T. Histologic and morphologic comparison of experimental aneurysms with human intracranial aneurysms. AJNR Am J Neuroradiol. 19, 1309-1314 (1998).
  12. Bavinzski, G. Experimental bifurcation aneurysm: a model for in vivo evaluation of endovascular techniques. Minim Invasive Neurosurg. 41, 129-132 (1998).
  13. Spetzger, U. Microsurgically produced bifurcation aneurysms in a rabbit model for endovascular coil embolization. J Neurosurg. 85, 488-495 (1996).
  14. Sherif, C., Marbacher, S., Erhardt, S., Fandino, J., J, Improved microsurgical creation of venous-pouch arterial-bifurcation aneurysms in rabbits. AJNR. , Forthcoming Forthcoming.
  15. Marbacher, S. Complex Bi-Lobular, Bi-Saccular, and Broad-Necked Microsurgical Aneurysms Formation in the Rabbit Bifurcation Model for the Study of Upcoming Endovascular Techniques. AJNR. , Forthcoming Forthcoming.
  16. Sherif, C., Plenk, H. Quantitative angiographic and histopathologic evaluation of experimental aneurysms. AJNR. , Forthcoming Forthcoming.
  17. Grunwald, I. Anticoagulation regimes and their influence on the occlusion rate of aneurysms: an experimental study in rabbits. Neurosurg. 57, 1048-1054 (2005).
  18. Forrest, M. D., O'Reilly, G. V. Production of experimental aneurysms at a surgically created arterial bifurcation. AJNR Am J Neuroradiol. 10, 400-402 (1989).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Микрохирургическая Венозная Чехол Артериальная-Бифуркация Аневризмы в кролик Модель: Технические аспекты
Свяжитесь с нами
Рекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

Авторские права © 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.