Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Планшетный анализ для измерения высвобождения моноаминов из срезов мозга при воздействии испытуемого препарата

728 просмотров

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Pino, J. A. et al. Анализ на основе планшетов для измерения высвобождения эндогенных моноаминов в острых срезах мозга. J. Vis. Exp. (2021)

В этом видео мы демонстрируем анализ, который исследует механизмы высвобождения моноаминов из нейронов метаболически активных ex vivo срезов мозга крыс при обработке тестовыми препаратами. Анализ показывает, что нейростимуляторы индуцируют высвобождение моноаминов через клеточные транспортеры моноаминов, в то время как высокая концентрация KCl индуцирует высвобождение везикулярных моноаминов в синаптических везикулах, опосредованное экзоцитозом.

Протокол

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Высвобождение эндогенных моноаминов ex-vivo из мозговых срезов или проколов

ПРИМЕЧАНИЕ: Устройство, используемое для этого раздела, состоит из 48-луночного планшета и держателя для салфеток, изготовленных из шести микроцентрифужных фильтров без встроенных фильтров, подключенных к карбогенной линии (Рисунок 1). Для изготовления держателя используйте прочный пластиковый стержень (например, от скребка для ячеек) и приклейте к нему фильтрующие блоки микроцентрифуги без встроенных фильтров. Дайте ему высохнуть в течение 1-2 дней. Время, необходимое для эксперимента по высвобождению эндогенных моноаминов, и концентрации амфетамина, флуоксетина и кокаина основаны на современной литературе и предыдущих протоколах.

  1. Активация тканей
    1. Перенесите мозговую ткань в каждую лунку камеры оттока и дайте возможность восстановиться в течение 30-50 минут при 37 °C на предметном нагревателе в 0,5-1 мл кислородосодержащего буфера для оттока, с постоянным, мягким бурлением (рис. 1B1).
    2. Во время такой инкубации разведите препараты до нужной для эксперимента концентрации. Все препараты должны быть растворены в буфере для оттока, а концентрации основаны на современной литературе.
  2. Первая инкубация
    1. Переместите держатель для салфеток с тканью мозга в лунки, содержащие 500 мкл кислородосодержащего буфера для оттока, и инкубируйте в течение 20 минут при температуре 37 °C. Убедитесь, что буфер практически не транспортируется, постукивая по держателю по краю лунки до тех пор, пока в держателе не останется избыточного буфера.
    2. В экспериментах с фармакологическими агентами, такими как ингибиторы транспортера моноаминов, инкубируйте образцы тканей с препаратами, разведенными в кислородосодержащем буфере оттока (например, 10 мкМ флуоксетина, 40 мкМ кокаина; см. рис. 1B2). Итоговый объем в каждой лунке составит 500 μл.
  3. Вторая инкубация
    1. Переместите держатель с салфеткой в новый набор лунок, содержащих 500 мкл буфера общего оттока с желаемой концентрацией каждого препарата или без нее. Убедитесь, что не осталось лишнего буфера. Каждая лунка представляет n= 1 для экспериментальных условий. Каждое экспериментальное условие выполняется в трех экземплярах.
    2. Одна лунка содержит насыщенный кислородом буфер оттока, следующая 10-30 мкМ AMPH, а конечная лунка содержит 10-30 μМ AMPH плюс ингибиторы транспортировки моноаминов. Каждый препарат растворяют в кислородосодержащем буфере для оттока.
    3. Инкубировать ткань в течение 20 мин при 37 °C с 500 мкл лекарственного состояния.
      заметка: Дополнительные лунки могут включать насыщенный кислородом буфер с высоким уровнем оттока K+ с ингибиторами транспортера моноаминов или без них. Растворите каждый препарат в насыщенном кислородом буфере для оттока (500 μл).
    4. Во время второй инкубации продолжительностью 20 мин соберите раствор из лунок из первой инкубации на стадии 1.2.1 и перенесите в микроцентрифужные пробирки, содержащие 50 мкл 1 Н хлорной кислоты или фосфорной кислоты (в зависимости от типа ВЭЖХ, конечная концентрация 0,1 Н). Итоговый объем образца составит 550 мкл. Держите микроцентрифужные пробирки на льду и маркируйте пробирки #1.
    5. После второй инкубации продолжительностью 20 мин переместите держатель салфеток с участками мозга или перфораторами в пустую лунку и удерживайте пластину на льду. Надосадочную жидкость перенести в микроцентрифужные пробирки, содержащие 50 мкл 1 Н хлорной кислоты или фосфорной кислоты. Конечный объем образца составит 550 мкл. Держите микроцентрифужные пробирки на льду и маркируйте пробирки #2.
    6. Добавьте 1 мл ледяного буфера для диссекции в каждую лунку, содержащую ткань. Соберите всю ткань с помощью маленького пинцета и переложите в чистые микроцентрифужные пробирки.
    7. Поддерживайте температуру трубок с тканью мозга при температуре -80 °C. Выбросьте 1 мл буфера для рассечения (рис. 1B4).
    8. Фильтруйте растворы, полученные при каждой инкубации, с помощью микроцентрифужных фильтрующих трубок (0,22 мкм) при плотности 2 500 x g в течение 2 мин. Используйте фильтрат для определения содержания моноаминов с помощью ВЭЖХ с электрохимическим детектированием (рис. 1B5).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1
Рисунок 1: Экспериментальная установка для эксперимента по оттоку. (A) Камера для оттока состоит из 48-луночного планшета для культивирования тканей и лотка для держателя тканей, подключенного к карбогенной линии. (B) Схема, показывающая экспериментальный план для эксперимента по оттоку эндогенных моноаминов, в котором представлены активация тканей (B1), предваритель...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
48-луночный планшетNANAпроба
Кальция хлорид безводныйСигма ОлдричС1016Модифицированная искусственная спинномозговая жидкость ИЛИ буфер для оттока
D-(+)-глюкозасигма1002608421Буфер для рассечения
L-аскорбиновая кислотаСигма ОлдричА5960Буфер для рассечения
Сульфат магниясигма7487-88-9Буфер KH
Микроцентрифужные фильтрующие установки UltraFreeМногородностьС7554Проба - 6 для установки в 48-луночный планшет
Паргилин ХлорогидратСигма ОлдричП8013Модифицированная искусственная спинномозговая жидкость ИЛИ буфер для оттока
Хлористый калийсигмаNo 12636Буфер KH
Фосфат калия одноосновнойсигма1001655559Буфер KH
Бикарбонат натриясигмаС5761Буфер для рассечения
Бикарбонат натрияСигма ОлдричС5761Буфер для рассечения
Хлорид натриясигмаС3014Буфер KH

Теги

ВЭЖХ-анализмноголуночная планшетная пластинапористые фильтрующие вставкиингибиторы моноаминоксидазыкамера эффлюксацентрифугированиехроматографический цикл