Методическая статья

Мультианалитный иммуногранулатический анализ: метод проточного иммуноанализа для одновременного обнаружения нескольких подтипов антител в образце сыворотки крови человека

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Fhied, C. L. et al., Динамический мониторинг сероконверсии с использованием мультианалитного иммуногранулометрического анализа для Covid-19. J. Vis. Exp. (2022).

Это видео описывает метод иммунологического анализа с использованием флуоресцентных магнитных шариков или микросфер в сочетании с различными антигенами для одновременного обнаружения различных изотипов антител в образце сыворотки. Анализ полезен для понимания сероконверсии во время инфекции или после вакцинации.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры с участием людей были выполнены в соответствии с институциональными, национальными и международными рекомендациями по благополучию человека и были рассмотрены местным институциональным наблюдательным советом.

1. Получение антиген-конъюгированных микросфер

  1. Выберите три разных флакона с магнитными микросферами с уникальными областями шариков, записывая идентификатор шарика и информацию о партии для каждого используемого флакона.
    заметка: Следующие шаги будут выполнены для каждой отдельной области микросферы. Микросферы светочувствительны и должны быть защищены от длительного воздействия света. Во время промывки будьте осторожны, чтобы не потревожить микросферы. Если вас потревожат, подождите еще 60 секунд интервала.
  2. Вортексируйте микросферный материал в течение 60 с и обработайте ультразвуком в течение 5 мин перед использованием для диссоциации агрегированных шариков.
  3. Переложите 1,0 x 106 шариков в микроцентрифужные пробирки объемом 1,5 мл с низким содержанием белка.
  4. Вставьте трубку в магнитный сепаратор и дайте отделителю произойти в течение 60 с. Когда трубка все еще находится в магнитном сепараторе, осторожно удалите надосадочную жидкость, не потревожив гранулу гранул.
  5. Извлеките трубку из магнитного сепаратора, повторно суспендируйте шарики в 100 μл воды класса ВЭЖХ и сделайте вихрь в течение 30 с. Поместите трубку обратно в магнитный сепаратор на 60 с, а затем удалите надосадочную жидкость. Повторите этот протокол стирки дважды.
  6. Извлеките трубку из магнитного сепаратора и повторно суспендируйте промытые микросферы в 90 мкл 100 мМ одноосновного фосфата натрия, pH 6,2 (буфер активации) вихревым способом в течение 30 с.
  7. Добавьте 10 мкл 50 мг/мл Sulfo-NHS (разбавленного активационным буфером) к микросферам и осторожно вортексируйте в течение 10 с. Добавьте 10 мкл 50 мг/мл раствора EDC (разбавленного активационным буфером) и осторожно вортексируйте в течение 10 с. Инкубируйте микросферы в течение 20 мин при комнатной температуре (RT) с легким вихрем каждые 10 мин.
  8. Повторите шаги промывки 1,4-1,5 с 50 мМ MES, pH 5,0 (буфер для связи) вместо воды класса LC/MS, всего два промывки.
  9. Извлеките трубку из магнитного сепаратора и повторно суспендируйте шарики со 100 мкл буфера для связи вихрем в течение 30 с с последующим немедленным добавлением желаемого количества белка.
  10. Доведите общий объем до 150 мкл с помощью буфера для связи. Реакция смешивания вихревым соединением в течение 30 с и инкубация в течение 2 ч вращением при RT.
    заметка: Для анализов, определенных в настоящем документе, конъюгации проводили со следующими концентрациями белка: Spike S1: 5 мкг; Нуклеокапсид: 5 мкг; Мембрана: 12,5 мкг.
  11. Повторите шаг мытья 1.4 с фосфатно-соевым буфером (PBS)-1% альбумином козьей сыворотки, 0,01% полисорбатом-20 (буфер для гашения) вместо воды класса LC/MS, всего два промывания. Ресуспендируйте промытые микросферы в 100 мкл закалочного буфера, содержащего 0,05% азида натрия, вихревым действием в течение 30 с.<бр/> заметка: Дайте шарикам полностью закалиться в течение не менее 6 часов, прежде чем приступать к любой другой процедуре.
  12. Подсчитайте количество восстановленных микросфер с помощью автоматизированного счетчика клеток или гемоцитометра. Запишите наблюдаемую концентрацию шариков.
  13. Охладите связанные микросферы при температуре 4 °C в темноте.

2. Процедуры

  1. Производительность анализа (Базовый протокол)
    1. Ресуспендирование связанных микросфер вихревым путем в течение 30 с и ультразвуковой обработкой в течение ~60-90 с.
    2. Удалите необходимое количество коллоида каждого шарика из соответствующей пробирки и соедините коллоиды шариков в новой микроцентрифужной пробирке объемом 1,5 мл.
    3. Вставьте трубку в магнитный сепаратор и дайте отсоединиться в течение 60 секунд. Когда трубка все еще находится в магнитном сепараторе, осторожно удалите надосадочную жидкость, не потревожив гранулу гранул.
    4. Извлеките шарики из сепаратора, повторно суспендируйте гранулы 100 μл PBS-1% бычьего сывороточного альбумина, 0,01% Polysorbate-20 (буфер для анализа) и перемешайте в течение 30 с. Поместите пробирку в магнитный сепаратор и дайте произойти разделению в течение 60 с. Повторите этот протокол промывки (т.е. шаги 2.1.3-2.1.4) дважды.
    5. Отрегулируйте концентрацию 3-плексной рабочей микросферной смеси, добавив соответствующий объем буфера для анализа, чтобы получить конечную концентрацию 100 микросфер на 1 мкл для каждой мишени.
    6. Аликвоту 12,5 мкл смеси микросфер, приготовленной на стадии 2.1.5, в каждую лунку 384-луночного планшета или 25 мкл в каждую лунку 96-луночного планшета.
    7. Разбавьте образцы плазмы/сыворотки в 500 раз в буфере для анализа. Подготовьте стандартные образцы в соответствии с желаемым титрованием.
    8. Добавьте 12,5 мкл пробирного буфера в качестве пустого образца и добавьте каждый из разбавленных образцов или эталона в каждую предназначенную лунку 384-луночного планшета или 25 μл пустого, разбавленного образца или стандарта в каждую лунку 96-луночного планшета для образцов.
    9. Накройте пластину алюминиевым уплотнением или фольгой и выдерживайте в течение 1 ч при температуре RT на вибростенде, установленном на 700 об/мин.<бр/> заметка: Схема кривых разрежения представлена в таблице 1.
    10. Приготовьте раствор антител против обнаружения человека (вторичные растворы антител) в концентрации 4 мкг/мл с буфером для анализа, как указано на шаге 2.1.11.
    11. Препарат Козлиный античеловеческий IgM, конъюгированный с IgA Super Bright 436 (SB)/Goat-anti-human, конъюгат Phycoerythrin (PE) обнаруживает антитела в концентрации 4 г/мл; или Goat-anti-human IgM, конъюгат SB/Козелий-античеловеческий IgG, конъюгат PE обнаруживает антитела в конъюнктуре 4 мкг/мл.
      заметка: Для формата с 384 лунками требуется 12,5 мкл/лунка приготовленного раствора вторичного антитела, а для формата с 96 лунками требуется 25 мкл/лунка.
    12. Поместите пластину на магнитный сепаратор, быстро промойте и с силой переверните контейнер для биологически опасных веществ, чтобы удалить жидкость из лунок. Не переворачивая тарелку, с силой постучите ее по толстому комку бумаги.
    13. Промойте каждую лунку 100 мкл буфера для анализа и удалите жидкость путем принудительной инверсии над контейнером для биологически опасных веществ, как описано ранее. Повторите эти шаги (2.1.12-2.1.13) в общей сложности два стирки. Выбросьте все использованные пачки бумаги в контейнер для биологически опасных веществ.
    14. Добавьте 12,5 мкл рабочего раствора вторичного антитела в каждую лунку 384-луночного планшета или 25 мкл в каждую лунку 96-луночного планшета. Накройте пластину алюминиевым уплотнителем или фольгой и инкубируйте в течение 30 минут при температуре RT на вибростенде, установленном на 700 оборотов в минуту.
    15. Повторите шаги стирки 2.1.12-2.1.13.
    16. Добавьте 75 мкл буфера для анализа в каждую лунку 384-луночного планшета или 100 мкл в каждую лунку 96-луночного планшета. Накройте пластину алюминиевым уплотнителем или фольгой и выдерживайте в течение 5 минут при RT на встряхивателе для тарелок, установленном на 700 оборотов в минуту.
    17. Проанализируйте 60 мкл с помощью приборного анализатора в соответствии с инструкцией по эксплуатации.

Таблица 1: Серия разведения для стандартных кривых: Таблица коэффициентов разведения, используемых для стандартных кривых для серотипа IgG; представлена в виде 7-точечной последовательной кривой разведения 1:5, начиная с 1 мкг/мл для α-Spike S1 и α-нуклеокапсида и 5 мкг/мл для антител α-мембраны.

Стандартный номерСерия разбавленийAnti-Spike S1 или N (μг/мл)Антимембранный (μг/мл)
пустойпустой- T- T
1СТД7 1:115
2СТД6 1:50,21
3СТД5 1:250,040,2
4СТД4 1:1250,0080,04
5СТД3 1:6250,00160,008
6СТД2 1:31250,000320,0016
7СТД1 1:156250,0000640,00032

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
384-луночные черные боковые полистирольные микротитровальные пластиныТермо ФишерТел.: 12-565-346
Активационный буфер (0,1 М NaH2PO4, pH 6,2)Готовится на месте
Буфер для анализа (PBS, 1% бычьего сывороточного альбумина, 0,01% полисорбат-20)Готовится на месте
Бычья сыворотка альбумин, фракция теплового шокаМиллипорСигмаА-7888-50Г
Буфер для связывания (50 мМ MES, pH 5,0)Готовится на месте
COVID 19 M Коронавирус Рекомбинантный матричный белок (6xHistag)МойБиоИсточникMBS8574735
Одноразовые наконечники для пипеток
EDC (1-этил-3-[3-диметиламинопропил]карбодиимида гидрохлорид)Термо ФишерPIA35391
Козий альбумин, порошок фракции VМиллипора СигмаА2514-1Г
IgA козий античеловек, R-PE, поликлонТермо ФишерOB205009
IgG козий античеловеческий, R-PE, поликлональныйТермо ФишерOB204009
IgG козий антикроличий, R-PE, поликлональныйТермо ФишерOB403009
gM Козий античеловеческий, R-PE, поликлональныйТермо ФишерOB202009
IgM Мышь античеловек, SB 436, клон SA-DA4Термо Фишер62999842
Приборный анализаторКорпорация «Люминекс»ИНТЕЛЛИФЛЕКС-РУО
Микроцентрифужные пробирки с низким уровнем связывания (1,5 мл)Термо ФишерТел.: 13-698-794
Микросферы MagPlex-C, Регион XXXКорпорация «Люминекс»MC10XXX-01
MES гидрат (2-(N-морфолино)этан сульфоновый гидрат)МиллипорСигмаМ2933
Микропластинчатая алюминиевая уплотнительная лентаТермо ФишерТел.: 07-200-683
Полисорбат-20Термо ФишерБП337-500
Quality Biological Inc. PBS, pH 7,2Термо ФишерТел.: 50-751-7328
Буфер для гашения (PBS, 1% альбумин козьей сыворотки, 0,01% полисорбат-20)Готовится на месте
Нуклеокапсидный белок SARS-CoV-2 (2019-nCoV) (метка His)Синобиологические препараты 40588-V08B
Спайковый белок SARS-CoV-2 (2019-nCoV) (субъединица S1, метка His)Синобиологические препараты 40591-В08Н
Антитела к SARS-CoV-2 (2019-nCoV) Spike RBD, Rabbit pAbСинобиологические препараты 40592-Т62
Антитело к нуклеокапсиду SARS-CoV-2 (2019-nCoV), mAb кроликаСинобиологические препараты 40588-Р0004
SARS-CoV-2 (COVID-19) Мембранные антитела (IN), Rabbit pAbProSci 10-516
Сульфо-NHS (N-гидроксисульфосукцинимид)Термо ФишерPIA39269
Буфер для промывки (PBS, 0,01% полисорбат-20)Готовится на месте
Вода, класс LC/MSТермо ФишерШ-64

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи