Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.
1. Очистка тромбоцитов
ПРИМЕЧАНИЕ: Очистку тромбоцитов следует проводить при комнатной температуре, чтобы предотвратить их деградацию. Убедитесь, что температура реагентов и инструментов находится в диапазоне от 18 до 22 °C. Чтобы предотвратить деградацию тромбоцитов, следует избегать быстрого пипетирования и энергичного встряхивания во время процедуры.
- Добавьте 600 μл градиентной среды иогексола (12% порошок йогексола в 0,85% натрия хлорида, 5 мМ трицина, pH 7,2) в 1,5 мл пробирки.
- Медленно добавьте 200 μL образца крови вниз по стенке пробирки поверх градиентной среды с помощью наконечника пипетки с широким отверстием, чтобы кровь и иогексоловая среда не смешивались (Рисунок 1A).
- Центрифугируйте пробирку, содержащую образец, при давлении 400 x g в течение 20 мин при 20 °C в качающемся роторе ковша с медленным ускорением и замедлением.
- Соберите большую часть богатого тромбоцитами слоя и небольшую часть бедного тромбоцитами слоя (всего от 300 до 400 мкл) с помощью наконечника для дозатора с широким отверстием, не нарушая слои эритроцитов и лейкоцитов (рис. 1B). Перенесите образец тромбоцитов в новую пробирку.
заметка: Если количество тромбоцитов в крови меньше или используется меньший объем крови, то богатый тромбоцитами слой и бедный тромбоцитами слой можно рассматривать как один слой.
- Добавьте 1 мл PBS в образец тромбоцитов, перемешайте путем инвертирования и центрифугируйте при 800 x g в течение 10 мин при 20 °C в качающемся роторе ведра. Полностью выбросьте раствор и добавьте 200 μL PBS для ресуспендирования тромбоцитов с легким пипетированием.
заметка: Этот шаг является необязательным, так как он удаляет градиентную среду и белки плазмы и повышает чувствительность тромбоцитов к агонистам, таким как тромбин. Поскольку разные центрифуги имеют разные программы, медленное ускорение/замедление можно определить, прочитав руководство пользователя центрифуги.
- Переложите 30 мкл этого образца в новую пробирку для подсчета тромбоцитов. Оставшиеся тромбоциты могут быть использованы для биохимических и физиологических анализов, таких как активация тромбоцитов, агрегация, высвобождение гранул и т. д.
- Для экстракции РНК или белка центрифугируйте образец тромбоцитов при давлении 800 x g в течение 10 минут, чтобы гранулировать тромбоциты. Полностью выбросьте надосадочную жидкость, не потревожив гранулы. Добавьте желаемый объем РНК или буфера для лизиса белка для лизиса тромбоцитов.
2. Активация тромбоцитов
- В пробирку добавьте от 1 до 2 миллионов очищенных тромбоцитов в 100 μл окрашивающего буфера (PBS с 2% фетальной бычьей сывороткой, FBS).
- Для получения множественного числа образцов приготовьте мастер-смесь антител с концентрацией 1 мкл (0,5 мг/мл) следующих антител: PE-Cy7 rat anti-mouse TER 119, PE rat anti-mouse CD45, FITC ratc anti-mouse CD41 и APC rat anti-mouse/human CD62P (P-селектин) для обнаружения эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов и активированных тромбоцитов соответственно. Добавьте мастер-смесь в пробирки для окрашивания ячеек. Не добавляйте тромбин.
- В другую пробирку добавьте от 1 до 2 миллионов очищенных тромбоцитов в 100 мкл окрашивающего буфера и 0,4 мМ пептида GPRP. Добавьте тромбин для активации тромбоцитов и окрашивания клеток, следуя шагу 2.2.
заметка: Перед добавлением тромбина в образец следует добавить GPRP, чтобы предотвратить образование агрегатов или тромбов в результате активации тромбоцитов. Концентрация тромбина должна быть оптимизирована для получения хорошей активации тромбоцитов. После активации тромбоцитов количество событий снижается во время сбора образцов с помощью проточной цитометрии.
- В качестве положительного контроля добавьте 1 л цельной крови в буфер для окрашивания объемом до 100 мкл в пробирке и 0,4 мМ пептида GPRP. Добавьте тромбин для активации тромбоцитов. В качестве отрицательного контроля добавьте 1 мкл цельной крови в 100 мкл буфера для окрашивания. Не следует добавлять тромбин в отрицательный контрольный образец. Окрашивайте клетки, следуя шагу 2.2.
- Для контроля изотипа проточной цитометрии пометьте 5 пробирок с неокрашенными, PE-Cy7, PE, FITC и APC. Добавьте 100 мкл окрашивающего буфера, 1 мкл крови и 1 мкл соответствующего антитела в меченые пробирки для окрашивания клеток.
- Инкубировать образцы для окрашивания в течение 30 минут при комнатной температуре в темноте.
- Промойте образцы, добавив 1 мл буфера для окрашивания в каждую пробирку. Центрифуга при 800 х г в течение 5 мин при комнатной температуре. Осторожно выбросьте буфер для окрашивания, не выбивая гранулу.
- Добавьте 300 мкл буфера для окрашивания в каждую пробирку, слегка перемешайте и переложите в пробирку FACS. Храните окрашенные образцы в темноте до анализа с помощью проточного цитометра.