Методическая статья

Резорбционный ямочный анализ: метод in vitro для количественной оценки резорбционной активности кальция зрелых остеокластов с использованием культуральных планшетов, покрытых фосфатом кальция

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Cen, W., et al. Простой протокол анализа в ямке для визуализации и количественной оценки остеокластической резорбции in vitro. J. vis. Exp. (2022)

В этом видео мы описываем анализ остеокластической резорбции in vitro на покрытых фосфатом кальция клеточных планшетах, культивируемых остеокластами, полученными из мононуклеарных клеток периферической крови человека. Остеокласты образуют характерное актиновое кольцо на покрытой фосфатом кальция матрице клеточной культуральной пластины и разрушают матрицу в области актинового кольца для высвобождения ионов кальция и фосфата, что приводит к образованию отчетливых резорбционных ямок внутри деградировавшей матрицы.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры с участием людей были выполнены в соответствии с институциональными, национальными и международными рекомендациями по благополучию человека и были рассмотрены местным институциональным наблюдательным советом.

1. Расширение прародителей OC

  1. Ресуспендируйте PBMC в полном α-MEM (10% FBS, 1% Pen/Strep, 1% амфотерицин B), содержащем 20 нг/мл M-CSF. Затравите PBMC плотностью 2,5 х 105 клеток/см2. Обычно клетки, выделенные из 15-20 мл свежей крови, могут быть посеяны в одну колбу размером 75 см2 (1,5-2 х 107 клеток).
  2. Кормите клетки свежим полным α-MEM, содержащим 20 нг/мл M-CSF, каждый третий день до тех пор, пока прикрепленные клетки не достигнут желаемого слияния. Типичный выход составляет 1,5-2 x 106 клеток/колба при слиянии клеток на 95%. Обычно период расширения длится 6 дней.
    заметка: Остеокластогенный потенциал предшественников может снижаться при длительном культивировании.

2. Индукция остеокластогенеза в пластинах, покрытых фосфатом кальция

  1. Для облегчения адгезии клеток инкубируйте покрытые фосфатом кальция (CaP) пластины с 50 мкл FBS в течение 1 ч в инкубаторе при температуре 37 °C.
  2. Чтобы отделить прекурсоры ОК, дважды промойте колбу PBS, чтобы удалить мертвые или неадгезивные клетки. Добавьте 4 мл трипсина (Таблица материалов) на 75 см2 колбы, на 30 минут.
    1. Добавьте 4 мл полного α-MEM, чтобы остановить пищеварение, осторожно отделите клетки с помощью скребка для клеток и перенесите клетки в пробирку объемом 50 мл.
    2. Определите общее количество ячеек с помощью камеры Нейбауэра или аналогичной.
  3. Гранулируйте клетки центрифугированием в течение 7 мин при 350 x g. Повторно суспендируйте гранулу в достаточном количестве полного α-MEM, содержащего 20 нг/мл M-CSF и 20 нг/мл RANKL, чтобы получить концентрацию 1 x 106 клеток/мл.
  4. Аспират FBS раствора из 96-луночного планшета с покрытием CaP и пипетки 200 мкл клеточной суспензии на лунку (2 x 105 клеток/лунка).
  5. Инкубируйте прекурсоры OC в течение желаемого периода времени или с желаемыми реагентами, относящимися к экспериментальному плану. Как правило, большое количество крупных и многоядерных ОК можно наблюдать через 6 дней и при образовании резорбционных ямок. Скармливайте клетки свежей полной средой α-MEM, содержащей 20 нг/мл M-CSF и 20 нг/мл RANKL каждый третий день.
  6. В конце инкубации клетки дважды промыть PBS, зафиксировать 4% параформальдегидом в течение 10 мин и снова промыть PBS.
  7. Используйте фиксированные ОС непосредственно для флуоресцентного окрашивания или храните при температуре 4 °C.

3. Флуоресцентное окрашивание ОУ и покрытие фосфатом кальция

  1. Инкубировать фиксированные клетки с пермеабилизационным буфером (0,1% Тритона в PBS) в течение 5 мин.
  2. Окрашивание актиновых филаментов 100 мкл меченого раствора фаллоидина AlexaFluor 546 в PBS в течение 30 мин и аспирация окрашивающего раствора. Добавьте 100 μL раствора для окрашивания Hoechst 33342 (10 μг/мл в PBS) в течение 10 минут к окрашиванию ядер. Также можно использовать DAPI.
  3. Окрашивание CaP 100 μL 10 μМ кальцеина в PBS на 10 мин. Трижды промыть PBS и сделать снимки.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
α-MEMGibco32561-029 (Английский)MEM альфа, GlutaMAX, без нуклеозидов
амфотерицин ВБиохром03-028-1БРаствор амфотерицина В
КальцеинСигма-ОлдричС0875Кальцеин
ФБССигма-ОлдричФ7524Фетальная бычья сыворотка
Фиксирующий буферБиолегенда420801Параформальдегид
Hoechst 33342ПромокинПК-СА707-40046Hoechst 33342
М-КСФПепроТех300-25Рекомбинантный М-КСФ человека
ПБСЛонза17-512ФФосфатно-солевой буфер Дульбекко (1X), DBPS без кальция и магния
Пен-стрептококкЛонзаДЭ17-602ЭПенициллин-стрептомициновая смесь
Фаллоидин-Алекса Флюор 546ИнвитрогенА22283Alexa Fluor 546 Фаллоидин
РАНКЛПепроТех310-01Рекомбинантный лиганд sRANK человека (полученный из E.coli)
Тритон Х-100Сигма-ОлдричТ8787Алкилфенилполиэтиленгликоль
ТрипLE ЭкспрессGibco12605010Рекомбинантные ферменты диссоциации клеток

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

M CSF RANKLPBMC

Похожие статьи