Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Выделение клубочков: метод получения интактных клубочков из мышиной почки

4K просмотров

30 апреля 2023 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Eymael, J. et al. Glomerular outgrowth в качестве анализа ex vivo для анализа путей, участвующих в активации теменных эпителиальных клеток. J. Vis. Exp. (2020)

В этом видео описывается метод выделения неповрежденных клубочков из почек мыши. Полученные таким образом инкапсулированные и декапсулированные клубочки могут быть в дальнейшем использованы для культивирования выростов теменных эпителиальных клеток из почки мыши.

Протокол

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

ПРИМЕЧАНИЕ: Необработанные, здоровые мыши дикого типа (WT) (n = 4) и cd44-/- (n = 4) были умерщвлены в возрасте 12−16 недель. Использовались как самцы, так и самки мышей. Все мыши были на фоне C57Bl/6.

1. Вскрытие почки мыши

  1. Принесите в жертву здоровых мышей WT или генетически измененных мышей в результате вывиха шейки матки.
  2. Препарируйте целые почки мыши сразу после принесения мышей в жертву. Для этого проводят срединную лапаротомию с помощью ножниц для живота, разрезая кожу, а затем мышцы живота. Удалите кишечник и поместите его рядом с мышкой.
  3. Освободите почки от соединительной ткани и вытащите почку с помощью хирургических щипцов, разрезая ножницами почечную артерию, почечную вену и мочеточник.
  4. Удалите почечные капсулы из почек, удерживая почку хирургическими щипцами, и оттяните капсулу с помощью другой пары щипцов.
  5. Поместите почки в 6-луночный планшет для клеточной культуры (2 почки/лунка), приготовленный из 2 мл сбалансированного раствора соли Хэнкса (HBSS) на лунку, и положите на лед.

2. Выделение клубочков из почки мыши

  1. Переложите почки в чашку Петри диаметром 100 мм и измельчите почки на небольшие кусочки размером 1−2 мм с помощью двух скальпелей. Держите кусочки фарша влажными, используя 1−2 мл HBSS.
  2. Поместите измельченные кусочки почки на металлическое сито толщиной 300 мкм и продавите почку через сито с помощью поршня шприца объемом 20 мл. Несколько раз промойте сито с HBSS между ними и соберите проточный поток в чистую чашку Петри с помощью серологической пипетки. Соберите также все, что осталось/прилипло к нижней стороне сита, соскоблив это скальпелем, и перенесите в собранный поток (гомогенат почек).
  3. Промойте гомогенат почек через сито 75 мкм с HBSS. Соберите проточный поток и затем промойте его через сито 53 мкм. Промойте оба сита с помощью HBSS, чтобы удалить все мелкие структуры.
    заметка: На этом этапе проточный фильтр только промывается, но не продавливается через сито 75 мкм и 53 мкм. Промывка HBSS необходима для удаления мусора и более мелких структур на решетах. Поэтому обычно используется всего 200−300 мл HBSS.
  4. Соберите структуры/материал почек, оставшиеся на сите размером 75 мкм и 53 мкм, промыв верхнюю поверхность сит модифицированной средой Игла Дульбекко (DMEM) с добавлением 20% эмбриональной телячьей сыворотки (FCS) и перенесите материал в 6-луночный микропланшет со сверхнизким уровнем прикрепления.
    заметка: Чтобы промыть верхнюю поверхность сита, промойте сито в наклонном положении (>45°) и соберите материал почки у края сита. Собранный материал обогащают как инкапсулированными, так и декапсулированными клубочками, показывая лишь несколько трубчатых фрагментов. Инкапсулированные клубочки очень липкие. Поэтому для сбора одиночных клубочков важно не допускать прилипания клубочков к поверхности чашки Петри или лунной тарелки. Чтобы избежать прилипания, используйте среду с 20% FCS и используйте пластины со сверхнизким содержанием крепления для этого этапа.

3. Культивирование клубочкового нароста

  1. Поднесите микропланшет со сверхнизким уровнем крепления к микроскопу с инвертированным светом и соберите одиночные инкапсулированные и/или декапсулированные клубочки с помощью пипетки объемом 20 мкл. Избегайте пипетирования других структур и мусора. После сбора одного клубочка в наконечнике пипетки добавьте свежую среду DMEM без собранного материала почек в тот же наконечник пипетки до объема 20 мкл.
  2. Перенесите одиночный клубочек со средой DMEM объемом 20 мкл в центр лунки 24-луночного планшета для культивирования клеток и инкубируйте в течение 3 ч при 37 °C и 5% (v/v)CO2, чтобы обеспечить прикрепление клубочка к центру лунки. Осторожно перемещайте пластину во избежание всплытия клубочка к границам скважины.
  3. После 3 ч инкубации клубочковый клубок прикрепляют к центру лунки. Осторожно добавьте 500 μL эндотелиальной базальной среды (EBM) с набором факторов роста, содержащим гидрокортизон, фактор роста эндотелия человека, экстракт мозга крупного рогатого скота и гентамицин сульфат-амфотерицин B (Таблица материалов) и дополнительные 5% (v/v) FBS и 1% (v/v) пенициллин/стрептомицин (pen/strep) в каждую лунку.
  4. Культивировать одиночные клубочки в течение 6 дней при 37 °C, 5% (v/v) CO2,
    ПРИМЕЧАНИЕ: В течение 6 дней формируется вырост, состоящий из клеток париетального эпителия. Если вы хотите проверить влияние конкретных соединений или лекарств на париетальные эпителиальные клетки, его следует добавить в среду в течение этого 6-дневного периода.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
24-луночный планшет для культивирования клетокКорнинг Костар
Цифровой микроскоп с инвертированным светом Вестбург, микроскоп EVOS fl
Медиум модифицированного орла Дульбекко Лонза
Фетальная бычья сыворотка Лонза
Сбалансированный солевой раствор ХэнксаGibco
чашка Петри Сарштедт Размер 100
скальпель Дальхаузен Размер 10
Сита Эндекоттс ЛтдРазмеры: 300 μм, 75 μм, 53 μм, сталь
Микропланшеты со сверхнизким уровнем крепления Корнинг Костар6-луночные планшеты
шприц БД ПластипакОбъем: 20 мл

Теги

HBSS