1. Лечение PKI
ПРИМЕЧАНИЕ: Это необязательно, но рекомендуется для тетрамеров Mamu-B*017:01.
- Ресуспендируйте PBMC в среде R10 в концентрации 1,6 х 107 клеток/мл.
- Добавьте 50 мкл этой клеточной суспензии в соответствующие пробирки проточной цитометрии. Добавьте в каждую пробирку 50 мкл 100 нМ раствора PKI.
- Закрутите каждую трубку. Выдерживать при 37 °C в течение 30 минут. К концу этого этапа каждая пробирка должна содержать 100 мкл клеточной суспензии, содержащей 8,0 x 105 PBMC и 50 нМ PKI.
- Перейдите к этапу окрашивания тетрамером pMHC-I.
2. Окрашивание тетрамерами pMHC-I, меченными флуорохромом
- Перед приготовлением мастер-смеси для тетрамеров pMHC-I пробирки с тетрамером pMHC-I центрифугируют при давлении 20 000 x g в течение не менее 15 минут при 4 °C. Целью этого этапа является гранулирование белковых агрегатов в растворе тетрамера pMHC-I, которые могут увеличить фоновое окрашивание. После завершения этапа центрифугирования избегайте пипетирования со дна пробирки, где будут накапливаться белковые агрегаты.
- Приготовьте достаточное количество мастер-смеси для тетрамера pMHC-I, чтобы окрасить все экспериментальные пробирки. Приготовьте избыток 15% от общего объема этой мастер-смеси с учетом ошибок пипетирования.
- Разбавьте тетрамеры pMHC-I в буфере для окрашивания (например, Brilliant Stain Buffer) так, чтобы в каждый тест добавлялось 25 мкл мастер-смеси тетрамера pMHC-I.
- Пометьте PBMC двумя тетрамерами pMHC-I на тест, один из которых конъюгирован с аллофикоцианином (APC), а другой с Brilliant Violet (BV) 421.
- Добавьте 8,0 x 105 PBMC в соответствующие пробирки для проточной цитометрии в конечном объеме 100 мкл. Если клетки были подвергнуты описанной выше обработке PKI, на этом этапе они уже должны быть ресуспендированы в 100 μл.
- Добавьте 25 мкл мастер-смеси тетрамера pMHC-I в соответствующие пробирки проточной цитометрии. К концу этого этапа конечный объем в каждой пробирке должен составлять 125 мкл.
- Сделайте вихревую обработку каждой трубки для того, чтобы гомогенизировать клеточную суспензию.
- Инкубируйте в темноте при комнатной температуре в течение 45 мин. Приготовьте коктейль моноклональных антител (mAb), окрашивающий поверхность, во время этой 45-минутной инкубации.
3. Окрашивание поверхностей
- Приготовьте достаточное количество мастер-смеси mAb, чтобы окрасить все экспериментальные пробирки. Приготовьте избыток 15% от общего объема этой мастер-смеси с учетом ошибок пипетирования.
- Отрегулируйте объем мастер-смеси с буфером для окрашивания так, чтобы на тест добавлялось 50 μл.
- Для надлежащего исключения не-CD8+ Т-клеток и разграничения подмножеств памяти используйте титруемые количества mAb, направленные против следующих молекул в мастер-смеси для окрашивания поверхности.
заметка: Флуорохромы, конъюгированные с каждым мАТ, приведены в качестве эталона: CD14 BV 510, CD16 BV 510, CD20 BV 510, CD8α BV 785, CD28 PE Cy7 и CCR7 FITC. Обратите внимание, что mAb против CD14, CD16 и CD20 конъюгированы с одним и тем же флуорохромом (т.е. BV 510), поскольку они будут включены в вентиль «дампа».
- Включите в состав мастер-смеси для окрашивания поверхности фиксируемый краситель для распознавания мертвых клеток [т.е. амино-реактивный краситель (ARD)]. Убедитесь, что реагент ARD сопряжен с флуорохромом со спектром излучения, аналогичным тем, которые используются в затворе «дампа». В этом случае используйте ARD Aqua.
- Добавьте 50 мкл окрашивающей мастер-смеси, описанной в 3.1-3.4, в соответствующие пробирки проточной цитометрии. К концу этого этапа конечный объем в каждой пробирке должен составлять 175 мкл.
- Закрутите каждую трубку. Инкубировать в темноте при комнатной температуре в течение 25 минут.
- Промывка камер промывочным буфером (фосфатно-солевой раствор (PBS), содержащий 0,1% бычьего сывороточного альбумина и 0,45 г/л NaN3).
осторожность: Азид натрия (NaN3) является токсичным веществом. Воздействие даже незначительных количеств может вызвать симптомы. Обращайтесь с этим веществом в соответствии с рекомендациями, указанными Отделом гигиены и безопасности окружающей среды (EHS) в учреждении, где проводятся эти эксперименты.
- Центрифужные пробирки при плотности 510 х г в течение 5 мин. Осторожно сцедите надосадочную жидкость в отдельный контейнер для отходов. Следите за тем, чтобы не потревожить гранулы.
осторожность: Не сцеживайте надосадочную жидкость из буфера промывки в резервуары, содержащие отбеливатель, так как он может вступить в реакцию с азидом натрия, присутствующим в буфере для промывки, и привести к образованию токсичного газа. Обратитесь в офис EHS в учреждении, где проводятся эти эксперименты, чтобы получить рекомендации по утилизации азида натрия.
- После декантации переведите клетки в оставшуюся жидкость, оставшуюся в каждой пробирке.
4. Фиксация клеток
- Добавьте 250 μл 2% раствора параформальдегида (PFA) во все пробирки для фиксации клеток.
ВНИМАНИЕ: PFA является токсичным веществом. Воздействие даже незначительных количеств может вызвать симптомы. Обращайтесь с этим веществом в соответствии с рекомендациями, указанными отделом EHS в учреждении, где проводятся эти эксперименты.
- Поскольку 2% раствор PFA должен быть изотоническим для клеток, используйте PBS для приготовления этого раствора. Ста миллилитров 2% раствора PFA достаточно для проведения многократных экспериментов. Тщательно проделайте вихревую обработку всех пробирок сразу после добавления 2% PFA с целью предотвращения образования клеточных агрегатов.
- Выдерживать в темноте при температуре 4 °C в течение 20 минут.
- Промойте ячейки, повторяя шаги 3.7-3.9. После завершения этого этапа клетки можно хранить в темноте при температуре 4 °C в течение 24-48 часов. Прежде чем приступить к фазе пермеабилизации, тщательно проведите вихревые трубки.
5. Проникновение клеток
- Добавьте 500 μл буфера для пермеабилизации. Вихревые все трубки.
- Выдерживать в темноте при комнатной температуре в течение 10 минут.
- Промойте ячейки, повторяя шаги 3.7-3.9.
6. Внутриклеточное окрашивание
- Приготовьте достаточное количество мастер-смеси mAb, чтобы окрасить все экспериментальные пробирки.
- Отрегулируйте объем с помощью PBS или буфера для окрашивания таким образом, чтобы на один тест добавлялось 50 μл внутриклеточной мастер-смеси mAb.
- Приготовьте мастер-смесь mAb, описанную в 6.1 и 6.2, используя титруемые количества mAb, направленные против CD3 и гранзима B (Gzm B).
заметка: Взаимодействие TCR тетрамеров pMHC-I может привести к интернализации CD3, что может препятствовать обнаружению тетрамеров + CD3+ CD8+ Т-клеток, если анти-CD3 mAb добавить в основную смесь для окрашивания поверхности. Чтобы этого избежать, добавляйте анти-CD3 mAb на этой стадии, то есть после того, как клетки проникнуты. Флуорохромы, конъюгированные с каждым mAb, перечислены в качестве эталонных: CD3 PerCP Cy5.5 и Gzm B PE.
- Добавьте 50 μл коктейля mAb в соответствующие пробирки. Выдерживать в темноте при комнатной температуре в течение 30 минут.
- Промойте ячейки, повторяя шаги 3.7-3.9. Пробирки готовы к получению в проточном цитометре.