Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Анализ для оценки эффективности препарата против модели инфекции Mycobacterium tuberculosis

951 просмотров

⸱

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Schaaf, K., et al. Высокопроизводительный совместимый анализ для оценки эффективности лекарств против микобактерий туберкулеза, проходящих через макрофаги. J. Vis. Exp. (2017)

Это видео демонстрирует анализ для оценки эффективности лекарств против инфекции Mycobacterium tuberculosis (Mtb). Создается модель инфекции in vitro, содержащая агрегаты Mtb/макрофагов, которая имитирует инфекцию in vivo. После введения подходящих антибиотиков их эффективность проверяется с помощью анализа на резузарин для мониторинга выживаемости бактерий с возрастающими концентрациями препарата.

Протокол

1. Условия культивирования зеленого флуоресцентного белка, экспрессирующего M. tuberculosis mc26206 (Mtb-GFP)

ПРИМЕЧАНИЕ: В этом протоколе используется ауксотрофный штамм M. tuberculosis H37Rv, полученный из M. tuberculosis (ΔpanCD, ΔleuCD), трансформированный с помощью gfp (зеленого флуоресцентного белка), экспрессирующего плазмиду pMN437. Можно заменить штамм Mtb-GFP штаммом, не экспрессирующим дикий тип, чтобы обеспечить более легкий доступ к штамму для исследователей. Тем не менее, экспрессия gfp желательна для обеспечения визуального подтверждения фагоцитоза и образования агрегатов Mtb/макрофагов. Для длительного хранения Mtb-GFP замораживали при -80 °C в полной среде 7H9 (описанной на шаге 1.1) с добавлением 20% глицерина.

  1. Приготовьте полноценную среду Mtb-GFP (7H9-C), добавив среду 7H9 с 10% Middlebrook OADC (олеиновый альбумин декстроза каталазы), 0,02% тилоксапола, 24 мкг/мл D-пантотеновой кислоты, 50 мкг/мл L-лейцина и 50 мкг/мл гигромицина B.
  2. Разморозьте один флакон Mtb-GFP и добавьте 10 мл 7H9-C в колбу PETG с квадратным дном объемом 30 мл.
  3. Инкубировать при 37 °C на ротационном встряхивателе (50 об/мин). Измеряйте оптическую плотность (наружный диаметр600) каждые несколько дней, пока наружный диаметр600 не достигнет 1,0 (примерно 5-8 дней).
  4. Разбавляйте и пропускайте культуру по мере необходимости для поддержания наружного диаметра600 в диапазоне 0,2-1,0.
  5. Для инфекции используйте установленную культуру Mtb-GFP в фазе логарифмического роста (OD600 от 0,6-1). Чтобы избежать образования комков, облучайте колбу с культурой Mtb на водяной бане (130 Вт; 3 x 5 с импульсов) один или два раза в неделю.

2. Условия культивирования клеток THP-1

  1. Приготовьте полную клеточную среду THP-1 (RPMI-C) путем добавления среды RPMI 1640 с 10% инактивированной тепловой фетальной бычьей сывороткой, 2 мМ L-глутамина и 10 мМ HEPES (4-(2-гидроксиэтил)-1-пиперазитансульфоновая кислота).
  2. Инкубируйте клетки в колбе Т-75 при температуре 37 °C во влажной атмосфере с содержаниемCO2 5%.
  3. Подсчитывайте клетки с помощью гемоцитометра или проточной цитометрии через день и поддерживайте плотность клеток THP-1 в диапазоне от 0,1 до 0,6 миллиона на мл.

3. Протокол заражения для генерации структур mtb/макрофагов

  1. Клеточный препарат THP-1 (на 96-луночный планшет)
    1. Центрифугируйте 7 x 106 THP-1 клеток при 250 x g в течение 5 мин. Ресуспендируйте в 7 мл RPMI-C.
  2. Подготовка МТБ-ГФП
    1. Центрифуга 2,8 x 108 Mtb-GFP при 3 200 x g в течение 5 мин в центрифуге с качающимся ведром с использованием преобразования наружного диаметра600 1,0 = 3 x 108 бактерий/мл.
    2. Вымойте один раз с помощью RPMI-C и центрифуги, как в шаге 3.2.1.
    3. Ресуспендирование в 7 мл RPMI-C и вихрь на 10 с.
  3. Инфекция
    ПРИМЕЧАНИЕ: Шаблон см. на рисунке 1.
    1. Приготовьте планшет на 96 лунок, добавив 200 мкл стерильной воды в ряды A и H и столбцы 1 и 12 для водяного обода, чтобы предотвратить испарение питательной среды.
    2. Добавьте 200 μL RPMI-C в столбец 2 (от B2 до G2) для управления фоном (Blank).
    3. Чтобы заразить, добавьте суспензию Mtb-GFP (шаг 3.2) в клеточную суспензию THP-1 (шаг 3.1) и хорошо перемешайте с помощью пипетирования. Конечная плотность клеток THP-1 составляет 5 x 105 на мл, а соответствующая кратность инфекции равна 40.
    4. Налейте суспензию THP-1/Mtb-GFP в резервуар объемом 25 мл.
    5. Добавьте 200 мкл суспензии THP-1/Mtb-GFP во все оставшиеся 96 лунок (от B3 до G11) с помощью многоканальной пипетки.
      заметка: При работе с несколькими 96-луночными планшетами регулярно ресуспендируйте оставшуюся суспензию THP-1/Mtb в резервуаре, чтобы обеспечить равномерное добавление смеси в каждую скважину.
    6. Инкубировать при 37 °C с 5%CO2 в течение 7-10 дней.
    7. Меняйте среду каждые 2 дня, медленно удаляя 100 мкл отработанной среды с верхней части каждой лунки и осторожно добавляя 100 мкл предварительно подогретой RPMI-C с помощью многоканальной пипетки. Не допускайте повторной суспензии в скважинах и не нарушайте агрегаты Mtb/макрофагов на дне скважин.
    8. Ежедневно визуально осматривайте лунки с помощью флуоресцентной микроскопии (объектив 4-10X), обращая внимание на размер агрегатов Mtb/макрофагов. К 7-10-му дню агрегаты Mtb/макрофагов должны стать достаточно большими (см. Рисунок 2 для справки), чтобы можно было приступить к тестированию эффективности препарата (Раздел 4).
    9. При желании можно получить изображения 96 лунок с помощью автоматизированной системы визуализации ячеек, оснащенной наборами фильтров яркого поля и GFP, чтобы задокументировать образование агрегатов Mtb/макрофагов.
      заметка: Если у пользователей нет доступа к автоматизированной системе визуализации, изображения репрезентативных лунок могут быть сделаны с помощью любого подходящего микроскопа с возможностью GFP и яркого поля.

4. Анализ ингибирования роста для оценки эффективности препарата против МТБ, полученного из агрегатов МТБ/макрофагов

  1. Лекарственная подготовка (тройные условия для двух препаратов)<бр/> ПРИМЕЧАНИЕ: Шаблон см. на рисунке 1A.
    1. В отдельный 96-луночный планшет добавьте 125 мкл среды 7H9-C к B2 до G10.
    2. Приготовьте два препарата с максимальной максимальной конечной концентрацией в 1 мл 7H9-C в два раза выше желаемой концентрации для учета разведения, указанного на стадии 4.2.4.
    3. Добавьте по 250 мкл каждого препарата в лунки B11-C11-D11 и E11-F11-G11 соответственно для тройных обработок.
    4. Используя многоканальную пипетку, последовательно разбавляйте исследуемые препараты в два раза, перемещая 125 мкл из B11-G11 в B10-G10. Перемешивайте пипеткой 5 раз на каждом этапе.
    5. Продолжайте перемещать 125 мкл от столбца к столбцу (справа налево) по пластине и остановитесь после столбца 4.
    6. После смешивания в колонке 4 слейте 125 μL в контейнер для отходов. Столбцы 2 и 3 не должны содержать никаких лекарственных препаратов, позволяющих использовать их в качестве фона (пробел) и положительных средств контроля роста.
      заметка: В качестве альтернативы следуйте шаблону на рисунке 1B для тестирования библиотек лекарств. Каждый 96-луночный планшет может вместить 58 препаратов в одной концентрации. Приготовьте эту лекарственную пластину, используя двойную желаемую конечную концентрацию, так как на шаге 4.2.4 она будет разбавлена пополам.
  2. Медикаментозное лечение:
    1. Извлеките 96-луночный планшет, содержащий Mtb-инфицированные макрофаги (агрегаты Mtb/макрофагов).
    2. Тщательно сцедите все соответствующие лунки (от B2 до G11) с помощью многоканальной пипетки. Выполните это в два этапа: сначала удалите 150 μЛ, не наклоняя пластину, а затем удалите оставшуюся среду (~50 μЛ), наклонив пластину и вставив наконечник пипетки в нижний край лунки. Поскольку агрегаты Mtb/макрофагов прилипают к дну скважины, материал не должен теряться.
    3. Аккуратно добавьте 100 мкл среды 7H9-C во все соответствующие лунки (от B2 до G11) планшета, содержащего агрегаты Mtb/макрофагов.
    4. С помощью многоканальной пипетки перенести 100 мкл из содержащей препарат 96-луночной пластины (шаг 4.1) в соответствующие лунки инфекционной пластины.
    5. Поместите в герметичный пакет и выдерживайте в течение 3 дней при 37 °C.

5. Количественная оценка эффективности лекарства с помощью анализа микротитров резазурина

  1. Приготовьте стоковый раствор резазурина в конечной концентрации 0,8 мг/мл вH2O. Профильтруйте через мембрану из поливинилиденфторида (PVDF) размером 0,22 мкм для стерилизации.
  2. Приготовьте рабочий раствор резазурина, смешав исходный раствор резазурина H2O и Tween-80 (20% раствор в H2O) в соотношении 2:1:1. Конечные концентрации составляют 0,4 мг/мл резазурина и 5% Tween-80.
  3. С помощью планшетного ридера настройте программу для считывания флуоресценции при возбуждении 530 нм и излучении 590 нм каждые 30 мин в течение 24 ч при 37 °C. Предварительно нагрейте планшетный ридер до 37 °C.
  4. Добавьте 20 мкл рабочего раствора резазурина во все соответствующие лунки (от B2 до G11) обработанной лекарственным препаратом пластины (шаг 4.11) с помощью многоканальной пипетки.
  5. Поместите пластину на считыватель пластин и запустите программу, настроенную на шаге 5.3.
    заметка: Для облегчения обработки больших объемов пробирных планшетов достаточно проявлять анализ в инкубаторе при температуре 37 °C и выполнять однократные флуоресцентные чтения каждые 24 часа. Это также относится к пользователям, у которых нет доступа к считывателю планшетов с кинетическими и инкубационными возможностями.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1
Рисунок 1: Схема расположения лекарственной пластины. (A) Пример шаблона таблички для проверки лекарств, используемый на шаге 4. Это позволяет проводить параллельные испытания двух препаратов в тройных скважинах при 8 определенных концентрациях. В качестве репрезентативного эксперимента мы использовали рифампицин (РИФ) и моксифлоксацин (МОКСИ), начиная с 2 мкМ и 2,5 мкМ соответственн...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
7Н9BD DifcoNo 271310 (АнглийскийСледуйте рекомендациям производителя
Миддлбрук OADCBD Biosciences212351
ТилоксаполсигмаТ8761Приготовьте 20% исходный раствор в H2O; простерилизуйте фильтром
D-пантотеновая кислота гемикальциевая сольсигмаП5710Приготовьте исходный раствор 24 мг/мл в H2O; простерилизуйте фильтром
L-лейцинMP Biomedicals194694Приготовьте исходный раствор 50 мг/мл в H2O; простерилизуйте фильтром
Гигромицин ВEMD Millipore400051Приготовьте исходный раствор 200 мг/мл в H2O
Nalgene Square PETG медиа-бутылкаТермо Фишер2019-0030
Мультимедийное средство RPMI 1640ГиклонSH30027.01
Фетальная бычья сывороткаАтланта БиолаксS12450H
L-глютаминКорнингMT25005CI
ХЕПЕСГиклонSH30237.01
Считыватель Cytation 3 планшетаБиотекВзаимозаменяемость с любым считывателем флуоресцентных пластин и микроскопом
Программное обеспечение Gen5БиотекРегистрация и анализ резасуриновой коверсии
РифампицинНаучный центр ФишераBP2679250Приготовьте стоковый раствор 10 мг/мл в H2O
Моксифлоксацина гидрохлоридАкрос Органик457960010Приготовьте стоковый раствор 10 мг/мл в H2O
Резазурин Натриевая сольсигмаР7017Приготовьте исходный раствор в концентрации 800 мкг/мл в H2O; простерилизуйте фильтром
Твин-80Научный центр ФишераT164500Приготовьте 20% исходный раствор в H2O; простерилизуйте фильтром
)

Больше статей

Анализ эффективности препаратамодель инфицирования макрофаговрезазуриновый тестсерийное разведение антибиотикаизмерение флуоресценциимониторинг выживаемости бактерийтестирование рифампицина и моксифлоксацинамодель инфекции in vitroсовместимость с высокопроизводительным скринингом