Все процедуры с участием людей были выполнены в соответствии с институциональными, национальными и международными рекомендациями по благополучию человека и были рассмотрены местным институциональным наблюдательным советом.
1. Получение антиген-конъюгированных микросфер
- Выберите три разных флакона с магнитными микросферами с уникальными областями шариков, записывая идентификатор шарика и информацию о партии для каждого используемого флакона.
заметка: Следующие шаги будут выполнены для каждой отдельной области микросферы. Микросферы светочувствительны и должны быть защищены от длительного воздействия света. Во время промывки будьте осторожны, чтобы не потревожить микросферы. Если вас потревожат, подождите еще 60 секунд интервала.
- Вортексируйте микросферный материал в течение 60 с и обработайте ультразвуком в течение 5 мин перед использованием для диссоциации агрегированных шариков.
- Переложите 1,0 x 106 шариков в микроцентрифужные пробирки объемом 1,5 мл с низким содержанием белка.
- Вставьте трубку в магнитный сепаратор и дайте отделителю произойти в течение 60 с. Когда трубка все еще находится в магнитном сепараторе, осторожно удалите надосадочную жидкость, не потревожив гранулу гранул.
- Извлеките трубку из магнитного сепаратора, повторно суспендируйте шарики в 100 μл воды класса ВЭЖХ и сделайте вихрь в течение 30 с. Поместите трубку обратно в магнитный сепаратор на 60 с, а затем удалите надосадочную жидкость. Повторите этот протокол стирки дважды.
- Извлеките трубку из магнитного сепаратора и повторно суспендируйте промытые микросферы в 90 мкл 100 мМ одноосновного фосфата натрия, pH 6,2 (буфер активации) вихревым способом в течение 30 с.
- Добавьте 10 мкл 50 мг/мл Sulfo-NHS (разбавленного активационным буфером) к микросферам и осторожно вортексируйте в течение 10 с. Добавьте 10 мкл 50 мг/мл раствора EDC (разбавленного активационным буфером) и осторожно вортексируйте в течение 10 с. Инкубируйте микросферы в течение 20 мин при комнатной температуре (RT) с легким вихрем каждые 10 мин.
- Повторите шаги промывки 1,4-1,5 с 50 мМ MES, pH 5,0 (буфер для связи) вместо воды класса LC/MS, всего два промывки.
- Извлеките трубку из магнитного сепаратора и повторно суспендируйте шарики со 100 мкл буфера для связи вихрем в течение 30 с с последующим немедленным добавлением желаемого количества белка.
- Доведите общий объем до 150 мкл с помощью буфера для связи. Реакция смешивания вихревым соединением в течение 30 с и инкубация в течение 2 ч вращением при RT.
заметка: Для анализов, определенных в настоящем документе, конъюгации проводили со следующими концентрациями белка: Spike S1: 5 мкг; Нуклеокапсид: 5 мкг; Мембрана: 12,5 мкг.
- Повторите шаг мытья 1.4 с фосфатно-соевым буфером (PBS)-1% альбумином козьей сыворотки, 0,01% полисорбатом-20 (буфер для гашения) вместо воды класса LC/MS, всего два промывания. Ресуспендируйте промытые микросферы в 100 мкл закалочного буфера, содержащего 0,05% азида натрия, вихревым действием в течение 30 с.<бр/>
заметка: Дайте шарикам полностью закалиться в течение не менее 6 часов, прежде чем приступать к любой другой процедуре.
- Подсчитайте количество восстановленных микросфер с помощью автоматизированного счетчика клеток или гемоцитометра. Запишите наблюдаемую концентрацию шариков.
- Охладите связанные микросферы при температуре 4 °C в темноте.
2. Процедуры
- Производительность анализа (Базовый протокол)
- Ресуспендирование связанных микросфер вихревым путем в течение 30 с и ультразвуковой обработкой в течение ~60-90 с.
- Удалите необходимое количество коллоида каждого шарика из соответствующей пробирки и соедините коллоиды шариков в новой микроцентрифужной пробирке объемом 1,5 мл.
- Вставьте трубку в магнитный сепаратор и дайте отсоединиться в течение 60 секунд. Когда трубка все еще находится в магнитном сепараторе, осторожно удалите надосадочную жидкость, не потревожив гранулу гранул.
- Извлеките шарики из сепаратора, повторно суспендируйте гранулы 100 μл PBS-1% бычьего сывороточного альбумина, 0,01% Polysorbate-20 (буфер для анализа) и перемешайте в течение 30 с. Поместите пробирку в магнитный сепаратор и дайте произойти разделению в течение 60 с. Повторите этот протокол промывки (т.е. шаги 2.1.3-2.1.4) дважды.
- Отрегулируйте концентрацию 3-плексной рабочей микросферной смеси, добавив соответствующий объем буфера для анализа, чтобы получить конечную концентрацию 100 микросфер на 1 мкл для каждой мишени.
- Аликвоту 12,5 мкл смеси микросфер, приготовленной на стадии 2.1.5, в каждую лунку 384-луночного планшета или 25 мкл в каждую лунку 96-луночного планшета.
- Разбавьте образцы плазмы/сыворотки в 500 раз в буфере для анализа. Подготовьте стандартные образцы в соответствии с желаемым титрованием.
- Добавьте 12,5 мкл пробирного буфера в качестве пустого образца и добавьте каждый из разбавленных образцов или эталона в каждую предназначенную лунку 384-луночного планшета или 25 μл пустого, разбавленного образца или стандарта в каждую лунку 96-луночного планшета для образцов.
- Накройте пластину алюминиевым уплотнением или фольгой и выдерживайте в течение 1 ч при температуре RT на вибростенде, установленном на 700 об/мин.<бр/>
заметка: Схема кривых разрежения представлена в таблице 1.
- Приготовьте раствор антител против обнаружения человека (вторичные растворы антител) в концентрации 4 мкг/мл с буфером для анализа, как указано на шаге 2.1.11.
- Препарат Козлиный античеловеческий IgM, конъюгированный с IgA Super Bright 436 (SB)/Goat-anti-human, конъюгат Phycoerythrin (PE) обнаруживает антитела в концентрации 4 г/мл; или Goat-anti-human IgM, конъюгат SB/Козелий-античеловеческий IgG, конъюгат PE обнаруживает антитела в конъюнктуре 4 мкг/мл.
заметка: Для формата с 384 лунками требуется 12,5 мкл/лунка приготовленного раствора вторичного антитела, а для формата с 96 лунками требуется 25 мкл/лунка.
- Поместите пластину на магнитный сепаратор, быстро промойте и с силой переверните контейнер для биологически опасных веществ, чтобы удалить жидкость из лунок. Не переворачивая тарелку, с силой постучите ее по толстому комку бумаги.
- Промойте каждую лунку 100 мкл буфера для анализа и удалите жидкость путем принудительной инверсии над контейнером для биологически опасных веществ, как описано ранее. Повторите эти шаги (2.1.12-2.1.13) в общей сложности два стирки. Выбросьте все использованные пачки бумаги в контейнер для биологически опасных веществ.
- Добавьте 12,5 мкл рабочего раствора вторичного антитела в каждую лунку 384-луночного планшета или 25 мкл в каждую лунку 96-луночного планшета. Накройте пластину алюминиевым уплотнителем или фольгой и инкубируйте в течение 30 минут при температуре RT на вибростенде, установленном на 700 оборотов в минуту.
- Повторите шаги стирки 2.1.12-2.1.13.
- Добавьте 75 мкл буфера для анализа в каждую лунку 384-луночного планшета или 100 мкл в каждую лунку 96-луночного планшета. Накройте пластину алюминиевым уплотнителем или фольгой и выдерживайте в течение 5 минут при RT на встряхивателе для тарелок, установленном на 700 оборотов в минуту.
- Проанализируйте 60 мкл с помощью приборного анализатора в соответствии с инструкцией по эксплуатации.
Таблица 1: Серия разведения для стандартных кривых: Таблица коэффициентов разведения, используемых для стандартных кривых для серотипа IgG; представлена в виде 7-точечной последовательной кривой разведения 1:5, начиная с 1 мкг/мл для α-Spike S1 и α-нуклеокапсида и 5 мкг/мл для антител α-мембраны.
| Стандартный номер | Серия разбавлений | Anti-Spike S1 или N (μг/мл) | Антимембранный (μг/мл) |
| пустой | пустой | - T | - T |
| 1 | СТД7 1:1 | 1 | 5 |
| 2 | СТД6 1:5 | 0,2 | 1 |
| 3 | СТД5 1:25 | 0,04 | 0,2 |
| 4 | СТД4 1:125 | 0,008 | 0,04 |
| 5 | СТД3 1:625 | 0,0016 | 0,008 |
| 6 | СТД2 1:3125 | 0,00032 | 0,0016 |
| 7 | СТД1 1:15625 | 0,000064 | 0,00032 |