Методическая статья

Метод выделения первичных тучных клеток из брюшинной полости мыши

1.8K просмотров

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Цвиловский, В., и др. Выделение тучных клеток, полученных из брюшины, и их функциональная характеристика с помощью Ca2+-визуализации и анализов дегрануляции. J. Vis. Exp. (2018).

Это видео демонстрирует метод перитонеального лаважа для выделения зрелых тучных клеток соединительнотканного типа из брюшинной полости взрослых мышей. После выделения смеси первичных иммунных клеток из брюшной полости проводят селективную пролиферацию тучных клеток в соответствующих условиях культивирования.

Протокол

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Выделение ПМК методом внутрибрюшинного лаважа

  1. Перед изоляцией клеток подготовьте материалы, перечисленные в таблице 1.
  2. Используйте мышей мужского пола в возрасте от 8 до 14 недель для изоляции PMC. Усыпьте мышь путем вдыхания CO2 и подтвердите смерть от потери рефлексов. Сбрызните мышь 70% этанолом и закрепите ее на поролоновом блоке с помощью булавок (тыльной стороной вниз). Снимите брюшную кожу мыши с помощью ножниц с тупыми краями. Избегайте повреждения брюшной полости.
    заметка: Обычно мы используем этот протокол для мышей с генетическим фоном штамма C57BL/6N.
  3. Введите 7 мл ледяной среды RPMI и 5 мл воздуха в брюшную полость с помощью шприца объемом 10 мл, оснащенного иглой 27 G. Осторожно вдавливайте иглу в брюшину и не прокалывайте никаких органов. Используйте пятно в области жировой ткани придатка яичка, чтобы снизить риск перфорации органа.
  4. После инъекции встряхните мышь в течение 1 минуты, чтобы удалить клетки брюшины в среду RPMI. Не трясите мышь слишком сильно, чтобы не повредить внутренние органы и не загрязнить кровью брюшную полость.
  5. Повторно используйте шприц объемом 10 мл, оснастив его новой канюлей 20 г. Сдвиньте внутренние органы в одну сторону, наклонив поролоновый блок и осторожно постучав им по скамье, чтобы облегчить аспирацию среды с другой стороны. Введите иглу 20 G, нанесите скос вверх и осторожно и медленно (~0,5 мл/с) отсасывайте жидкость из брюшной полости, чтобы избежать закупорки внутренними органами. Соберите как можно больше жидкости (обычно 5–6 мл).
  6. Извлеките иглу из шприца и перенесите собранную клеточную суспензию в сборную пробирку на льду. Выбросьте пробирку с образцом, если есть видимое загрязнение крови.
  7. Центрифугируйте пробирки с клеточной суспензией при давлении ~300 x g в течение 5 минут. Под стерильным капюшоном отсасывают надосадочную жидкость. Для каждой мыши смешайте образцы гранул в 4 мл холодной (4–10 °C) среды PMC и перенесите клеточную суспензию в колбудля культур размером 25 см2. Добавьте факторы роста IL-3 и SCF до конечных концентраций 10 нг/мл и 30 нг/мл соответственно. Поместите колбу с клетками в инкубатор (37 °C и 5%CO2) и инкубируйте в течение ~48 часов до следующей процедуры.

Таблица 1: Материалы для шага 1.

1лёд
2Шприцы 10 мл
3Иглы 27 г
4Иглы 20 г
5Блок из пенополистирола и штифты
6Пробирки для сбора (пластиковые центрифужные пробирки объемом 50 мл)
770% этанол
8RPMI Medium (предварительно охлажденный и выдержанный на льду)
9Среда PMC: RPMI Medium + 20% FCS (сыворотка для телят) + 1% раствор пенициллина стрептомицина (Pen-Strep)
10Фосфатный буферный раствор Дульбекко - DPBS (без Ca2+ и Mg2+)
11Колбы для культур (25 см)
12Исходные растворы факторов роста (IL-3: 1 μг/μл; SCF: 2,5 мкг/мл)
13Серологические пипетки (10 мл)
14Наконечники для пипеток стерильные (20–200 μл)
15Гемоцитометр
16Настольная центрифуга
17Ножницы и щипцы
18Камера CO2 для мышей
19Открытая стерильная капюшон
20Закрытый стерильный капюшон
21Клеточный инкубатор (37 °C и 5%CO2)
22Трансферные пипетки (20–200 μл)

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
RPMI MediumТермо Сайентиал21875034
ДПБССигма-Олдрич14190144
ФТСТермо СайентиалР92157
Ил-3Системы НИОКР403-МЛ
СКФТермо СайентиалPMC2115
ПенстрепТермо Сайентиал15140122
Колбы для культур (25 см)Greiner Bio-OneНомер 69160
Пластиковые центрифужные пробирки объемом 15 млСарштедт6,25,54,502
Настольная центрифугаГерейМегафуга 1.0Р

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

IL3 SCF

Похожие статьи