Методическая статья

Анализ хиральности клеток с кольцевым микропаттернированием: метод in vitro для определения многоклеточной хиральности на основе выравнивания клеток на кольцеобразных микропаттернах

991 просмотров

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Zhang, H. et al. A Micropatterning Assay for Measurement Cell Chirality. J. Vis. Exp. (2022)

В этом видео мы описываем анализ хиральности клеток для определения смещения выравнивания клеток в ограниченной геометрической границе, такой как кольцевой микроузор. Хиральность является неотъемлемым свойством большинства типов клеток и определяется генетическими факторами и факторами окружающей среды. Знание хиральности нормальной популяции клеток может помочь в скрининге клеток, обработанных лекарствами.

Протокол

1. Изготовление штампов на основе полидиметилсилоксана (PDMS)

  1. Нарисуйте массив микромасштабных колец с помощью программного обеспечения САПР с внутренним диаметром 250 μм и внешним диаметром 450 μм. Шаблон, используемый в этом протоколе, представляет собой матрицу 10 x 10 с расстоянием между кольцами 850 мкм.
  2. Распечатайте маску прозрачности узора с нужным разрешением с помощью службы печати масок микропроизводственной компании (см. Таблицу материалов).
    заметка: Доказано, что предоставленные размеры кольца работают со многими типами ячеек.
  3. Проведите ультрафиолетовую (УФ) фотолитографию с использованием маски, содержащей желаемые характеристики, чтобы создать форму негативного фоторезиста (например, SU-8).
    1. Накройте кремниевую пластину, покрытую фоторезистом, прозрачной маской, изготовленной на шагах 1.1-1.2.
    2. На УФ-контактном элайнере полимеризуйте фоторезист под прозрачными областями маски под действием ультрафиолетового света.
      заметка: После дальнейшей промывки и разработки изготавливается мастер-форма с желаемыми характеристиками. Эксплуатационные детали зависят от конкретного используемого оборудования.
  4. Приготовьте эластомерные преполимеры PDMS, смешав с его отвердителем в соотношении 10:1, а затем отлите смесь на форму в чашке Петри.
  5. Поместите форму в вакуумную камеру на 30 минут, чтобы удалить пузырьки воздуха в PDMS, и запекайте в духовке при температуре 60 °C не менее 2 часов.
  6. После полного отверждения PDMS разрежьте массивы шаблонов на штампы.
    заметка: Более толстые штампы (около 1 см) могут быть предпочтительными из-за простоты работы на более поздних этапах микроконтактной печати.

2. Покрытие стекол

  1. Очистите стекла предметными стеклами. Замочите горки в ванне со 100% этанолом, обработайте ультразвуком 5 минут, а затем смойте водой.
  2. Повторите этот шаг сначала с ацетоном, затем с изопропанолом с последующей сушкой в потоке азота.
  3. Используйте электронно-лучевое испарительное оборудование (E-beam) для нанесения слоев титана и золота на стеклянные предметные стекла.
    заметка: Для титанового слоя желаемая толщина составляет 15 Å (1 Å = 10-10 м). Для золотого слоя желаемая толщина составляет 150 Е. Сначала покройте титан, а затем золото, так как титановый слой служит клеем между золотом и предметным стеклом.
  4. Поместите очищенные стекла в испарительную камеру и вставьте золотые и титановые тигли под затворы.
  5. Откачайте камеру для создания вакуума ниже 10-5 Па перед плавлением металлов. Сфокусируйте электронный луч на металле и отрегулируйте мощность таким образом, чтобы скорость осаждения соответствовала толщине напыления.
  6. Откройте затвор, чтобы начать напыление металла. Закройте жалюзи, когда будет достигнута желаемая толщина.
  7. Переключение тиглей между последовательным испарением двух металлов.
  8. Подождите, пока тигли остынут, как того требует оборудование, проветрите камеру и выньте стеклянные стекла с золотым покрытием.
  9. Снова откачайте камеру для обслуживания оборудования.
    заметка: Эксплуатационные детали могут зависеть от конкретного электронно-лучевого испарителя. Важно иметь хорошо контролируемую, низкую скорость осаждения титана. Толстый слой титана часто приводит к плохой видимости, особенно при флуоресцентной визуализации клеток. После нанесения покрытия стеклянные стекла с титаново-золотым напылением можно хранить в сухой вакуумной камере при комнатной температуре не менее 1 месяца.

3. Микроконтактная печать

  1. При желании разрежьте предметное стекло с титаново-золотым напылением на более мелкие кусочки. Для типичного применения рекомендуется использовать квадратную форму размером 12 мм x 12 мм (рис. 1B).
  2. Используйте стеклорез, чтобы скользить по поверхности, чтобы оставить вмятину на следе, затем держите стекло с обеих сторон и согните вмятину, чтобы разбить ее на небольшие четверти. Избегайте прикосновения к поверхности, покрытой золотом.
    заметка: Чтобы визуально определить, с какой стороны стекла находится поверхность с покрытием в случае случайного опрокидывания, сравните отражение света с обеих сторон. Покрытая золотом поверхность будет иметь более яркое отражение, в то время как сторона без покрытия будет иметь более тусклое отражение (от слоя титана на другой стороне стекла). Альтернативным способом является наблюдение за краями ползуна, а сторону покрытия можно определить по вертикальной поверхности реза.
  3. Очистите предметные стекла, замочив их в 100% этаноле в чашке Петри золотой стороной вверх на орбитальном вибростенде не менее чем на 10 минут. Отсадите этанол, затем высушите каждое предметное стекло, обдувая его струей азота.
  4. Очистите штампы PDMS мыльной водой, а затем 100% этанолом. Высушите штампы газообразным азотом.
  5. Приготовьте 2 мМ раствор октадеканэтиола (С18) путем растворения 5,74 мг порошка С18 в 10 мл 100% этанола.<бр/> заметка: Закройте и храните раствор C18 при комнатной температуре. Печать шаблонов с помощью C18 создает адгезивный самоорганизующийся монослой, к которому преимущественно прикрепляются фибронектин и клетки.
  6. Замочите штампы PDMS в растворе C18 узорчатой поверхностью вниз в течение 10 с и аккуратно высушите газообразным азотом в течение 60 с.<бр/> заметка: При сушке сначала отведите струю от штампа (около 1 м), пока большая часть жидкости не испарится, а затем медленно переместите струю ближе, чтобы полностью высушить штамп. Это сделано для того, чтобы раствор C18 не сдувался, а не высыхал на штампе.
  7. Положите клеймо лицевой стороной вниз на золотые предметные стекла на 60 с перед снятием.
  8. Чтобы обеспечить правильное тиснение, аккуратно постучите пинцетом по штампам, чтобы правильно перенести узоры. Не нажимайте слишком сильно, а вес пинцета обычно достаточен.
    заметка: Визуальный осмотр штампа во время постукивания позволит убедиться в равномерном контакте штампа и предметного стекла.
  9. Подготовьте камеры влажности.
    1. Внесите пипеткой 1 мл 70% этанола в перевернутую крышку чашки Петри и положите кусок парапленки, чтобы покрыть поверхность (покрытой лицевой стороной вверх).
    2. Используйте пинцет для подъема, положите парапленку, чтобы убедиться в отсутствии пузырьков воздуха, и при необходимости удалите излишки этанола.
  10. Приготовьте 2 мМ раствор HS-(CH2)11-EG3-OH (EG3): Разведите 5 мкл стокового раствора в 5 мл 100% этанола.
    заметка: Разбавленный раствор EG3 можно запечатать и хранить при температуре 4 °C, а неразбавленный запас EG3 следует хранить при температуре -20 °C. Обработка EG3 используется для того, чтобы сделать область стекла без C18 неадгезией к клеткам.
  11. Микропипетки объемом 40 мкл капель EG3 на каждую четверть стекла наносятся на парапленку в камере влажности, оставляя достаточно места между каплями, чтобы учесть расстояние между золотыми предметными стеклами.
  12. С помощью пинцета поместите золотые предметные стекла, напечатанные C18, лицевой стороной вниз на капли и убедитесь, что под ними нет пузырей. Аккуратно сдвиньте предметные стекла вместе, не поднимая их, чтобы свести к минимуму испарение.
    заметка: Поместите один край стакана скольжением вниз рядом с каплей, а затем, медленно опуская другой конец стакана, спустите вниз. Если пузырь присутствует, нажмите на золотое стекло, не поднимая его, пока пузырь не исчезнет.
  13. Плотно закройте чашку Петри парапленкой и оставьте при комнатной температуре не менее чем на 3 ч.<бр/> заметка: Если требуется обширная инкубация, дважды запечатайте чашку Петри и оставьте ее на срок до 24 часов.
  14. В шкафу биобезопасности поместите золотые предметные стекла лицевой стороной вверх в чашку Петри, замочите и промойте 3 раза в 70% этаноле для удаления EG3, затем оставьте в этаноле на 10 минут для стерилизации.
  15. Отсадите этанол и замените его стерильным PBS.
  16. Подготовьте еще одну камеру влажности, как описано в шаге 3.9, с PBS вместо этанола.
    заметка: Из-за разницы в поверхностном натяжении проще сначала добавить 4-5 мл PBS для укладки парапленки и удаления пузырьков, а затем отсасывать излишки.
  17. Приготовьте раствор фибронектина в концентрации 50 мкг/мл (при желании другие белки) в стерильном PBS и микропипетке. Капли 50 мкл раствора фибронектина на каждую четверть нанесите на парапленку, оставляя некоторое пространство между каплями.
    заметка: Покрытие из фибронектина способствует адгезии клеток к узорчатым поверхностям.
  18. Используйте вафельный пинцет, чтобы поместить предметные стекла лицевой стороной вниз на капли и убедитесь, что под ними не образуются пузырьки. Аккуратно сдвиньте слайды друг с другом, не поднимая их.
    заметка: Для работы с предметными стеклами рекомендуется использовать пинцет со стеклянными предметными стеклами или вафельный пинцет с прямыми широкими наконечниками.
  19. Оставьте чашку Петри в шкафу биобезопасности на 30 минут.
  20. Через 30 минут поместите золотые слайды лицевой стороной вверх в PBS после 3 полоскания.
    заметка: Предметные стекла с рисунком фибронектина могут храниться в PBS при температуре 4 °C около месяца.

4. Засеивание ячеек на микроструктурированные слайды

  1. Нагрейте питательную среду для клеточных клеток и трипсин на водяной бане при температуре 37 °C.
    заметка: Следующее описание субкультуры относится к клеткам NIH/3T3. Условия культивирования могут варьироваться в зависимости от типа клеток.
  2. (Необязательно) Замочите узорчатые стекла в питательных средах в 12-луночном планшете, нагрейте до 37 °C в инкубаторе перед трипсинизацией клеток для лучшего прикрепления клеток.
  3. Трипсинизируйте клетки, нейтрализуйте с помощью среды, содержащей FBS, центрифугируйте при 100 x g в течение 3 минут, а затем повторно суспендируйте, хорошо перемешав со свежей средой><. заметка: Убедитесь, что клетки полностью диссоциированы друг от друга.
  4. Подсчитайте клетки, разбавьте до 200 000 клеток/мл и добавьте 0,5 мл клеточной суспензии в каждую лунку, содержащую одно золотое стекло.
  5. Осторожно встряхните лунную пластину несколько раз для равномерного посева клеток и храните ее в инкубаторе в течение 15 минут, чтобы обеспечить прикрепление клеток.
  6. Через 15 мин проверьте прикрепление клетки под микроскопом. При необходимости выделите дополнительное время.
    заметка: Прикрепленные ячейки будут располагаться на поверхности с видимым филоподиумом или сплющивающимися и не будут смещаться с поверхности при осторожном постукивании или перемещении луночной пластины.
  7. Отсадите среду, содержащую неприкрепленные клетки, из каждой лунки и добавьте 1 мл питательной среды. Для медикаментозного лечения на этом этапе следует добавить дополнительные реагенты в питательные среды.
  8. Культивируйте клетки в инкубаторе в течение 24 ч и проверьте слияние, чтобы определить, сформировалась ли хиральность.
    заметка: Для большинства типов клеток рекомендуется конфлюенция выше 75%, а чрезмерная конфлюенция может повлиять на характеристику хиральности.

5. Коллекция изображений

  1. Зафиксируйте ячейки при слиянии.
    1. Удалите питательную среду из луночного планшета и промойте один раз PBS.
    2. Добавить 4% раствор параформальдегида, выдержать при комнатной температуре 15 мин, а затем 3 раза промыть PBS.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Если фиксация значительно изменяет морфологию клеток, рекомендуется провести визуализацию перед фиксацией
  2. Используйте фазово-контрастный микроскоп с функционалом камеры, визуализируйте каждое кольцо на предметных стеклах с высоким разрешением (для анализа достаточно 10-кратного объектива объекта).

6. Характеристика хиральности клеток (Рисунок 2)

  1. Загрузите файлы кода MATLAB для определения характеристик хиральности.
  2. Добавьте папку с кодом и подпапки (с набором инструментов круговой статистики внутри) в путь MATLAB и откройте файл "ROI_selection.m". В строке 4 измените директорию на нужную папку с данными (для пользователей окна переключите "/" на "\" в строках 4 и 5).
  3. Измените размер изображения в строке 14, где первые две цифры представляют размер внутреннего круга кольца, а две другие представляют внешний.
    заметка: Убедитесь, что размеры всех изображений в анализируемой папке идентичны.
  4. Нажмите кнопку «Выполнить», чтобы выполнить код MATLAB «ROI_selection.m» для определения области интереса (ROI) на фазово-контрастных изображениях.
  5. Вручную перетащите выделенный квадрат по размеру кольца, затем дважды щелкните по изображению, чтобы подтвердить выбор.
  6. Повторите этот шаг для каждого изображения в папке (следующее изображение автоматически появится после подтверждения выбора ROI предыдущего изображения); будет сгенерирован файл ".mat" для хранения информации о ROI для каждого изображения.
  7. Откройте файл "Analysis_batch.m" и измените директорию папки так же, как на шаге 6.2. (Для пользователей окна, при первом использовании, переключите "/" на "\" в строках 5, 6, 124 и 130)
  8. Нажмите на кнопку «Выполнить», чтобы выполнить код «Analysis_batch.m» для определения хиральности нескольких клеточных кольцевых паттернов. Будет сгенерирован файл "datatoexcel.txt", содержащий круговую статистику для каждого кольца, а также количество колец по часовой стрелке, нехиральных и против часовой стрелки.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1
Рисунок 1. Схема клеточного микроструктурирования. (А) Процедура микроизготовления и микроконтактной печати для создания ячеистых узоров. Отрицательную форму фоторезиста изготавливали путем сшивания фоторезиста ультрафиолетовым (УФ) способом через маску, содержащую особенности микроструктурирования (1-2). Эластомерные преполимеры полидиметилсилоксана (PDMS) отливали на форму для созд...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Этанол 200 пробыКоптекДСП-МД-43
Система микроскопа BZXКейенсБЗХ-600
Модифицированная орлиная среда Дульбекко (DMEM) с высоким содержанием глюкозыGibco11965092
Электронно-лучевой испарительТемскальБЖД-1800Золото-титановое пленочное покрытие
Фетальная бычья сывороткаВВР89510-186
Фибронектин из плазмы крупного рогатого скотасигмаФ1141-5МГ
Предметные стекла для микроскопаВВР10024-048
Стеклянный пинцетЭксельта390БСАПИ
Золотые выпарные окатышиМеждународные передовые материалыАВ18
HS-(CH2)11-EG3-OH (EG3)ПрохимияТН 001-м11.н3-0,2
МАТЛАБМатематические работыMATLAB_R2020b
Клетки NIH/3T3АТКСЦРЛ-1658
Выравниватель контактов OAIУРР200УФ-фотолитография
Октадекантиол (C18)сигмаО1858-25МЛ
Орбитальный шейкерВВР89032-088
Фосфатно-солевой буфер (PBS)Исследовательский продукт за рубежомП32080-100Т
Полидиметилсилоксан Силгард 184Индекс Dow CorningDC4019862
Кремниевая пластинаУниверситетская вафляИдентификатор #809
Пируват натрияThermo fisher scientific11360-070 (Английский)
Фоторезист СУ-8 3050МикроХимY311075 0500L1GL
Выпарные гранулы титанаМеждународные передовые материалыТИ14
Маска прозрачности (с функцией)Outputicity.comН/ДУслуга печати масок
Трипсин-ЭДТА (0,25%)Thermo fisher scientificNo 25200-072

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

ROI MATLAB

Похожие статьи