Method Article

Выделение микроглии методом иммуноокрашивания Сопряженная сортировка клеток: метод иммуноокрашивания для выделения микроглии из клеток мозга рыбок данио-рерио с использованием сортировки флуоресцентных активированных клеток

April 30th, 2023

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Mazzolini, J. et al. Выделение и экстракция РНК нейронов, макрофагов и микроглии из мозга личинок данио-рерио. J. Vis. Exp. (2018)

В этом видео мы изолируем микроглиальные клетки рыбок данио-рерио с помощью сортировки клеток, связанных с иммуноокрашиванием. Выделенная микроглия может быть использована в последующих экспериментах, чтобы понять ее роль в патологиях мозга.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Иммуноокрашивание микроглии

ПРИМЕЧАНИЕ: Все шаги выполняются при температуре 4 °C.

  1. Ресуспендируйте клеточную гранулу, полученную из клеток культуры мозга, 0,3 мл среды А + 2% нормальной козьей сыворотки или NGS. Разделите их на 3 пробирки по 1,5 мл: одну для неокрашенных клеток для измерения аутофлуоресценции из представляющих интерес клеток, вторую для вторичного антитела (1/200) для измерения неспецифического связывания вторичного антитела с микроглией, а третью в качестве теста (моноклональное антитело мыши 4C4 (специфичное для микроглии) (1/20) + вторичное антитело (1/200)).
    1. Добавляйте Low Endotoxin, Azide-Free (LEAF) в концентрации 1% в клетки (все пробирки), чтобы блокировать взаимодействие CD16/CD32 с Fc-доменом иммуноглобулинов. Инкубируйте клетки в течение 10 мин с легким перемешиванием каждые 5 мин.
    2. Добавьте антитело 4C4 (1/20) в клетки (пробирка 3) и инкубируйте в течение 30 минут с легким перемешиванием каждые 10 минут.
    3. Вращайте трубки при 300 г в течение 10 минут при 4 °C, затем выбросьте надосадочную жидкость.
    4. Промойте один раз 0,5 мл среды A + 2% NGS, затем открутите пробирки при 300 x g в течение 10 минут при 4 °C.
    5. Ресуспендировать клеточную гранулу 0,5 мл среды А + 2% NGS и инкубировать клетки с LEAF в концентрации 1% в течение 10 мин с легким перемешиванием каждые 5 мин.
    6. Добавьте вторичное антитело (1/200) в клетки (пробирки 2 и 3). Инкубируйте клетки в течение 30 минут с легким перемешиванием каждые 10 минут и защитой от света.
    7. Вращайте пробирки при 300 г в течение 10 минут при 4 °C, затем выбросьте надосадочную жидкость.
    8. Дважды промойте 0,5 мл среды A + 2% NGS, затем повторно суспендируйте клеточную гранулу 1 мл среды A + 2% NGS.
  2. Пропустите клеточную суспензию через колпачок клеточного фильтра толщиной 35 мкм и перенесите их в холодную 5 мл флуоресцентно-активируемую сортировку клеток или пробирки FACS на льду, защищенные от света.

2. Сортировка ячеек (FACS)

ПРИМЕЧАНИЕ: Выполняйте все шаги при температуре 4 °C.

  1. Сортируйте нейроны, макрофаги/микроглии и микроглии с помощью FACS.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Этот шаг обычно выполняется сотрудником объекта FACS, а настройки зависят от типа используемого оборудования.
    1. Добавьте DAPI в концентрации 1 г/мл в каждую пробирку FACS для мечения мертвых клеток.
    2. Настройте FACS и отсортируйте нейроны, макрофаги/микроглии или микроглии из всех клеток мозга. Отделите ячейки от мусора в зависимости от их размера и зернистости, затем затворите одиночные ячейки с помощью прямого и бокового рассеяния. Исключение мертвых клеток с помощью DAPI-мечения из живых клеток. Идентифицируйте нейроны, макрофаги/микроглии или микроглии по их соответствующему положительному окрашиванию.
  2. Соберите клетки в пробирки объемом 1,5 мл, содержащие 1 мл ледяной среды А + 2% NGS на льду. Используйте разные пробирки для каждого типа клеток.
    1. Вращайте пробирки при температуре 300 x g в течение 10 минут при 4 °C, а затем выбросьте надосадочную жидкость.
    2. Промойте один раз 0,5 мл среды А, затем выбросьте максимум надосадочной жидкости.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
ХепесGibco15630-056
D-глюкозасигмаГ8644-100МЛ
HBSS 1XGibco14170-088 (Английский)
Нормальная козья сыворотка (NGS)Сигнализация сотовой связи5425С
Крышка сетчатого фильтра 35 μмБД352235
Трубки FACSБД352063
Низкий уровень эндотоксина, не содержит азидов (LEAF)Биолегенда101321
Alexa Fluor 647 Козий антимышиный IgG (H+L)Технологии LifeА11008
Анти-4С4Предоставлено Катериной Беккер (Эдинбургский университет)
Сортировщик FACS FACSAria IIБДQMRI, объект FACS

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Microglia IsolationImmunostaining MethodFluorescent Activated Cell SortingZebrafish Brain CellsCell Size SortingFluorescence SortingPrimary AntibodiesSecondary AntibodiesBlocking ReagentFACS Sorting

Related Articles