Все процедуры, связанные со сбором образцов, были выполнены в соответствии с рекомендациями института IRB.
1. Производство гликочипов
- Подготовка микрочипов
- Напечатайте гликаны (50 мМ) и полисахариды (10 мкг/мл) в 300 мМ фосфатно-солевом буфере (PBS, pH 8,5) с 6 повторениями на предметных стеклах, N-гидроксисукцинимид, используя бесконтактный роботизированный матриер (объем капель ~900 пл). Каждый слайд содержит 4 различных блока подмассивов (Рисунок 1A, в цветах), повторяющихся 6 раз. Каждый отдельный подмассив образован 112 различными гликановыми пятнами, включая контрольные (8 строк × 14 столбцов) (рис. 1B).
заметка: Информация, связанная с гликанами, представлена в таблице 1. Библиотека гликанов, используемая для печати микрочипов, является результатом многолетних синтетических усилий команды IBCh; Примеры синтеза описаны в соответствующих публикациях. Библиотека гликанов включала антигены группы крови и некоторые из наиболее часто встречающихся терминальных олигосахаридов, а также основные мотивы N- и O-связанных гликопротеинов и гликолипидов млекопитающих, опухолеассоциированных углеводных антигенов и полисахаридов патогенных бактерий.
- Инкубируйте предметные стекла в ящике для влажности (относительная влажность ~70%) при комнатной температуре (25 °C) в течение 1 часа.
- Блокирующие микрочипы: инкубировать предметные стекла в течение 1,5 ч с блокирующим буфером при комнатной температуре (100 мМ борной кислоты, 25 мМ этаноламина, 0,2% (v/v) Tween-20 в ультрачистой воде).
- Промойте гликочип сверхчистой водой и высушите его на воздухе.
- Контроль качества гликочипа
- Проанализируйте два микрочипа из каждой партии с использованием 1 мг/мл раствора комплексного препарата иммуноглобулина (CIP, содержащего иммуноглобулины: IgG, IgM и IgA), 10 мкг/мл раствора биотинилированных козьих античеловеческих иммуноглобулинов в качестве вторичного антитела (IgM + IgG + IgA), а затем 1 мкг/мл раствора соответствующего флуоресцентного конъюгата стрептавидина (по протоколу, описанному ниже, см. шаг 2).
- Отсканируйте и проанализируйте гликочипы (см. шаг 3, анализ гликановой матрицы).
- Используйте партии микрочипов с внутри- и межчиповой корреляцией выше 0,9.
2. Метод гликановой матрицы
- Приготовьте следующие водные растворы (в сверхчистой воде) и храните их при комнатной температуре (25 °C):
- Буфер-1: 1% (w/v) бычьего сывороточного альбумина (BSA) в фосфат-солевом буфере (PBS), 1% (v/v) Tween-20 и 0,01% (w/v) азида натрия (NaN3).
- Буфер-2: 1% (w/v) BSA в PBS, 0,1% (v/v) Tween-20 и 0,01% (w/v) NaN3.
- Буфер-3: 0,1% (v/v) Tween-20 в PBS.
- Буфер-4: 0,001% (v/v) Tween-20 в PBS.
- Гликочип и пробоподготовка
- Поставьте ящик для хранения с предметными стеклами на стол до тех пор, пока они не нагреются до комнатной температуры (25 °C).
заметка: Используйте неопудренные латексные перчатки. Управление гликочипом необходимо осуществлять с помощью нижней части предметного стекла, где находится штрих-код. Штрих-код поможет вам определить правильную сторону, избегая контакта с поверхностью, на которую напечатаны гликаны.
- Откройте коробку, возьмите гликочип и поместите его в инкубационную камеру (25 °C), уже скондиционированную влажной фильтровальной бумагой для поддержания постоянной влажности внутри камеры.
- Тем временем разведите сыворотку мышей с Buffer-1 (1:20) в пробирках объемом 1,5 мл. Гомогенизируйте раствор сыворотки (5 с) с помощью вихревого смесителя. <бр/>
заметка: Объем, необходимый для полного покрытия одной поверхности гликочипа, составляет примерно 1 мл.
- После гомогенизации разведенную сыворотку инкубировать при 37 °C в течение 10 минут на водяной бане, чтобы избежать агрегации иммуноглобулинов. Центрифугируйте пробирки в течение 3 минут при 10 000 x g и 25 °C, соберите надосадочную жидкость и выбросьте выпавший в осадок материал.
- Осторожно поместите гликочип в инкубационную камеру. Инкубируйте его в течение 15 минут при 25 °C с 1 мл Buffer-3, чтобы удалить остатки материала на поверхности гликочипа.
- Держите гликочип в вертикальном положении и повторно промойте его несколькими каплями Buffer-3 с помощью пластиковой пипетки Пастера. Осторожно удалите буфер с поверхности гликочипа с помощью фильтровальной бумаги.
3. Реакция: связывание антител
- Поместите гликочип в инкубационную камеру. Распределите разведенный образец сыворотки по поверхности гликочипа с помощью микропипетки. Инкубировать с орбитальным перемешиванием (30 об/мин) при 37 °C в течение 1,5 ч. Убедитесь, что вся сухая область поверхности гликочипа покрыта разбавленным образцом сыворотки с помощью кончика пипетки.
- Удалите лишний образец и погрузите гликочип на 5 минут в буфер-3 при температуре 25 °C. Затем переместите гликочип в емкость с Буфером-4 (5 мин) и, наконец, промойте (5 мин) гликочип сверхчистой водой. Центрифугируйте гликочип в течение 1 минуты при 175 x g и 25 °C, чтобы удалить жидкость.
4. Обнаружение: вторичное антитело
- Поместите гликочип в инкубационную камеру. Распределите по поверхности гликочипа раствор (5 мкг/мл) козьего антимышиного препарата (IgG + IgM), конъюгированного с биотином в буфере-2. Инкубировать с орбитальным перемешиванием (30 об/мин) при 37 °C в течение 1 ч.
- Удалите несвязанную фракцию и повторите шаги промывки.
- После центрифугирования гликочип инкубируют в темноте при 25 °C в течение 45 мин (30 об/мин) с 2 мкг/мл соответствующего раствора стрептавидина, меченного флуорохромом (в буфере-2).
- В темноте удалите несвязанную фракцию и повторите шаги стирки.
- Высушите гликочип на воздухе. <бр/>
заметка: Гликочип должен быть отсканирован как можно скорее. Но если сразу после окрашивания сделать сканирование невозможно, гликочипы можно хранить в прохладном и сухом месте в темноте.
3. Анализ гликановой матрицы
- Сканирование массива
- Оставьте гликочип на столе до тех пор, пока он не достигнет комнатной температуры в темноте. Одновременно включите сканер слайдов и лазер (длина волны возбуждения 633 нм).
- Удерживая микрочип, вставьте гликочип в паз до тех пор, пока он не коснется задней панели.
- Отсканируйте гликочип («run easy scan») и сохраните сканирование как ». TIFF".
Таблица 1: Список гликанов, их связывание с естественными циркулирующими антителами (IgM + IgG) мышей BALB/c (n = 20), выраженных в единицах относительной флуоресценции (RFU) как медиана ± MAD, и количество животных, превышающее отсечку (≥4000 RFU). Эта таблица была воспроизведена из Bello-Gil, D. et al. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать эту таблицу.