Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.
1. Подготовьтесь заранее
- Готовьте полнорационные среды: RPMI с добавлением 2 мМ L-глутамина, 100 ЕД/мл пенициллина, 100 мкг/мл стрептомицина и 10% FBS.
- Приготовьте среду ДНКазы: 50 мл среды RPMI с добавлением 7,5 г ДНКазы (Сделайте свежей, всегда держите на льду).
- Приготовьте среду для коллагеназы-ДНКазы: 5 мл среды ДНКазы плюс 3,2 мг/мл коллагеназы IV типа (готовьте в свежем виде, всегда держите на льду).
- Предварительно охладите центрифугу до 4 °C.
- Нагрейте шейкер инкубатора до 37 °C.
2. Выделение, рассечение и выделение клеток из десневых блоков
- Усыпляйте мышей, подвергая их воздействиюCO2 в соответствующей камере, в соответствии с рекомендациями Консультативного комитета по исследованиям животных (ARAC).
- Откройте грудную и брюшную полость, чтобы обнажить сердце и внутренние органы. Для перфузии необходимо сделать надрез в нижней полой вене и ввести 3 мл PBS через левый желудочек с помощью шприца объемом 3 мл с иглой 27 G.
- Обездвижите тело и голову мыши на коврике животом вверх.
- Разрежьте ножницами каждую спайку губы по направлению к шее, отделяя кожу, покрывающую нижнюю челюсть и область шеи, и обнажая нижележащие ткани и мышцы. Рассеките нижнюю губу, чтобы обнажить нижнюю челюсть.
- Разрежьте между нижними резцами, чтобы отделить обе стороны нижней челюсти, и иммобилизуйте каждую сторону, чтобы получить доступ к ротовой полости.
- Визуализируйте и рассекайте нёбо вдали от носовой полости.
- Рассекайте участки с помощью 10-лепесткового аппарата и включайте в себя области верхнечелюстных и нижнечелюстных моляров с окружающей десной (Рисунок 1). Сделайте вертикальные разрезы прямо перед первым моляром и позади третьего моляра, а также горизонтальный разрез на границе десны (белый воротник ткани, окружающий зубы).
- Поместите верхнечелюстные и нижнечелюстные блоки в коническую пробирку объемом 50 мл с 5 мл коллагеназы/ДНКазы (держите на льду).
- Инкубировать в шейкерном инкубаторе при температуре 37°C в течение 1 часа и в течение последних 5 минут инкубации добавить 50 мкл 0,5 М ЭДТА.
- Добавьте 5 мл холодных ДНКазных сред в пробирку с салфетками объемом 50 мл и аккуратно перемешайте.
- Перенесите 4 блока ткани в чашку Петри и накройте их 500 мкл ДНКазной среды. Удалите десну из каждого блока ткани, используя лезвие скальпеля и направив лезвие в десневую и межзубную области.
- Перенесите ткани и среду из чашки Петри, а также предыдущую среду ДНКазы, использованную во время диссекции, в новую пробирку объемом 50 мл через клеточное сетчатое фильтр (размер 70 мкм). Промойте с помощью ДНКазных сред (3-5 мл) все используемые инструменты и профильтруйте.
- С помощью поршня стерильного шприца объемом 3 мл разомните ткань о ситечко, процедив холодными средами ДНКазы (от 30 до 35 мл).
- Промойте сетчатый фильтр холодной ДНКазной средой.
- Центрифуга при 4 °C, 314 x g в течение 6 мин.
- Выбросьте надосадочную жидкость, и повторно суспендируйте ее в 1 мл готовой среды.
- Подсчитайте ячейки (ожидаемое количество должно находиться в диапазоне от 8 x 105 до 1,2 x 106 клеток с жизнеспособностью >80%) с помощью автоматического счетчика ячеек.