1. Иммуноокрашивание резидентных CD8 Т-клеток и опухолевых клеток
- Развести антитела (конечная концентрация 10 мкг/мл) и ядерный краситель (конечная концентрация 1 мкг/мл) в среде RPMI-1640 без фенола ред.<бр/>
заметка: Используйте антитела с флуоресцентной связью anti-CD8 (мышиный IgG, клон SK1) и анти-EpCAM (молекула адгезии эпителиальных клеток) (мышиный IgG HEA-125) для мечения CD8 Т-лимфоцитов и опухолевых эпителиальных клеток соответственно. Используйте антитела против CD90/Thy1 с флуоресцентной связью (мышиный IgG, клон 5E10) для мечения фибробластов и активированных эндотелиальных клеток. Используйте 4',6-диамидино-2-фенилиндол (DAPI) для мечения ядра клеток с нарушенной плазматической мембраной с целью оценки жизнеспособности тканей.
- Извлеките планшеты для культивирования из инкубатора и с помощью пипетки отсосите жидкость из нержавеющей стали. Не удаляйте среду RPMI-1640 объемом 1,1 мл, помещенную под вкладыши для клеточных культур.
- Не прикасаясь к срезу и с помощью наконечника пипетки, добавьте 40 мкл раствора, содержащего антитела, на каждый срез опухоли.
- Инкубируйте планшет при 37 °C в течение 15 минут, чтобы обеспечить окрашивание антителами.
- Тонкими щипцами снимите шайбы, выньте ломтики и опустите их на 10 с в среду RPMI-1640 без фенолового красного. Поместите срезы обратно на вкладыши для клеточных культур и добавьте каплю среды RPMI-1640, не содержащей фенола, красного цвета, на каждый отдельный ломтик. Выдерживайте температуру на плите при температуре 37 °C в течение 10 минут. Приступаем к визуализации.
2. Визуализация и анализ миграции резидентных CD8 Т-клеток в срезах опухоли легкого человека
ПРИМЕЧАНИЕ: Конфокальный микроскоп, используемый в этом протоколе, представляет собой вертикальный вращающийся диск, оснащенный 25-кратным объективом для погружения в воду (25x/0,95 N.A.).
- Подготовка настройки микроскопа
- За несколько часов до начала сеанса визуализации установите температуру термокамеры микроскопа на уровне 37 °C.
- Настройте систему для постоянной перфузии опухолевых срезов насыщенной кислородом (5% CO2, 95%O2) феноловой средой RPMI, не содержащей красных красных (рис. 1). С помощью перистальтического насоса подайте перфузионный фильтрующий материал в камеру визуализации и отасуньте раствор в колбу для сбора отходов.
- Запустите перистальтический насос, чтобы насыщенный кислородом раствор прошел через перфузионные трубки.
- С помощью тонких щипцов выньте срез из 6-луночного планшета и перенесите его в пластиковую чашку диаметром 35 мм, заполненную средой RPMI, не содержащей фенола красного. Иммобилизуйте срез с помощью анкера для среза диаметром 19,7 мм с расстоянием между нитями 2 мм. Поместите чашку Петри на предметный столик микроскопа. Подсоедините входной и выходной наконечники системы перфузии. Включите систему перфузии и установите скорость потока среды на 0,8 мл/мин.
- Опустите цель погружения в воду на срез. Сфокусируйтесь на верхней части среза с помощью яркого полевого света. Используя подходящий флуоресцентный свет, выберите интересующую область, содержащую CD8 Т-клетки, опухолевые островки (положительные на EpCAM) и область стромы (положительную на CD90). Проверьте жизнеспособность клеток в пределах среза, оценив окрашивание DAPI на поверхности разреза и вглубь ткани.
Здоровый срез содержит лишь меньшинство DAPI-положительных клеток на расстоянии нескольких микрон от поверхности разреза.
- Установите сеанс визуализации, выполнив следующие действия.
- В зависимости от интенсивности флуоресцентного сигнала 3 флуорофоров установите время экспозиции от 50 до 800 мс и интенсивность лазера от 20 до 40%.
- Выберите толщину стека z для изображения в пределах опухолевого среза.
заметка: Здесь было захвачено 10-12 оптических плоскостей, охватывающих общую глубину 60-70 мкм в размерности z.
- Выберите начальную позицию примерно на 10 мкм ниже первых меченых CD8 Т-клеток.
- Определите временной интервал между каждым изображением z-стека от 10 до 30 с и общее время записи от 10 до 30 минут.