1. K562 Убийственный анализ
ПРИМЕЧАНИЕ: Клетки K562 следует выращивать в культуре при 37 °C и 5%CO2 с полной средой RPMI до тех пор, пока они не достигнут 80% слияния перед анализом.
- Приготовьте стоковый раствор карбоксифлуоресцеина сукцинимидилового эфира (CFSE) в массе 5 мМ, добавив во флакон 18 мкл ДМСО.
- Разбавьте WS-CM или никотин в 96-луночном планшете с использованием полной среды RPMI до общего объема 100 мкл/лунка для достижения желаемых эквиникотиновых единиц или концентраций никотина для каждой лунки><.
осторожность: Никотин крайне токсичен и опасен для окружающей среды.
- Добавьте 100 мкл PBMC в полную среду RPMI в концентрации 1,5 x 106 клеток/лунку. Общий объем клеток с WS-CM или никотином составит 200 μл/лунку.
- Накройте тарелку крышкой и выдерживайте в течение 3 часов при 37 °C и 5%CO2.
- Промойте ячейки K562, добавив 10 мл DPBS, и центрифугируйте при 400 x g в течение 8 минут при RT.
- Ресуспендируйте клетки 10 мл DPBS и подсчитайте клетки K562.
- Приготовьте рабочий раствор CFSE, добавив 1 мкл стокового раствора CFSE в 1 мл DPBS.
- Добавьте 1 мл рабочего раствора CFSE к 1 мл клеточной суспензии K562, содержащей 1 - 2 x 107 клеток. Сделайте вихрь и инкубируйте точно в течение 2 минут при RT.
- Сразу же добавьте 200 μл FBS. Сделайте вихрь и инкубируйте точно в течение 2 минут при RT.
- Добавьте 10 мл полной среды RPMI и центрифугируйте пробирку при 400 x g в течение 8 минут при RT.
- Удалите надосадочную жидкость RPMI, разбейте гранулу и снова суспендируйте клетки 10 мл полной среды RPMI и подсчитайте клетки K562, меченные CFSE.
- Промойте PBMC, центрифугируя планшет при 300 x g в течение 3 минут в RT. Отсадите надосадочную жидкость, сцеживая жидкость. Установите на место крышку и закрутите нижнюю часть пластины. Добавьте 200 μл готовой среды RPMI и повторите этап промывки еще раз.
- Добавьте меченые CFSE клетки K562 в соотношении 1:15 (100 000 K562s:1,5 x 106 PBMCs) в каждую лунку для отбора проб планшета PBMC и далее инкубируйте в течение 5 часов при 37 °C и 5%CO2.
- Промойте клеточную смесь центрифугированием при 300 x g в течение 3 минут в RT. Аспирируйте надосадочную жидкость, выбросив жидкость. Поместите крышку и закрутите дно тарелки.
- Добавьте 200 μл рабочего буфера и повторите этап промывки, описанный в шаге 14, еще раз.
- Добавьте 95 μл рабочего буфера, а затем 5 μл 7AAD в каждую лунку, чтобы получить общий объем 100 μл/лунку. Инкубируйте тарелку в темноте при RT в течение 15 минут.
- Добавьте 100 мкл проточного буфера в каждую лунку и перенесите весь объем клеточной суспензии из каждой лунки планшета в кластерные пробирки и соберите образцы на проточном цитометре.
- Определите процент 7AAD-положительных и CFSE-положительных клеток с помощью программного обеспечения для анализа проточной цитометрии.