Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Анализ для определения инфекционной дозы вируса дрозофилы С в культивируемых клетках насекомых

903 просмотров

⸱

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Yang, S. et al., Установление вирусной инфекции и анализ взаимодействия хозяина и вируса у Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (2019)

В этом видео мы демонстрируем анализ цитопатического эффекта для определения инфицирующей дозы вируса Drosophila C в тканевой культуре на клетках Drosophila S2*. Для инфицирования культивируемых клеток используются различные концентрации вируса. Определена доля клеток, проявляющих структурные изменения, и эти данные используются для расчета инфекционной дозы культуры тканей.

Протокол

1. Измерение нагрузки вируса С дрозофилы C методом анализа CPE

  1. Выберите 5 случайных вируссодержащих пробирок для определения средней инфекционной дозы вирусной культуры ткани (TCID50) с помощью анализа цитопатического эффекта (CPE) (1 единица TCID50 = 0,7 единицы, образующей бляшки [PFU]).
    заметка: CPE относится к структурным изменениям в клетках хозяина, вызванным вирусной инвазией. Заражающий вирус вызывает лизис клетки-хозяина или когда клетка умирает без лизиса из-за неспособности к размножению.
  2. В 1-й день собрать подготовленные S2* клетки методом пипетирования. Посчитайте номер ячейки. Центрифугируйте ячейки по 300 х г в течение 4 мин и выбросьте надосадочную жидкость. Разбавьте элементы до плотности 1 x 106 клеток/мл с полной средой для S2* клеток.
  3. Засейте 1 x 105 S2*клеток (100 μл) на лунку в плоскодонную 96-луночную пластину (~30% конфлюенции).
  4. Выполнение последовательных 10-кратных разведений материала DCV с полной средой для ячеек S2*. Добавьте в лунку разведение по 50 μл. Добавьте 50 мкл питательной среды без вируса в лунку, классифицируемую как лунка отрицательного контроля.
    заметка: Для каждой степени разубоживания использовали 8 скважин. Поскольку типичный выход DCV составляет около 108-10 9 БОЕ/мл, разведение должно охватывать по крайней мере ~10−5-10−10.
  5. На 4-й день наблюдайте за CPE с помощью светлопольного микроскопа с объективом 20X или 40X. Классифицируйте лунку, в которой клетки выглядят размытыми, а среда полна фрагментов, как «положительную лунку», а лунку, в которой морфология клеток нормальная, как «отрицательную лунку».
  6. Пометьте положительные или отрицательные скважины CPE знаком + или –, соответственно. Рассчитайте вирус TCID50 по методу Рида и Мюнха.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Микроцентрифужные пробирки 1,5 млклеймоNo 352070 (Английский
Чашка для клеточных культур 10 смсигмаCLS430167Культура клеток
Клеточный инкубаторСаньоМИР-553
центрифугаЭппендорф5810Р
центрифугаЭппендорф5424Р
Инкубатор дрозофил ПерсивальИ-41NLВыращивание дрозофилы
ФБСИнвитроген12657-029 (Английский)Культура клеток
Среда для насекомых ШнайдерасигмаС9895Культура клеток
Статистическое программное обеспечениеГрафПад Призма 7
Плоскодонный 96-луночный планшетсигмаCLS3922Культура клеток
Клеточный инкубаторСаньоМИР-553
микроскопОлимпСКХ41
)

Больше статей

Инфекционная доза для культур тканейанализ цитопатического действияклетки Drosophila S2серийное разведение вирусасветлопольная микроскопияанализ морфологии клетокпротокол инфицирования вирусомвзаимодействие хозяина и вирусаклассификация цитопатического эффекта