Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Обнаружение циркулирующих антигликановых антител с помощью печатной гликановой матрицы

827 просмотров

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Olivera-Ardid, S. et al., Печатный гликановый массив: чувствительная техника для анализа репертуара циркулирующих антиуглеводных антител у мелких животных.J. Vis. Exp.(2019)

Это видео демонстрирует технологию печатной гликановой матрицы для анализа циркулирующих антигликановых антител в сыворотке мыши. Антитела в сыворотке взаимодействуют со специфическими гликанами на чипе, что подтверждается иммуноокрашиванием с последующим флуоресцентным сканированием.

Протокол

Все процедуры, связанные со сбором образцов, были выполнены в соответствии с рекомендациями института IRB.

1. Производство гликочипов

  1. Подготовка микрочипов
    1. Напечатайте гликаны (50 мМ) и полисахариды (10 мкг/мл) в 300 мМ фосфатно-солевом буфере (PBS, pH 8,5) с 6 повторениями на предметных стеклах, N-гидроксисукцинимид, используя бесконтактный роботизированный матриер (объем капель ~900 пл). Каждый слайд содержит 4 различных блока подмассивов (Рисунок 1A, в цветах), повторяющихся 6 раз. Каждый отдельный подмассив образован 112 различными гликановыми пятнами, включая контрольные (8 строк × 14 столбцов) (рис. 1B).
      заметка: Информация, связанная с гликанами, представлена в таблице 1. Библиотека гликанов, используемая для печати микрочипов, является результатом многолетних синтетических усилий команды IBCh; Примеры синтеза описаны в соответствующих публикациях. Библиотека гликанов включала антигены группы крови и некоторые из наиболее часто встречающихся терминальных олигосахаридов, а также основные мотивы N- и O-связанных гликопротеинов и гликолипидов млекопитающих, опухолеассоциированных углеводных антигенов и полисахаридов патогенных бактерий.
    2. Инкубируйте предметные стекла в ящике для влажности (относительная влажность ~70%) при комнатной температуре (25 °C) в течение 1 часа.
    3. Блокирующие микрочипы: инкубировать предметные стекла в течение 1,5 ч с блокирующим буфером при комнатной температуре (100 мМ борной кислоты, 25 мМ этаноламина, 0,2% (v/v) Tween-20 в ультрачистой воде).
    4. Промойте гликочип сверхчистой водой и высушите его на воздухе.
  2. Контроль качества гликочипа
    1. Проанализируйте два микрочипа из каждой партии с использованием 1 мг/мл раствора комплексного препарата иммуноглобулина (CIP, содержащего иммуноглобулины: IgG, IgM и IgA), 10 мкг/мл раствора биотинилированных козьих античеловеческих иммуноглобулинов в качестве вторичного антитела (IgM + IgG + IgA), а затем 1 мкг/мл раствора соответствующего флуоресцентного конъюгата стрептавидина (по протоколу, описанному ниже, см. шаг 2).
    2. Отсканируйте и проанализируйте гликочипы (см. шаг 3, анализ гликановой матрицы).
    3. Используйте партии микрочипов с внутри- и межчиповой корреляцией выше 0,9.

2. Метод гликановой матрицы

  1. Приготовьте следующие водные растворы (в сверхчистой воде) и храните их при комнатной температуре (25 °C):
    1. Буфер-1: 1% (w/v) бычьего сывороточного альбумина (BSA) в фосфат-солевом буфере (PBS), 1% (v/v) Tween-20 и 0,01% (w/v) азида натрия (NaN3).
    2. Буфер-2: 1% (w/v) BSA в PBS, 0,1% (v/v) Tween-20 и 0,01% (w/v) NaN3.
    3. Буфер-3: 0,1% (v/v) Tween-20 в PBS.
    4. Буфер-4: 0,001% (v/v) Tween-20 в PBS.
  2. Гликочип и пробоподготовка
    1. Поставьте ящик для хранения с предметными стеклами на стол до тех пор, пока они не нагреются до комнатной температуры (25 °C).
      заметка: Используйте неопудренные латексные перчатки. Управление гликочипом необходимо осуществлять с помощью нижней части предметного стекла, где находится штрих-код. Штрих-код поможет вам определить правильную сторону, избегая контакта с поверхностью, на которую напечатаны гликаны.
    2. Откройте коробку, возьмите гликочип и поместите его в инкубационную камеру (25 °C), уже скондиционированную влажной фильтровальной бумагой для поддержания постоянной влажности внутри камеры.
    3. Тем временем разведите сыворотку мышей с Buffer-1 (1:20) в пробирках объемом 1,5 мл. Гомогенизируйте раствор сыворотки (5 с) с помощью вихревого смесителя. <бр/> заметка: Объем, необходимый для полного покрытия одной поверхности гликочипа, составляет примерно 1 мл.
    4. После гомогенизации разведенную сыворотку инкубировать при 37 °C в течение 10 минут на водяной бане, чтобы избежать агрегации иммуноглобулинов. Центрифугируйте пробирки в течение 3 минут при 10 000 x g и 25 °C, соберите надосадочную жидкость и выбросьте выпавший в осадок материал.
    5. Осторожно поместите гликочип в инкубационную камеру. Инкубируйте его в течение 15 минут при 25 °C с 1 мл Buffer-3, чтобы удалить остатки материала на поверхности гликочипа.
    6. Держите гликочип в вертикальном положении и повторно промойте его несколькими каплями Buffer-3 с помощью пластиковой пипетки Пастера. Осторожно удалите буфер с поверхности гликочипа с помощью фильтровальной бумаги.

3. Реакция: связывание антител

  1. Поместите гликочип в инкубационную камеру. Распределите разведенный образец сыворотки по поверхности гликочипа с помощью микропипетки. Инкубировать с орбитальным перемешиванием (30 об/мин) при 37 °C в течение 1,5 ч. Убедитесь, что вся сухая область поверхности гликочипа покрыта разбавленным образцом сыворотки с помощью кончика пипетки.
  2. Удалите лишний образец и погрузите гликочип на 5 минут в буфер-3 при температуре 25 °C. Затем переместите гликочип в емкость с Буфером-4 (5 мин) и, наконец, промойте (5 мин) гликочип сверхчистой водой. Центрифугируйте гликочип в течение 1 минуты при 175 x g и 25 °C, чтобы удалить жидкость.

4. Обнаружение: вторичное антитело

  1. Поместите гликочип в инкубационную камеру. Распределите по поверхности гликочипа раствор (5 мкг/мл) козьего антимышиного препарата (IgG + IgM), конъюгированного с биотином в буфере-2. Инкубировать с орбитальным перемешиванием (30 об/мин) при 37 °C в течение 1 ч.
  2. Удалите несвязанную фракцию и повторите шаги промывки.
  3. После центрифугирования гликочип инкубируют в темноте при 25 °C в течение 45 мин (30 об/мин) с 2 мкг/мл соответствующего раствора стрептавидина, меченного флуорохромом (в буфере-2).
  4. В темноте удалите несвязанную фракцию и повторите шаги стирки.
  5. Высушите гликочип на воздухе. <бр/> заметка: Гликочип должен быть отсканирован как можно скорее. Но если сразу после окрашивания сделать сканирование невозможно, гликочипы можно хранить в прохладном и сухом месте в темноте.

3. Анализ гликановой матрицы

  1. Сканирование массива
    1. Оставьте гликочип на столе до тех пор, пока он не достигнет комнатной температуры в темноте. Одновременно включите сканер слайдов и лазер (длина волны возбуждения 633 нм).
    2. Удерживая микрочип, вставьте гликочип в паз до тех пор, пока он не коснется задней панели.
    3. Отсканируйте гликочип («run easy scan») и сохраните сканирование как ». TIFF".

Таблица 1: Список гликанов, их связывание с естественными циркулирующими антителами (IgM + IgG) мышей BALB/c (n = 20), выраженных в единицах относительной флуоресценции (RFU) как медиана ± MAD, и количество животных, превышающее отсечку (≥4000 RFU). Эта таблица была воспроизведена из Bello-Gil, D. et al. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать эту таблицу.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1
Рисунок 1: Схематическое изображение (не в масштабе) конфигурации, печати и анализа гликановой матрицы.(А) Напечатанные микрочипы разрабатываются с использованием библиотеки из 419 различных гликановых структур с последующим детектированием с помощью соответствующего флуоресцентно меченного вторичного антитела. Каждый слайд содержит 4 различных блока подмассивов (в цветах), повторяющ...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Антитела
Биотинилированный козий античеловеческий IgsThermo Fisher Scientific, Уолтем, Массачусетс, СШАНомер #: 31782
Биотинилированный козий антимышиный IgM + IgGThermo Fisher ScientificНомер #: 31807
оборудование
Роботизированный массив sciFLEXARRAYER S5 Scienion AG, Берлин, Германияhttp://www.scienion.com/products/sciflexarrayer/
Лоток для морилки (инкубационная камера с шифером)Simport, Beloeil, QC, КанадаСсылка #: M920-2
центрифугаEppendorf, Гамбург, Германия Код #: 5810 R
ПипеткиГилсон, Миддлтон, штат Висконсин, СШАhttp://www.gilson.com/en/Pipette/
Сканер слайдов ПеркинЭлмер, Уолтем, Массачусетс, СШАScanArray GX Plus
Встряхивающий инкубаторКоул-Пармер, Стаффордшир, ВеликобританияСсылка #: SI50
Биологические образцы
BALB/c мышиная сывороткаЭтот документН/ Д
Комплексный препарат иммуноглобулина (CIP)Иммуно-Джем, Москва, Россияhttp://www.biomedservice.ru/price/goods/1/17531
Химикаты, реактивы и гликаны
Библиотека гликанаИнститут биоорганической химии (ИБХ), Москва, РоссияН/ Д
Бычий сывороточный альбумин (BSA)Сигма-Олдрич, Сент-Луис, Миссури, Номер #: A9418
ЭтаноламинСигма-ОлдричНомер #: 411000
Подросток-20Merck Chemicals & Life Science S.A., Мадрид, ИспанияСсылка #: 655204
Фоспате-буферный физиологический раствор (PBS)VWR International Eurolab S.L, Барселона, ИспанияСсылка #: E404
Азид натрияСигма-ОлдричСсылка #: S2002
Стрептавидин Alexa Fluor 555 конъюгат Thermo Fisher ScientificНомер #: S21381
Стрептавидин Cy5 конъюгатGE Healthcare, Литтл-Чалфонт, Бакингемшир, ВеликобританияСсылка #: PA45001
материалы
N-гидроксисукцинимид-производные стеклянные стекла H Schott-Nexterion, Йена, ГерманияСсылка #: 1070936
Фильтровальная бумага ватман Сигма-ОлдричСсылка #: WHA10347509
Пробирки объемом 1,5 млЭппендорф Ссылка #: 0030120086
Программное обеспечение и алгоритмы
Система анализа микрочипов ScanArray ExpressПеркинЭлмерhttp://www.per< чел. /> kinelmer.com/microarray

Теги

Анализ сыворотки крови мышифлуоресцентное сканированиебиотин-стрептавидиновое детектированиеинкубация с орбитальным перемешиваниемпротокол промывки буферомполучение изображений на сканере предметных стеколподготовка гликочипаанализ связывания антител