$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. Изотермические УФ-отверждения из NOA63
- Пользовательские камеры лечения был разработан с использованием стекло (75 мм х 25 мм х 1 мм), толщина 1 мм Spacer тефлон, и алюминиевая пластина (75 мм х 25 мм х 3 мм), как показано на рисунке 1. Камере скрепляется с помощью небольших клипов связующего.
- Inject NOA63 в камеру через отверстие в распорку тефлоновым использованием 18 иглы. NOA63 может быть слегка нагревают, чтобы облегчить инъекции.
- Место камеру на горячей плите установлена на уровне 125 ° С и дать тепло к равномерной температуре в течение 5 мин.
- Предварительное лечение NOA63 в УФ-камеры лампы (λ макс = 365 нм, см. таблицу) в течение 20 мин с лампой 6,5 см от поверхности стекла.
- Удалить NOA63 из камеры в то время как теплый использованием лезвия бритвы.
- После лечения NOA63 под ультрафиолетовым светом в течение 3 ч 40 м на плитке при 125 ° C.
- Магазин NOA63 высушенный при температуре -20 ° C.
2. С памятью формы Характеристика NOA63
- Подготовка образца гантели горячим прессованием вылечить NOA63 пленку с индивидуальных удар (см. таблицу), размеры которого показаны на рисунке 2.
- Нагрузка образца в динамический механический анализатор (DMA; см. таблицу) с пределом прибора. Установите прибор на «силу контролируемой" режиме, то программа тестирования процедуру следующим образом:
- Уравновешивания при 95,00 ° С
- Изотермический на 10.00 мин
- Рампа сила 0,300 N / мин до 2,500 N
- Изотермические для 5,00 мин
- Рампа 2,00 ° C / мин до 20,00 ° C
- Изотермический на 10.00 мин
- Рампа сила 0,300 N / мин до 0,015 N
- Изотермические для 5,00 мин
- Рампа 2,00 ° C / мин до 95,00 ° C
- Повторите шаги 2-9 еще два раза
3. Подготовка активных субстратов культуры клеток
- Отдельные образцы могут быть получены из изотермически Высохшая пленка SMP. Cut фильм SMP с бритвой, чтобы желаемый размер выборки. Место SMP на горячей плите на температуру, которая выше, чем Т г сократить модуля и легкость резки.
- Временная форма может быть зафиксирован в ряде различных способов. Здесь мы используем настольный гидравлический пресс с подогревом / охлаждением валики для тиснения временного топографии. Установите температуру валики при температуре выше T г.
- Эмбоссер было сделано эпоксидной смолы на виниловые пластинки. Это создаст временную форму параллельных канавок. Здесь, эмбоссер был треугольный пики от 35 до 40 мкм, высокая и 60 мкм, шириной, расположенными 80 мкм друг от друга. Эмбоссер может быть сделана из других материалов и с разной топологией, но должны быть жестче, чем на NOA63 тиснения температуры. Место SMP образцы лицом вниз на эмбоссер и месте образцы и тиснения в прессе.
- Применить ~ 100 кПа преднагрузки установить контакт между отопления валики и образцы и удерживать в течение ~ 5 минут, чтобы дать образцы для достижения одинаковой температуры.
- Применять 1-6 МПа до образцов и удерживать в течение 1 минуты. Напряжение 4,7 МПа приводит к неполному репликации рельефа тиснения. Временное топографии производится с закругленными пики от 25 до 35 мкм высотой и 150 мкм в ширину. SMP будет перелом, если больше напряжения. Применение меньших напряжениях ввести топологий с меньшими амплитудами.
- Уменьшить температуру ниже T г. Здесь мы используем возможность водяного охлаждения пресс валики.
- При температуре ниже Т г, удалить приложенной силы.
- Образцы можно хранить сухое при температуре -20 ° C. При хранении в этих условиях мы наблюдали менее 1 мкм, уменьшение амплитуды восстановления после двух месяцев для образцов с тиснением эмбоссер записи винила.
4. Активный эксперимент культуры клеток
- УФ-свете биологических кабинета безопасности (BSC) используется для стерилизации образцов. Упорядочить образцы лицом вниз в стерильные чашки без крышки и включаем свет УФ BSC в течение 6 ч.
- Флип образцы новых стерильные чашки лицевой стороной вверх. Включите свет УФ BSC в течение 6 ч.
- Образцы теперь должны быть доведены до относительно стабильного состояния перед покрытием с ячейками. Место образцов в 96 ячейках и добавить 150 мкл полной среды роста.
- Положите пластинку в 30 ° C инкубаторе с 5% CO 2 до достижения желаемого частичного восстановления. Здесь мы используем 30 часов для получения образцов с достаточно большой амплитудой, чтобы выровнять клеток.
- Образцы теперь могут быть покрыты клетками. Место образцы новых 96-луночный планшет.
- Добавить 150 мкл клеточной решение образцов. Здесь мы используем C3H/10T1/2 мышиных эмбриональных фибробластов на 20 000 клеток / мл для достижения изолированных клеток (как правило, не вступает в контакт с другими клетками).
- Для того чтобы клетки, собираются и распространяются на временные топография, места в 30 ° С инкубатор на 9,5 ч.
- Для анализа морфологии ячейкигии до начала переходного периода, извлеките образцы и проводить окрашивание и флуоресценции образцов. Этот материал экспонатов аутофлюоресценция на протяжении большей части ультрафиолетового и видимого диапазона. Флуорофоров в дальнем красном конце спектра, такие как Alexa Fluor 647 рекомендуется снизить фон.
- Чтобы запустить образцы для восстановления, перемещение пластины 37 ° C инкубатора и продолжать культуры в течение 19 ч, чтобы материал для восстановления и позволяют клеткам адаптироваться к их морфологии новой топографии.
- Удалить образцов и применять соответствующие пятна (фаллоидином для нитчатых актина изображений) и визуализации процедур.
5. Представитель Результаты:
Обработанная NOA63 представляет собой прозрачный, стекловидный твердый продукт, который обладает отличной памятью формы, свойства, как показано на рисунке 3. В этом случае материал был вылечен, как в протоколе 1 выше, и показывает равномерное Т г 51,1 ° С (определяется от начала падения Е '). Это наблюдается с той памятью формы циклов (отопление, деформирующий, охлаждения, восстановления, рисунок 3), что большой процент штамм был зафиксирован после разгрузки при 20 ° С, что соответствует фиксации соотношение 15 (R F) из 89,3 % (в среднем за три цикла, то же ниже R г). Фиксированная деформация восстановленных на восстановление отношение (R г) 84,4% в относительно небольшом диапазоне температур при нагреве. Кроме того, производительность памяти формы, не показали ухудшение до трех циклов, в том, что все кривые следуют почти точно друг с другом.
NOA63 была использована в данном протоколе, поскольку он легко доступен от производителя и поставляется в виде легко вылечить без растворителя форполимера с фотоинициатора. Тем не менее, ее состав не разглашается поставщика. Оказалось, чтобы высокие вложения клеток и жизнеспособности. Наконец, температура перехода может быть настроен, чтобы значимые величины восстановления между двумя ячейка совместима температурах. Ряд других полимерных систем также могут быть использованы с этим протоколом, если температура перехода совместим с культурой клеток и, если они способствуют адгезии клеток и жизнеспособность.
Амплитуда временного топографии (канавки) со временем уменьшается при температуре 30 ° C. К 30 ч при 30 ° С, амплитуда была уменьшена на ~ 50% (рис. 4, время 0) 16. Это снижает еще на 10% в течение ближайших 9,5 ч. При восстановлении срабатывает при повышении температуры до 37 ° С, амплитуда уменьшается до 0,5% от начальной амплитуды в течение 9,5 ч. Для тиснения используются и тиснения напряжение 4,9 МПа, что соответствует функциональные изменения от 13 мкм пазы для почти плоской поверхности.
Пример поведения клеток контролируется с помощью использования активных субстратов клеточной культуры является изменение цитоскелета организации. О временном рифленой поверхности перед восстановления срабатывает, актина микрофиламентов выровнять в направлении канавками (рис. 5а) 16. После восстановления, повышение температуры, микрофиламентов реорганизовали и ориентированы случайным образом. Контрольные образцы, которые имеют статические борозды или статической плоской поверхности не реорганизовать после повышения температуры (рис. 5, б, в).

Рисунок 1: Схема для лечения NOA63 камеры. Кросс-разрез (слева) и сверху вниз без стеклянной крышкой (справа).

Рисунок 2: геометрия гантели использовались для массового характеристика памяти формы W:. Ширина узком участке, L: длина узком участке, G: датчик длины, WO: ширина общая, Л. О.: длина наибольшая, D: Расстояние между захватами, R: Радиус филе, и РО: внешний радиус.

Рисунок 3: масса односторонним эффектом памяти формы одного NOA63 лечения, повторяется 3 раза (звездочка означает экспериментальных начала заболевания). В точке обозначены звездочкой, полимер был нагрет и затем деформированы, применяя стресс определить его временные формы. Этот штамм является постоянным, а при понижении температуры исправить временную форму ниже T г полимера. Затем температура увеличивается, и материал возвращается в постоянной формы, как временное напряжение снижается.

Рисунок 4: SMP восстановление может быть вызвано в клеточной культуры совместимы температурах. Амплитуда 25,6 ± 0,8 мкм представить следующие тиснения RECovered до 12,6 ± 1,5 мкм после 30 ч равновесия при 30 ° С (время 0, черные кружки). После образцы были перенесены на 37 ° С инкубатор (9,5 ч), амплитуда восстановилась до 1,1 ± 0,2 мкм в течение 3,5 ч. Амплитуда восстановился до ~ 0,3 ± 0,1 мкм в течение 9,5 ч и не обнаружено снижение по сравнению с окончательным 9,5 ч наблюдалось (красные треугольники). Планки погрешностей представляют одно стандартное отклонение (п = 4-6). Следы являются контактными профилометрии сканирует репрезентативных выборок.

Рисунок 5: цитоскелета сотовый актина перестраивает следующие топографические переход, конфокальной изображения клеток, окрашенных фаллоидином на тисненой субстратов показать микрофиламентов в соответствие с паз направлении (белая стрелка) до перехода и повышение температуры.. После перехода, микрофиламенты перегруппировались ориентированы случайным образом. Б, клетки на плоских подложках контроля показывают, случайно ориентированных микрофиламентов до и после повышения температуры. С, Ячейки рифленые подложки контроль показать микрофиламентов в соответствие с паз направлении до и после повышения температуры. Шкала бар составляет 100 мкм. Следы являются как показано на рисунке 4.