Методическая статья

Анализ прорастания сосудистой оболочки глаза для изучения микрососудистой пролиферации глаза ex vivo

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Tomita, Y., et al. An ex vivo анализ микрососудистого ангиогенеза глазного микрососуда. J. Vis. Exp. (2020)

Это видео демонстрирует разработку ex vivo модели прорастания хориоидеи для изучения глазного микрососудистого ангиогенеза. Анализ включает культивирование эксплантов глаза мыши, содержащих ткань сосудистой оболочки, прикрепленную к склере и пигментному эпителию сетчатки, в определенных условиях, которые способствуют прорастанию микрососудов хориоидеи.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Подготовка

  1. Добавьте 5 мл пенициллина/стрептомицина (10000 ЕД/мл) и 5 мл и 10 мл коммерчески доступных добавок к 500 мл полной классической среды с сывороткой. Аликвота 50 мл среды изначально.<бр /> заметка: Не возвращайте среду обратно на склад во избежание загрязнения.
  2. Выложите аликвоту полного классического средства на лед.
  3. Используйте 70% этанол для очистки препарирующего микроскопа, щипцов и ножниц.
  4. Приготовьте две чашки для клеточных культур (10 см), одну на препарирующем микроскопе, а другую на льду; положите в каждую чашку по 10 мл полной классической среды.

2. Этапы эксперимента (Рисунок 1)

  1. Мышам C57BL/6J вводили мышей примерно после рождения (P) 20 с использованием 75-100 мг/кг кетамина и 7,5-10 мг/кг ксилазина, вводимого внутрибрюшинно. Перед вскрытием держите глаза в полной классической среде на льду.
  2. Удалите соединительную ткань (мышечную и жировую ткань) и зрительный нерв на глазу.
  3. С помощью микроножниц сделайте надрез по окружности на 0,5 мм позади лимба роговицы. Удалите комплекс роговицы/радужной оболочки, стекловидное тело и хрусталик.
  4. Сделайте разрез диаметром 1 мм перпендикулярно краю разреза по направлению к зрительному нерву и разрежьте окружную полосу шириной 1 мм. Разделяют центральную и периферическую области комплекса. Используйте щипцы для отшелушивания сетчатки от комплекса РПЭ/сосудистая оболочка/склера.
  5. Держите периферическую сосудистую оболочку в полной классической среде на льду; изолируйте другой глаз и повторите процесс, чтобы разрезать вторую полосу.
  6. Разрежьте круглую ленту на 6 ~равных квадратных частей (~1 мм x 1 мм).
    заметка: Никогда не прикасайтесь к краям.
  7. Разморозьте экстракт базальной мембраны (BME) в соответствии с инструкцией производителя. Добавьте 30 мкл/лунку BME в центр каждой лунки 24-луночного тканевого планшета. Убедитесь, что капля BME образует выпуклый купол в нижней части пластины, не касаясь краев.
    заметка: Разморозьте BME на ночь в холодильнике. BME должен находиться на льду в любое время после оттаивания.
  8. Поместите салфетку в середину BME.
    заметка: Не расплющивайте сосудистую оболочку; как правило, позвольте ткани расширяться внутри БМЭ. Ориентация ткани (склеральной стороной вверх или вниз) не влияет на результат эксперимента.
  9. Инкубируйте пластину при температуре 37 °C в течение 10 минут, чтобы гель застыл.
  10. Добавьте 500 мкл полной классической среды/лунки.
  11. Меняйте классическую среду через день (500 μл). Прорастание сосудистой оболочки кожи можно наблюдать через 3 дня под микроскопом.
    заметка: Для лечения фактором роста следует заморить ткани голодом в течение 4 ч. Разведите исследуемое соединение в среде с пониженным фактором роста (повышение 1:200 вместо 1:50).

3. Компьютеризированный метод количественной оценки SWIFT-Choroid (Рисунок 2)

ПРИМЕЧАНИЕ: Был использован компьютеризированный метод измерения площади, занятой растущими сосудами. Перед количественной оценкой необходим плагин макроса для программного обеспечения ImageJ.

  1. Откройте изображение прорастания сосудистой оболочки с помощью ImageJ и отметьте галочкой "Image |Тип| 8-битный» с оттенками серого.
  2. Перейдите в раздел "Изображение | Настройка | Яркость/Контрастность (Ctrl/shift/C)" и оптимизируйте контрастность.
  3. Используйте функцию волшебной палочки, чтобы обвести и удалить с изображения ткань сосудистой оболочки, которая присутствует в центре ростков (с помощью сочетания клавиш "F1") (Рисунок 2A, B).
    заметка: Установите допустимость волшебной палочки на 20-30%.
  4. Удалите фон изображения с помощью бесплатных инструментов выделения (Рисунок 2C). Перейдите в раздел "Изображение | Настройка | Порог (Ctrl/shift/T)". Используйте пороговую функцию для определения микрососудистых ростков на фоне и периферии (Рисунок 2D).
  5. Нажмите «F2», и появится сводка. Сохраните изображение выбранной области, нажав кнопку "Сохранить". Сохраните его в той же папке, что и исходное изображение, для дальнейшего использования.
  6. После того, как группа образцов будет измерена, скопируйте записанную для анализа данных.
    заметка: Также можно измерить площадь (мкм²) с помощью команды "Analyze | Установите масштаб» с помощью изображений с масштабными линейками.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Рисунок 1: Схематическая иллюстрация, показывающая анализ прорастания сосудистой оболочки.
Глаза сначала были энуклеированы и разрезаны по окружности примерно на 0,5 мм позади лимба. Роговица, радужная оболочка, хрусталик и стекловидное тело были удалены. Затем был сделан надрез 1 мм от края наглазника в сторону зрительного нерва. Затем полосу разрезали по окружности примерно на 1,0 мм позади края разреза, и ленту и периферийные...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
AnaSed (Ксилазин)АКОРН59339-110-20
Экстракт базальной мембраны (BME) MatrigelBD Biosciences354230 (Английский
Чашка для клеточных культургнездо70400110см
Полная классическая среда с сывороткой и CultureBoostКлеточные системы4Z0-500
Этиловый спирт 200 ProofФармко111000200Использование для 70%
КимвайпсКимберли-Кларк06-666
микроскопЦЕЙССAxio Observer Z1
Пенициллин/стрептомицинGIBCONo 1514010000 ед/мл
Планшет для культивирования тканей (24 лунки)ОлимпСтатьи 25-107
ВетаКет КИИИ (Кетамин)АКОРН59399-114-10
)

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Image J

Похожие статьи