Методическая статья

Метод иммунофлуоресценции с двойным мечением для визуализации белков хозяина и патогена в инфицированной клетке

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Gachet-Castro, C. et al., Двойная маркировка иммунофлуоресценции с использованием антител из одного и того же вида для изучения взаимодействий хозяина-патогена.J. Vis. Exp.(2021)

Это видео демонстрирует двойную маркировку иммуноокрашивания двумя разными первичными антителами, выращенными у одного и того же вида, связывающимися специфически с белками паразита и хозяина. Кроме того, меченые вторичные антитела, нацеленные на эти первичные антитела, позволяют отчетливо визуализировать белки хозяина и паразита, облегчая изучение взаимодействия хозяина и патогена.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Клеточные и паразитарные культуры

  1. Выращивайте клетки LLC-MK2 (Rhesus Monkey Kidney Epithelial) из Американской коллекции типовых культур (CCL-7) в колбе 2-х клеточной культуры размером 25 см, содержащей среду Roswell Park Memorial Institute (RPMI) с добавлением 10% инактивированной при нагревании FBS (фетальной сыворотки крупного рогатого скота) и антибиотиков (100 ЕД/мл пенициллина и 100 мкг/мл стрептомицина) при 37 °C в 5% углекислом газе (CO2).
  2. Инфицировать клетки LLC-MK2 штаммом Trypanosoma cruzi (штамм Y) в соответствии с предыдущим протоколом.
  3. Соберите надосадочную жидкость инфицированных клеток LLC-MK2 (5 мл) в коническую центрифужную пробирку для клеточных культур объемом 15 мл и центрифугируйте при 500 x g в течение 10 минут и 22 °C для снижения клеточного мусора. Держите трубку в течение 10 минут при температуре 37 °C, чтобы трипомастиготы могли подплыть к надосадочной жидкости.
  4. Соберите надосадочную жидкость в новую коническую пробирку и центрифугируйте при 2500 x g в течение 15 минут при 22 °C. Выбросьте надосадочную жидкость и повторно суспендируйте гранулу, содержащую паразитов, в полной среде RPMI для определения плотности клеток путем подсчета клеток в камере Нейбауэра.

2. Протокол контроля иммунофлуоресценции

ПРИМЕЧАНИЕ: После фиксации пластины, содержащие покровные стекла, можно хранить при температуре 4 °C в 1x фосфатно-солевом буфере (PBS) (pH 7,2) в течение одной недели. Для хранения важно, чтобы клетки не прошли этап проникновения.

  1. Отсадите ячейки ООО-МК2 (2 x 104) в 24-луночные планшеты, содержащие ультрафиолетовые (УФ) стерилизованные округлые покровные стекла в среде RPMI в течение 16 часов.
  2. Для инфицированных клеток добавьте надосадочную жидкость, содержащую T. cruzi (поз. 1.4), в каждую лунку в пропорции (кратность инфекции, MOI 10:1) и оставьте на 6 ч после заражения. Покровные листы, содержащие инфицированные и неинфицированные клетки, пять раз промыть раствором PBS и зафиксированными 2% параформальдегидом в 1x PBS (pH 7,2) в течение 10 минут при комнатной температуре (RT).
  3. Промойте покровные стекла три раза по 5 минут каждый с 1x PBS (pH 7,2).
  4. Пропитайте покровные стекла 0,2% IGEPAL CA-630 (октилфеноксиполиэтоксиэтанол) в 1x PBS (PH 7,2) в течение 10 минут на RT.
  5. Промойте покровные стекла три раза по 5 минут каждый с 1x PBS.
  6. Инкубировать покровные стекла в течение 30 минут при РТ с блокирующим раствором (2% бычьего сывороточного альбумина, BSA в 1x PBS, pH 7,2).
  7. Инкубируйте покровные листы в течение 30 мин в РТ либо с мышиным моноклональным анти-hnRNPA1 (антигетерогенный рибонуклеопротеин-А1) (разведение 1:200), либо с мышиными поликлональными анти-TcFAZ (белком зоны прикрепления жгутика против Trypanosoma cruzi) (разведение 1:100), разведенными в блокирующем растворе.
  8. Промойте покровные стекла три раза по 5 минут каждый с 1x PBS.
  9. Инкубируйте покровные стекла в течение 30 мин при РТ с козьим антимышиным IgG F (ab')2 (H+L), конъюгированным с Alexa Fluor 488 (1:600), вместе с фаллоидином, конъюгированным с Alexa 594 (1:300), для окрашивания актиновых филаментов (F-актина) в клетке-хозяине, разведенных в блокирующем растворе.
  10. Трижды промыть 1x PBS (pH 7,2) в течение 5 минут каждый.
  11. Нанесите небольшое количество монтажного реагента ProLong Gold с 4',6-диамидино-2-фенилиндолом (DAPI) на поверхность предметного стекла.
  12. С помощью щипцов аккуратно наклоните покровное стекло в монтажной среде, чтобы предотвратить образование пузырьков. После высыхания при желании закройте покровное стекло.

3. Протокол иммунофлуоресценции с двойной мечкой с использованием моноклональных и поликлональных антител, выращенных в одном и том же хозяине

  1. Повторите шаги с 2.1 по 2.6, описанные выше.
  2. Инкубировать покровные листы, содержащие инфицированные и неинфицированные клетки, с поликлональными антителами к TcFAZ (1:100) мыши, разведенными в блокирующем растворе в течение 30 мин при ЛТ.
  3. Промойте покровные стекла три раза по 5 минут каждый с 1x PBS.
  4. Инкубируйте покровные стекла в течение 30 минут при РТ с козьим антимышиным IgG F (ab')2 (H+L), конъюгированным с Alexa Fluor 647 (1:600), разведенным в блокирующем растворе.
  5. Промойте покровные стекла три раза по 5 минут каждый с 1x PBS.
  6. Второй этап блокировки проведите с помощью антимышиного IgG (H+L) AffiniPure, разведенного (0,12 мг/мл) в растворе блокирующей жидкости в течение 30 минут при РТ.
  7. Промойте покровные стекла три раза с 1x PBS (pH 7,2) в течение 5 минут каждый. Затем инкубируют с мышиным моноклональным антителом к hnRNP A1 IgG2b (1:200) в течение 30 минут при ЛТ.
  8. Промойте покровные стекла три раза по 5 минут каждый с 1x PBS.
  9. Инкубируйте покровные стекла в течение 30 минут с антителом козы против мыши IgG2b, конъюгированным с Alexa Fluor 488 (1:600) и фаллоидином, конъюгированным с Alexa 594 (1:300), разведенным в блокирующем растворе.
  10. Промойте покровные стекла три раза по 5 минут каждый с 1x PBS.
  11. Повторите шаги с 2.8 по 2.10, описанные выше.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Alexa Fluor 488 - антитела IgG2bLife technologies, СШАА21141Козий антимышь
AffiniPure Rabbit против мышей IgG (H+L)Jackson Immunoresearch, США315-005-003Антитела к мышам
Alexa Fluor 488 - антитела IgG F(ab')2 (H+L)Life technologies, СШАА11017Козий антимышь
Антитела Alexa Fluor 594 IgG1Life technologies, СШАА21125Козий антимышь
Alexa Fluor 647 - антитела IgG F(ab')2 (H+L)Life technologies, СШАА21237Козий антимышь
Антитело IgG2b к hnRNPA1Сигма-Олдрич, СШАР4528Антитела мыши
антитела против TcFAZ (белок T. cruzi FAZ)Наша лабораторияВнутри компанииАнтитела мыши
Бычий сывороточный альбумин (BSA)Сигма-Олдрич, СШАА2153-10ГБелок альбумин
Моющее средство Igepal CA-630Сигма-Олдрич, СШАИ3021Неионогенное моющее средство
Фетальная бычья сыворотка (FBS)Gibco, Thermo fisher scientific, США12657-029 (Английский)сыворотка
Пенициллин стрептомицинGibco, Thermo fisher scientific, США15140-122антибиотик
Фаллоидин Alexa Fluor 594Life technologies, СШАА12381Маркер Актин
Антифейд ProLong Gold с DAPILife technologies, СШАП36935Реагент для монтажных сред
RPMI 1640 1X с L-глютаминомCorning, США10-040-CVСреды для клеточных культур
Раствор трипсин-ЭДТАСигма-Олдрич, СШАТ4049-100МЛБиореагент

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Double Labeling ImmunofluorescenceHost Pathogen InteractionParasite Protein LabelingHost Protein LabelingMouse Primary AntibodiesSecondary Antibody OverlayConfocal Microscopy AnalysisActin Filament StainingDNA Stain MediumBlocking Buffer Treatment

Похожие статьи