Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Выделение и культивирование стромальных клеток костного мозга из большеберцовой кости мыши

3.1K просмотров

⸱

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Maridas, D. E., et al. Выделение, культивирование и дифференцировка стромальных клеток костного мозга и предшественников остеокластов от мышей. J. Vis. Exp. (2018)

В этом видео мы демонстрируем выделение и культивирование стромальных клеток костного мозга из длинных костей мышей. Выделенные адгезивные BMSC могут быть использованы для дальнейшего анализа.

Протокол

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Сбор костей у мышей

  1. Усыпить животных с использованием CO2 с последующим вывихиванием шейки матки и распылить на них 70% этанол.
    заметка: Следите за тем, чтобы использовались животные одного пола и желательно одного возраста. Мы обычно используем животных в возрасте от 7 до 8 недель. Мы рекомендуем объединять клетки не менее чем от 3 животных в каждой экспериментальной группе, чтобы получить более репрезентативную и воспроизводимую популяцию клеток.
  2. Положите усыпленную мышь на спину на доску для препарирования. С помощью щипцов создайте шатер кожи на животе. Сделайте небольшой надрез (около 1 см) с помощью стерильных ножниц для препарирования. Снимите кожу с конечностей и ступней от разреза, чтобы обнажить нижнюю часть живота и ноги.
    1. Разрежьте ниже голеностопного сустава, чтобы удалить стопу. Разрежьте вдоль гребня подвздошной кости в области бедра, чтобы отделить головку бедренной кости от тазобедренной кости. Пока мышь все еще лежит на спине, сделайте надрез посередине бедренной кости, чтобы разделить две подвздошные кости.
  3. С помощью безворсовых салфеток осторожно удалите мышцы бедренных костей, голеней и подвздошных костей.
    заметка: Срезание как можно большего количества сухожилий и мышц с кости ускоряет и облегчает очистку с помощью безворсовых салфеток (например, салфеток Кима). Будьте осторожны при работе с костями, так как они имеют тенденцию легко ломаться, а их хрупкость может увеличиваться при определенных генотипах.
  4. После того, как все образцы будут препарированы, поместите их в PBS на лед и переместите в стерильный капюшон для культуры для оставшихся этапов изоляции.
    заметка: Максимально возможная асептическая работа снизит вероятность загрязнения культур.
  5. Сделайте небольшие надрезы (примерно от 1 до 2 мм) как на проксимальном, так и на дистальном концах костей, прежде чем поместить их в разрезанные кончики в пробирках центрифуги.
    заметка: Убедитесь, что вы разрезали достаточное количество, чтобы можно было центрифугировать костный мозг; Тем не менее, необходимо соблюдать осторожность, чтобы не обрезать слишком много, поскольку популяции клеток, как правило, варьируются в зависимости от близости в пространстве костного мозга.
  6. Центрифуга при давлении 10 000 x g в течение 15 с при комнатной температуре. Убедитесь, что весь костный мозг промывается и гранулируется на дне пробирки объемом 1,5 мл, в то время как кости находятся внутри вкладышей (либо наконечник пипетки объемом 200 мкл, либо микроцентрифужная пробирка объемом 0,75 мл). После того, как весь костный мозг будет собран, извлеките вкладыши с костями из пробирок для сбора.
    заметка: Если весь костный мозг промыть, кости будут казаться белыми. Однако, если в определенных костях остается костный мозг, попробуйте снова обрезать концы и центрифугировать.

2. Суспензия клеток

  1. С помощью иглы 25 G медленно тяните клеточные гранулы вверх и вниз, чтобы разбить комки, и объедините все образцы в одну коническую пробирку объемом 15 мл. Добавьте 10 мл питательных сред BMSC на 500 мкл образцов.
  2. Поместите фильтр 70 мкм на коническую трубку объемом 50 мл и пропустите клеточную суспензию через этот фильтр, чтобы удалить возможные костные фрагменты.

3. Покрытие и культивирование смешанных популяций клеток костного мозга (Total BMC)

ПРИМЕЧАНИЕ: Клетки культивируются при 37 °C в инкубаторе с 5%CO2.

  1. Рассчитайте количество клеток и положите их в соотношении 1,0 x 106 клеток/см2 в питательных средах. Дайте 72 ч смешанной культуре для прикрепления клеток.
    заметка: Мы рекомендуем разводить клеточную суспензию в 20 раз в питательных средах и снова разводить в трипановом синем перед подсчетом клеток с помощью гемоцитометра. Для 7-недельных самцов мышей C57Bl6/J мы обычно получаем количество клеток около 50 x 106 клеток><, но возраст, пол и штамм могут сильно повлиять на количество клеток. заметка: Смешанная популяция клеток должна прикрепляться на дне колодца культуры.
  2. Через 72 часа удалите носитель и замените его свежим носителем. Продолжайте менять носители через день и проверяйте слияние. Когда клетки достигают 80-100% конфлюенции, они готовы к дифференцировке><. заметка: Поскольку эта культура смешивается как с BMSC, так и с ГСК, ее можно непосредственно использовать для остеобластогенеза, адипогенеза, а также остеокластогенеза.

4. Сервировка и культура разделенного населения BMSC (приверженных BMSC)

ПРИМЕЧАНИЕ: Клетки культивируются при 37 °C в инкубаторе с 5%CO2.

  1. Поместите все клетки, собранные из бедренных, большеберцовых и подвздошных костей одной мыши, в чашку для культуры диаметром 10 см (55 см2 площади культивирования).
    заметка: При объединении 2-3 мышей C57BL/6J мы обычно помещаем эту «общую» популяцию костного мозга в колбу размером 150 см2.
  2. Через 48 ч после смешивания культуры удалить питательные среды (содержащие неадгезивные ГСК). Если необходимо провести эксперименты по остеокластогенезу, отложите эту популяцию неадгезивных клеток в сторону (см. раздел 7), если нет, отасуньте и отбросьте эти клетки.
  3. Тщательно промойте тарелку/колбу с PBS, чтобы не потревожить прикрепленные элементы.
  4. Удалите PBS и поднимите клетки, добавив 0,25% трипсина и инкубируя при 37 °C в течение 1-3 мин. Утолите трипсин, добавив клеточную среду в клеточную суспензию. На этом этапе BMSC, которые теперь подняты, могут быть подсчитаны (как это было сделано ранее на шаге 4.1) и покрыты для будущих экспериментов.
  5. Рассчитайте количество ячеек, необходимых для нанесения покрытия. Центрифугировать необходимый объем клеточной суспензии при 1000 x g в течение 5 мин при комнатной температуре.
    заметка: Клетки обычно покрываются на основе экспериментов с конечными точками. Например, если необходимо выделить белок/РНК, мы обычно имеем более высокую плотность (~1,0-2,0 x 106 клеток/лунка в 6-луночном планшете).
  6. Удалите среду и повторно суспендируйте клеточную гранулу в объеме питательной среды, необходимом для покрытия. Поместите клетки в питательные среды в соответствии с экспериментами и дайте им прикрепиться в течение нескольких дней. Когда BMSC достигнут слияния, приступайте к выполнению дифференцировки.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Наконечники для дозатора объемом 200 мклРайнин17014401Пластиковая посуда
Центрифужные пробирки объемом 1,5 млСША Сайентифик1615-5500Пластиковая посуда
Коническая трубка 15 млВВР89039-668Пластиковая посуда
Коническая трубка объемом 50 млВВР89039-660Пластиковая посуда
Фосфатно-солевой буфер (PBS)Сигма-Олдрич21-040-СМреагент
этанолНаука Фишера04-355-451 (Английскийреагент
Инструменты для рассечения
Фильтры 70 мкмBD FalconNo 352350 (Английский
0,25% трипсинаGibcoNo 25200реагент
КимвайпВВР82003-820
гг. ) )

Больше статей

Изоляция большеберцовой кости мышиэкстракция костного мозгапротокол культивирования клетокизоляция адгезивных клетокметод центрифугированияметод фильтрацииобработка трипсиномпромывка PBSинкубация культуры