Методическая статья

Выделение почечных клеток мыши: метод выделения и получения первичной культуры эпителиальных клеток почечных канальцев

30 апреля 2023 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Ding, W. et al. Выделение, характеристика и высокопроизводительный анализ внеклеточного потока первичных эпителиальных клеток почечных канальцев мыши. J. Vis. Exp. (2018)

В этом видео мы демонстрируем шаги по выделению и очистке эпителиальных клеток почечных канальцев для широкого спектра исследований молекулярной биологии и клеточных культур.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Тканевая обработка и выделение первичных канальцевых клеток

  1. Извлеките почечные капсулы и мозговое вещество, измельчите обе почки на мелкие кусочки и инкубируйте их в 10 мл буфера для пищеварения в духовке при температуре 37 °C при осторожном вращении в течение 5 минут.
  2. Удалите все непереваренные ткани почек, пропустив буфер через фильтр 70 мкм. Добавьте 10 мл питательной среды, чтобы остановить переваривание.
  3. Для сбора трубчатых клеток центрифугируйте отфильтрованную клеточную суспензию при давлении 50 х г в течение 5 мин для сбора первой гранулы. Переложите надосадочную жидкость в новую пробирку и добавьте 5 мл питательной среды, центрифугируйте при 50 x g в течение 5 минут, чтобы убедиться, что все трубчатые клетки собраны во вторую гранулу. Центрифугирование происходит на более низкой скорости, в первую очередь для гранулирования тяжелых трубочек. Позже, после того как клетки восстанавливаются после выделения, чистую трубчатую культуру центрифугируют с более высокой скоростью во время субкультур.
  4. Суспендируйте первую гранулу в 20 мл питательной среды и центрифугируйте ее при 50 x g в течение 5 минут для сбора третьей гранулы.
  5. Вторую и третью гранулы ресуспендировать в 1 мл питательной среды. Смешайте 10 μL клеточной суспензии с 10 μL Trypan Blue, загрузите смесь в камеру A счетного стекла и запишите жизнеспособность клеток с помощью автоматического счетчика клеток.
  6. Засейте до 107 клеток (гетерогенная популяция) на одну чашку диаметром 60 мм, предварительно покрытую коллагеном, и дайте трубчатым клеткам прикрепиться на ночь.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Коллаген I Крысиный белок, хвост ThermoFisher Scientific A1048301
Коллагеназа II типа Уортингтон LS004176
Среда для роста эпителиальных клеток почек 2 набора PromoCell С-26130
Автоматический счетчик ячеек TC10 Био-Рад 506БР2119

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи