Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Выделение микроглии методом иммуноокрашивания Сопряженная сортировка клеток: метод иммуноокрашивания для выделения микроглии из клеток мозга рыбок данио-рерио с использованием сортировки флуоресцентных активированных клеток

2.8K просмотров

30 апреля 2023 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Mazzolini, J. et al. Выделение и экстракция РНК нейронов, макрофагов и микроглии из мозга личинок данио-рерио. J. Vis. Exp. (2018)

В этом видео мы изолируем микроглиальные клетки рыбок данио-рерио с помощью сортировки клеток, связанных с иммуноокрашиванием. Выделенная микроглия может быть использована в последующих экспериментах, чтобы понять ее роль в патологиях мозга.

Протокол

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Иммуноокрашивание микроглии

ПРИМЕЧАНИЕ: Все шаги выполняются при температуре 4 °C.

  1. Ресуспендируйте клеточную гранулу, полученную из клеток культуры мозга, 0,3 мл среды А + 2% нормальной козьей сыворотки или NGS. Разделите их на 3 пробирки по 1,5 мл: одну для неокрашенных клеток для измерения аутофлуоресценции из представляющих интерес клеток, вторую для вторичного антитела (1/200) для измерения неспецифического связывания вторичного антитела с микроглией, а третью в качестве теста (моноклональное антитело мыши 4C4 (специфичное для микроглии) (1/20) + вторичное антитело (1/200)).
    1. Добавляйте Low Endotoxin, Azide-Free (LEAF) в концентрации 1% в клетки (все пробирки), чтобы блокировать взаимодействие CD16/CD32 с Fc-доменом иммуноглобулинов. Инкубируйте клетки в течение 10 мин с легким перемешиванием каждые 5 мин.
    2. Добавьте антитело 4C4 (1/20) в клетки (пробирка 3) и инкубируйте в течение 30 минут с легким перемешиванием каждые 10 минут.
    3. Вращайте трубки при 300 г в течение 10 минут при 4 °C, затем выбросьте надосадочную жидкость.
    4. Промойте один раз 0,5 мл среды A + 2% NGS, затем открутите пробирки при 300 x g в течение 10 минут при 4 °C.
    5. Ресуспендировать клеточную гранулу 0,5 мл среды А + 2% NGS и инкубировать клетки с LEAF в концентрации 1% в течение 10 мин с легким перемешиванием каждые 5 мин.
    6. Добавьте вторичное антитело (1/200) в клетки (пробирки 2 и 3). Инкубируйте клетки в течение 30 минут с легким перемешиванием каждые 10 минут и защитой от света.
    7. Вращайте пробирки при 300 г в течение 10 минут при 4 °C, затем выбросьте надосадочную жидкость.
    8. Дважды промойте 0,5 мл среды A + 2% NGS, затем повторно суспендируйте клеточную гранулу 1 мл среды A + 2% NGS.
  2. Пропустите клеточную суспензию через колпачок клеточного фильтра толщиной 35 мкм и перенесите их в холодную 5 мл флуоресцентно-активируемую сортировку клеток или пробирки FACS на льду, защищенные от света.

2. Сортировка ячеек (FACS)

ПРИМЕЧАНИЕ: Выполняйте все шаги при температуре 4 °C.

  1. Сортируйте нейроны, макрофаги/микроглии и микроглии с помощью FACS.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Этот шаг обычно выполняется сотрудником объекта FACS, а настройки зависят от типа используемого оборудования.
    1. Добавьте DAPI в концентрации 1 г/мл в каждую пробирку FACS для мечения мертвых клеток.
    2. Настройте FACS и отсортируйте нейроны, макрофаги/микроглии или микроглии из всех клеток мозга. Отделите ячейки от мусора в зависимости от их размера и зернистости, затем затворите одиночные ячейки с помощью прямого и бокового рассеяния. Исключение мертвых клеток с помощью DAPI-мечения из живых клеток. Идентифицируйте нейроны, макрофаги/микроглии или микроглии по их соответствующему положительному окрашиванию.
  2. Соберите клетки в пробирки объемом 1,5 мл, содержащие 1 мл ледяной среды А + 2% NGS на льду. Используйте разные пробирки для каждого типа клеток.
    1. Вращайте пробирки при температуре 300 x g в течение 10 минут при 4 °C, а затем выбросьте надосадочную жидкость.
    2. Промойте один раз 0,5 мл среды А, затем выбросьте максимум надосадочной жидкости.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
ХепесGibco15630-056
D-глюкозасигмаГ8644-100МЛ
HBSS 1XGibco14170-088 (Английский)
Нормальная козья сыворотка (NGS)Сигнализация сотовой связи5425С
Крышка сетчатого фильтра 35 μмБД352235
Трубки FACSБД352063
Низкий уровень эндотоксина, не содержит азидов (LEAF)Биолегенда101321
Alexa Fluor 647 Козий антимышиный IgG (H+L)Технологии LifeА11008
Анти-4С4Предоставлено Катериной Беккер (Эдинбургский университет)
Сортировщик FACS FACSAria IIБДQMRI, объект FACS

Теги

Сортировка по размеру клетокфлуоресцентная сортировкапервичные антителавторичные антителаблокирующий реагентсортировка методом FACS